Name: Microglia de culture du système nerveux central néonatale et de ladulte (Vidéo) | JoVE Journal
Uploaded: 2013-08-09T11:00:00.000+00:00
Duration: 11 min 28 s
Description: Apprenez à isoler et cultiver des microglies primaires du cortex néonatal et de la moelle épinière adulte chez la souris. Cette méthode permet aux cellules de retrouver leur état de repos pour une meilleure analyse en microscopie à immunofluorescence.

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Nous tenons à remercier les membres du laboratoire Tsirka pour leurs conseils et leurs commentaires utiles. Ce travail a été soutenu par R01NS42168 à définir, 12PRE12060489 de RB, un NSF-3MT IGERT et une thèse bourse Turner à LT, et NSF-3MT IGERT à JCN.

1. Dissection (jour 0) <ol><li> Induire une anesthésie à P0-2 souriceaux d&#39;hypothermie. Essuyez les têtes des chiots avec un Kimwipe trempé dans l&#39;éthanol à 70% pour désinfecter les tissus. </li><li> Enlevez les têtes avec une paire de ciseaux, avec 4 petits par plaque de culture de 10 cm. Placez les têtes dans une boîte de Pétri contenant le tampon glacée Hank. </li><li> Ancrer les têtes avec une pince courbe à travers les orbites et retirer délicatement la peau qui recouvre le crâne avec microforceps droites. </li><li> Retirez les os du crâne avec microforceps droites, en utilisant attention à ne pas percer ou endommager le cortex. Le moyen le plus efficace est de commencer le déménagement de départ près du cervelet, qui est situé à la base de la tête, car cette région sera jeté. </li><li> Retirez le cerveau avec une petite spatule et placer les quatre (4) des cerveaux dans une boîte de Pétri frais contenant le tampon glacée Hank. </li><li> Toutes les étapes de ce point sur utilisent microforceps et sont réalisées sous une dissemicroscope ction. À partir de la face ventrale du cerveau, ancrer le tissu en tenant le cervelet et faire deux petites incisions de chaque côté du mésencéphale. Veillez à ne pas couper tout le chemin à travers le tissu, comme les cortex couvrent le mésencéphale dans cette région. </li><li> Doucement taquiner le mésencéphale et le cervelet en une seule pièce les deux corticales. Les deux cortex devraient former une forme concave. </li><li> Séparer les deux cortex et orienter un seul cortex avec la face interne en vue de poursuivre la dissection. L&#39;hippocampe peut être difficile à observer, mais il est situé en face du bulbe olfactif qui apparaît comme un petit nodule sur l&#39;extrémité pointue du cortex. </li><li> Retirez l&#39;hippocampe, qui a une forme de croissant. Retournez le cortex plus à voir la face dorsale. </li><li> Utilisation du bulbe olfactif comme point de départ, supprimer toutes les méninges et le bulbe olfactif lui-même à partir du cortex. </li><li> Les cortex disséqués devront être placés dans des tubes coniques de 15 ml avec 14 ml de colLa saline tamponnée d Hank sur la glace. </li></ol> 2. Culture cellulaire (jour 0) <ol><li> Pré-manteau 10 boîtes de culture de tissus cm avec 5 ug / ml de poly-D-lysine (PDL) dilué dans de l&#39;eau stérilisée à l&#39;autoclave pendant 3 heures à 37 ° C. </li><li> Aspirer PDL, et des plaques de lavage une fois avec de l&#39;eau autoclave. Plaque à sec sous les UV dans la hotte de culture tissulaire pendant 20 min. Cette étape doit être effectuée juste avant le processus de dissection. </li><li> Aspirer le tampon de Hank à partir de tubes contenant les cortex de 4 cerveaux chacun, appliquer 4 ml de solution de trypsine / EDTA 1x, triturer tissu avec p1000 pointe, et placer des tubes à 37 ° C incubateur pendant 15 min. </li><li> Ajouter 4 ml de milieu microgliales complets par tube pour arrêter la digestion enzymatique, mélanger et ralentit contenu à un régime 1.5K pendant 5 min. </li><li> Aspirer le surnageant et répéter lavage avec 4 ml de milieu complet. Remettre les cellules dans 10 ml de milieu microgliales complets (DMEM avec 10% de FBS, 1% de pyruvate de sodium, 0,08% gentamicine) et filtrer à travers un 40 micron tamis cellulaire maille. </li><li> Plaque à une densité de 8 cortex par 10 ml dans une plaque de 10 cm de culture de tissu et placer dans un incubateur de culture tissulaire à 37 ° C et 5% de CO 2 (voir protocole Microglia adultes). </li></ol> (Jour 3) <ol><li> Changer médias dans tous les plats de culture de cellules microgliales complets avec les médias. </li></ol> (Jour 10) <ol><li> Ajouter 400 microlitres de 60 mm de lidocaïne dans HBSS (pour détacher la microglie) dans le milieu des plaques de culture tissulaire de 10 cm et incuber à température ambiante (TA) pendant 10-15 min. </li><li> Recueillir des médias / suspension cellulaire de la plaque et laver la plaque une fois avec le tampon de Hank. Recueillir le tampon de lavage restant à recouvrer la microglie. </li><li> Ajouter EDTA 5 mM (pH 8,0) à la suspension de cellules à une concentration finale de 50 pM ou à une dilution de 1/100. </li><li> Isoler suspension cellulaire à 1000 x g (1500 rpm) pendant 5 min et remettre en suspension dans 1 ml de DMEM avec 1% de FBS. </li><li> Compter le nombre de cellules viables (comme par Mi adultecroglia 3.1/3.2) et les cellules divisée en plaques de culture de tissus à la densité expérimentale souhaitée. Environ 1x10 6 cellules microgliales sont récoltées à partir d&#39;une plaque de 10 cm contenant les cortex de 4 cerveaux. Par immunofluorescence, une densité de 2,5.10 4 cellules par lamelle 18 mm est recommandé. </li><li> Attendre au moins 24 heures pour les cellules microgliales pour revenir pleinement à leur état de repos ramifié avant de l&#39;utiliser. </li></ol> Protocole texte: (Adult microglie) 1. Collection de tissus <ol><li> des plaques de culture de tissus de manteau de poly-D-lysine (PDL) pendant 3 heures à 37 ° C ou une nuit à 4 ° C. Laver les plaques une fois avec de l&#39;eau immédiatement autoclave avant utilisation. </li><li> Euthanasier souris par asphyxie au CO2 et de s&#39;assurer que l&#39;euthanasie est terminée. Nettoyer la zone de la moelle épinière avec 70% d&#39;éthanol. </li><li> En utilisant une paire de ciseaux couper la peau sur le dessus de la moelle épinière, puis passez à couper la moelle épinière à partir région T1 à T12. Couperle muscle restant hors des côtés de la moelle épinière. </li><li> Lentement couper les vertèbres en utilisant microciseaux que vous maintenez doucement la moelle épinière avec vos doigts. Faites attention à ne pas percer la moelle épinière que le tissu est très doux. Extraire lentement la moelle épinière à l&#39;aide microforceps. </li><li> Immerger la moelle épinière dans une boîte de Pétri contenant HBSS glacée. L&#39;utilisation d&#39;un microscope optique retirer toutes méninges visibles à l&#39;aide de microforceps </li><li> Couper la moelle épinière en segments transversaux suffisamment petites pour générer plusieurs fragments. L&#39;épaisseur des fragments ne doit pas être supérieure à 2 mm, afin de faciliter la digestion efficace. Transférer les morceaux de la moelle épinière dans un tube conique de 15 ml contenant 1 ml de HBSS glacée. Garder le tube sur la glace jusqu&#39;à l&#39;étape de digestion. </li></ol> 2. La digestion des tissus <ol><li> Aspirer HBSS de 15 ml tube conique contenant du tissu de la moelle épinière. Veillez à ne pas aspirer n&#39;importe quel morceau de tissu. </li><li> Ajouter 1 ml de trypsine (2.5 g / L irradié trypsine porcine et 0,2 g / L EDTA dans HBSS) et incuber à 37 ° C pendant 30 min. </li><li> Pour arrêter la digestion retirer la trypsine et ajouter 3 ml de milieu microglie primaire qui contient du sérum pour arrêter la digestion enzymatique. </li><li> Pipet haut et bas pour déloger le tissu. Filtrer la suspension de cellules à l&#39;aide d&#39;un tamis cellulaire de 40 um. </li></ol> 3. Comptage des cellules et placage <ol><li> Mélanger volume égal de suspension de cellules et une solution de DAPI. </li><li> Compter les cellules en utilisant un hématimètre. </li><li> Plaque à une densité comprise entre 5 7x10 5 cellules / ml dans PDL revêtus 35 x 10 mm plats. Placage à une densité inférieure empêché la croissance des cellules, même lorsque les cellules ont été cultivées en plaques de 12 puits qui ont une zone plus petite par rapport à 35 x 10 mm plats. </li></ol>

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</ol>

Les auteurs n&#39;ont rien à révéler.

Microglie moduler CNS fonctionnement normal ainsi que les réponses inflammatoires à diverses pathologies. Fonctionnel remodelage synaptique par la microglie a été impliquée dans le maintien de l&#39;homéostasie du cerveau normal 15. Au cours de la cascade neurogène ils participent à la clairance des cellules progénitrices neurales du gyrus denté de l&#39;hippocampe 4, 16. Par conséquent, il est nécessaire de développer un système de culture dans lequel pour étudier la microglie néonatale et adulte,...

Microglies sont les cellules immunitaires résidentes du SNC, ressemblant plus étroitement macrophages périphériques dans la structure et la fonction 1. Il a été récemment démontré que les cellules microgliales postnatale proviennent de progéniteurs myéloïdes primitives et sont générés avant le huitième jour de l&#39;embryogenèse, bouleversant la notion précédente qui progéniteurs hématopoïétiques postnatales sont la source de la microglie dans le cerveau adulte 2. Ils jouent un rôle clé dans plusieurs maladies neurologiques et peuvent réagir rapidement à une infection ou une blessure en libérant des cytokines pro-inflammatoires ou anti-inflammatoire 3. Ainsi microglie englober une unité autonome dans le système nerveux central qui peuvent être manipulés à affecter la progression de la maladie. Développer des méthodes robustes et reproductibles pour isoler et cultiver les cellules microgliales néonatale ou adulte est important pour de futures études. Les microglies sont connus pour être des acteurs essentiels dans un certain nombre de pathologies cérébrales. Plus récemment, roles sont en train d&#39;émerger pour les cellules dans le développement normal du cerveau et de la fonction que les cellules microgliales phagocytent excès de neurones progéniteurs du gyrus denté de l&#39;hippocampe 1, 4. Microglie peut aussi moduler plusieurs conditions neurologiques qui affectent la moelle épinière, comme MS, les douleurs neuropathiques et les blessures de la moelle épinière 5-7. Spinal microglies de la moelle réagissent différemment par rapport à la microglie du cerveau en réponse à des signaux d&#39;activation 8, 9, probablement en raison de différences dans l&#39;environnement local. Il est donc important de mettre en place un système in vitro approprié à la culture et à étudier les microglies de la moelle épinière. Microglie néonatale produisent beaucoup plus de l&#39;oxyde de cytokines pro-inflammatoires nitrique par rapport aux cellules adultes après stimulation in vitro avec l&#39;IFN-γ ou TNF-a 10,11 soulignant la nécessité d&#39;utiliser des cellules adultes pour étudier la microglie dans le cadre de certaines maladies plus loin. Le protocole que nous utilisons en laboratoire pour culture microglie néonatale est une variante de méthodes récentes qui utilisent tremblement de cultures mixtes gliales dans un effort pour supprimer les microglies de la surface du flacon de culture cellulaire 12. Nous décrivons également une méthode de culture microglies de la moelle épinière de souris adulte sur base d&#39;un protocole d&#39;abord décrit par Yip, et al 13. Cette méthode fournit un moyen plus rapide de cellules adultes de la culture par rapport à d&#39;autres protocoles disponibles 14. La préparation obtenue est de 70% microglie, le pourcentage restant se compose d&#39;astrocytes. Bien que la pureté de notre culture est plus faible par rapport à d&#39;autres méthodes publiées 13, ce système de culture est utile pour explorer la microglie dans la réponse de la culture à divers stimuli d&#39;activation ainsi que pour l&#39;étude des maladies qui affectent principalement la moelle épinière et dans lequel une forte réponse inflammatoire est une caractéristique principale. Tous les protocoles décrits ont été approuvés par la Stony Brook University IACUC.

<table><tbody><tr><td>EDTA, 5mM</td><td>Invitrogen</td><td>15567-028</td><td></td></tr><tr><td>Lidocaïne, 60mM</td><td>Sigma</td><td>L-5647</td><td></td></tr><tr><td>Trypan Blue</td><td>Sigma</td><td>T8154</td><td></td></tr><tr><td>Trypsine/EDTA</td><td>Cellgro</td><td>25-052-CI</td><td></td></tr><tr><td>DMEM, 1X</td><td>Cellgro</td><td>10-017</td><td></td></tr><tr><td>Pyruvate de sodium</td><td>Cellgro</td><td>25-000-CL</td><td></td></tr><tr><td>Sulfate de gentamycine</td><td>Biowittaker</td><td>17-518Z</td><td></td></tr><tr><td>35 x 10mm Plat de culture tissulaire</td><td>Falcon</td><td>353001</td><td></td></tr><tr><td>Poly-D-Lysine, 100 &mu ; g/ml</td><td></td><td></td><td>Dilué 1:20</td></tr><tr><td>HBSS, 1X</td><td>Cellgro</td><td>20-023-CV</td><td></td></tr></tbody></table>

microglia de culture du système nerveux central néonatale et de l&#39;adulte

Culturing Microglia from the Neonatal and Adult Central Nervous System

Les microglies sont les cellules de type macrophage résident du système nerveux central (SNC) et, à ce titre, ont un rôle d&#39;une importance cruciale dans les processus physiologiques et pathologiques tels que SNC maturation dans le développement, la sclérose en plaques et les lésions de la moelle épinière. Microglie peut être activé et recruté à l&#39;action par une blessure ou une stimulation neuronale, tels que des lésions axonales vu dans MS ou un traumatisme cérébral ischémique résultant d&#39;une attaque. Ces membres immunocompétentes du SNC sont également pensé à avoir un rôle dans la plasticité synaptique dans des conditions non pathologiques. Nous utilisons des protocoles pour la microglie de culture des tissus néonatales et adultes qui visent à maximiser le nombre de cellules viables tout en minimisant les facteurs de confusion, tels que la présence d&#39;autres types de cellules du système nerveux central et les débris de culture cellulaire. Nous utilisons des composants du système nerveux central, grandes et facilement discernable (par exemple cortex, les segments de la moelle épinière), ce qui rend l&#39;ensemble du processus réalisable et reproductible. L&#39;utilisation de la cellule adultes est une alternative appropriée à l&#39;utilisation de la microglie du cerveau néonatal, comme beaucoup de pathologies étudiées touchent principalement la moelle épinière postnatal. Ces systèmes de culture sont également utiles pour tester directement l&#39;effet des composés qui peuvent inhiber ou promouvoir activation de la microglie. Depuis activation de la microglie peut façonner les résultats de la maladie dans le SNC adulte, il existe un besoin pour des systèmes in vitro dans lequel la microglie néonatale et adulte peut être cultivée et étudiée.

<html> Un exemple de cellules de la microglie au repos et activées est illustré à la figure 1. La microglie ont été visualisée 24 heures après placage (figure 1a) et présentent ramifié morphologie (au repos). L&#39;exposition au réactif d&#39;amorçage, le lipopolysaccharide (LPS) bactériens résultats des changements dans la morphologie des microglies que les cellules sont activées (figure 1b). Un exemple de comptage des cellules pour le placa...

Nous présentons des méthodes pour l&#39;isolement / culture efficace et rapide de la microglie viable du cortex cérébral néonatal et la moelle épinière adulte. La dissection et le placage de la microglie corticale peuvent être accomplies dans les 90 minutes, avec la récolte des microglies subséquente aura lieu ~ 10 jours suivant la dissection initiale.

Microglia de culture du système nerveux central néonatale et de l&#39;adulte

Microglia are the resident macrophage-like cells of the central nervous system (CNS) and, as such, have critically important roles in physiological and ...

L'objectif général de cette procédure est d'isoler des cellules microgliales primaires à partir du cortex de souriceau néonatal ou de la moelle épinière de souris adulte. Cette isolation est réalisée en extrayant d'abord le cerveau d'un souriceau de jour postnatal zéro ou deux, ou la moelle épinière d'un adulte. Ensuite, soit les cortices sont prélevés à partir du tissu néonatal, soit le tissu de la moelle épinière est digéré.Les cellules issues des tissus corticaux et spinaux sont ensuite cultivées jusqu'à leur utilisation expérimentale. En fin de compte, les cellules microgliales néonatales et adultes récoltées peuvent être analysées par microscopie immunofluorescente. Le principal avantage de notre protocole de culture de microglie néonatale par rapport aux méthodes existantes, telles que la méthode de secouage des cellules microgliales à partir de plaques corticales mixtes, est que les cellules retrouvent facilement un état de repos et peuvent fournir une image plus précise du comportement des cellules microgliales in vivo.L'avantage principal de la culture de microglie provenant de la moelle épinière adulte est que les cellules peuvent être étudiées dans le contexte de patholo

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Immunology and Infection

Immunologie et infection

Isoler les microglies primaire à partir de l'hétérogénéité cellulaire du cerveau est essentielle pour enquêter sur leur rôle dans les deux conditions physiologiques et pathologiques. Ce protocole décrit une isolation mécanique et technique mixte de culture cellulaire qui fournit un rendement élevé et de haute pureté, viables primaires pour les cellules...

Isolement primaire microglies de cultures mixtes de cellules gliales de tissus de cerveau de rat nouveau-né

La vidéo a démontré la méthode d’isolement et de culture de cellules à partir du cerveau d’une souris néonatale. Il impliquait une dissociation enzymatique et mécanique du cerveau, suivie d’une culture dans un milieu de croissance dépourvu de facteur de croissance neuronale pour obtenir une population gliale mixte.

Obtention d’une culture mixte de cellules gliales à partir d’un cerveau de souris néonatale

Une des clés de réussite de l'enquête de la biologie de la microglie est la préservation de la microglie immunofunction ex vivo lors de l'isolement de tissu du SNC. Isoler la microglie par les résultats serrant rotatifs dans des cultures de cellules de grande pureté et immunofonctionnel évaluée par imagerie de fluorescence, immunocytochimie, et ELISA activation de la microglie suivante avec le lipopolysaccharide stimuli pro-inflammatoires (LPS) et Pam 3 CSK 4 (Pam).

Isolation des corticale microglie avec immunophénotype préservée et fonctionnalité De murins nouveau-nés

Le développement de la douleur neuropathique implique des changements pathologiques des cellules gliales cordon de la colonne vertébrale. Un système de culture gliale fiable provenant d' un tissu de la moelle épinière adulte et conçu pour l' étude de ces cellules in vitro est absente. Par conséquent, nous montrons ici comment établir cultures primaires gliales mixtes de souris adultes tissu de la moelle épinière.

Préparation de cultures mixtes gliales primaires de souris adultes Spinal Cord Tissue

Efforts pour comprendre en détail le fonctionnement du microgliales ont été entravées par le manque de modèles de culture microgliales qui récapitule les propriétés des matures in vivo de cellules microgliales. Ce protocole décrit une démarche d’isolement et de la culture visant à maintenir la survie robuste des microglies rat mature très ramifié dans des conditions définies et moyen.

Isolement et Culture des microglies rongeurs pour promouvoir une dynamique ramifié morphologie dans un milieu sans sérum

Nous présentons ici un protocole pour l’isolement in vitro de plusieurs populations de cellules gliales à partir d’un SNC de souris. Cette méthode permet la ségrégation de la microglie régionale, des cellules précurseurs d’oligodendrocytes et des astrocytes pour étudier les phénotypes de chacun dans une variété de systèmes de culture.

Dissection et isolement de la glie murine de plusieurs régions du système nerveux central

Ce protocole est une méthode efficace, rentable et robuste d’isoler les microglies primaires des tissus cérébraux vivants, adultes et humains. Les microglies humains primaires isolés peuvent servir d’outil pour étudier les processus cellulaires dans l’homéostasie et la maladie.

Obtention de microglies humaines à partir de tissus cérébraux humains adultes

Les cultures primaires de microglies sont couramment utilisées pour évaluer de nouvelles molécules anti-inflammatoires. Le présent protocole décrit une méthode reproductible et pertinente pour isoler magnétiquement la microglie des nouveau-nés.

Isolement magnétique de cellules microgliales de souris nouveau-née pour des cultures de cellules primaires

Ce protocole décrit une co-culture microgliale-neuronale établie à partir de cellules neuronales primaires isolées d’embryons de souris aux jours embryonnaires 15-16 et de microglie primaire générée à partir du cerveau de souris néonatales aux jours postnatals 1er-2.

Génération et co-culture de microglie primaire murine et de neurones corticaux

Nous décrivons une méthode modifiée de chaud extraction aqueuse de phénol pour purifier le lipopolysaccharide (LPS) de bactéries Gram-négatives. Une fois extraite, les LPS peuvent ensuite être analysées par SDS-PAGE et visualisés par coloration directe ou immunoblot de l'Ouest.

Purification et visualisation de lipopolysaccharide de bactéries à Gram négatif par Hot-phénol aqueux d&#39;extraction

Apprenez à isoler et cultiver des microglies primaires du cortex néonatal et de la moelle épinière adulte chez la souris. Cette méthode permet aux cellules de retrouver leur état de repos pour une meilleure analyse en microscopie à immunofluorescence.

Microglia de culture du système nerveux central néonatale et de l'adulte

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