Name: Thérapie à base de cellules pour linsuffisance cardiaque chez le rat: Double thoracotomie pour infarctus du myocarde et épicardique implantation de cellules et Biomatrice (Vidéo) | JoVE Journal
Uploaded: 2014-09-22T13:00:00.000+00:00
Duration: 9 min 11 s
Description: Apprenez une double thoracotomie mini-invasive chez le rat pour modéliser l'infarctus du myocarde et implanter des cellules avec biomatrice sur l'épicarde. Cette méthode optimise la réparation cardiaque.

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Les auteurs remercient le professeur Hendrik Tevaearai et du département de chirurgie cardiovasculaire de soutien financier pour la première partie de l&#39;étude.

REMARQUE: Lewis rats mâles et femelles, 200-220 g ont été logés dans des conditions standard de laboratoire (lumière de 12 h et le cycle sombre, l&#39;eau ad libitum et alimentaires, IVC cage). Tous les animaux ont été traités en conformité avec les recommandations de la FELASA et la loi suisse sur la protection des animaux. 1 Préparation des cellules: les cellules souches mésenchymateuses isolement de moelle osseuse <ol><li> Anesthésier les rats avec de l&#39;isoflurane à 5% de O 2 et 5 l / min dans une chambre d&#39;induction pendant 5 min. Placer le museau de l&#39;animal dans un cône d&#39;entrée connecté au système d&#39;anesthésie. Effectuer un orteil ou pincement de la queue pour confirmer la sédation. </li><li> Enlevez la peau de la jambe avec des ciseaux en coupant la peau de la cheville à la hanche. Enlever les muscles et couper l&#39;artère fémorale pour la saignée des animaux. Exposer l&#39;articulation de la hanche et disloquer la tête du fémur. Il est important de ne pas endommager la tête du fémur. Placer les os dans du PBS stérile dans un tube en plastique de 50 ml. </li><li> Retirez tous les muscles et les ligaments des os sans les casser. NOTE: Il est important que l&#39;os reste intacte pour éviter liaison de solution de rinçage ou une contamination par de l&#39;éthanol. Rincer les os pelées éthanol à 70% pendant 5 min. </li><li> Sous la hotte à flux laminaire stérile, couper les deux extrémités des os avec des ciseaux. Rincer la moelle osseuse par injection de PBS stérile de l&#39;extrémité de l&#39;os. Recueillir osseuse dans un tube de 15 ml. Centrifugeuse 7 min à 300 x g. </li><li> Eliminer le surnageant. Suspendre le culot dans 3 ml de tampon de lyse Rouge de cellules sanguines. Incuber la suspension pendant 1 min à température ambiante avant de tourner à nouveau pendant 7 minutes à 300 x g. Dans un ballon de 150 ml de culture, ajouter un milieu de culture cellulaire stérile (395 ml de milieu IMDM, 5 ml de pen / strep, 100 ml de FBS) et ensemencer les cellules. </li><li> Changer le milieu de la deuxième journée pour éliminer les cellules non-adhérentes. <ol><li> Effectuer changements de milieu tous les deux jours pendant deux à trois semaines jusqu&#39;à ce que la quantité de cellules désiré soit obtenu. </li><li> Sinon, préparer la biograft par grainesment les cellules sur la matrice solide comme nécessaire et décrit par ailleurs 3. </li></ol></li><li> Le jour de l&#39;implantation cardiaque, préparer les cellules ou récolter le biograft juste avant l&#39;application épicardique. <ol><li> Recueillir les cellules en utilisant Accutase solution de détachement cellulaire. Compter les cellules. Remplir un tube à centrifuger de 1,5 ml avec le volume de la suspension cellulaire pour obtenir une quantité calculée de la cellule souhaitée. Centrifuger pendant 7 min à 300 g et éliminer le surnageant. </li><li> Sinon, récolter le biograft de milieu de culture cellulaire, rincer dans du PBS stérile, et garder dans un milieu de culture frais sans sérum. </li></ol></li></ol> 2 Première thoracotomie et LAD ligature <ol><li> Peser le rat. Mettez le coussin chauffant à 37 ° C. Anesthésier le rat avec 5% d&#39;isoflurane et 5 l / min à 100% de O 2 dans une chambre d&#39;induction de 5 à 7 min. Effectuer un orteil ou pincement de la queue pour confirmer la sédation. Placer le rat sur le coussin chauffant. </li><li> Intuber l&#39;animal avec un 14G iv cathéter. Raccorder le cathéter d&#39;intubation à un ventilateur de rongeur programmé pour 2,5 L / min d&#39;oxygène, 2,5% d&#39;isoflurane, le volume courant de 2 ml, et une fréquence respiratoire de 90 respirations / min. </li><li> Préparer une solution de buprénorphine à 0,1 mg / kg. Injecter en sous-cutané d&#39;un tiers de la solution. Raser la partie gauche du thorax. Désinfecter avec une solution à 1% de Betadine. </li><li> Inciser la peau perpendiculairement au sternum à la quatrième espace intercostal. Séparez les 3 couches de muscle thoracique (grand pectoral, ordre croissant pectoral, et pectoral oblique externe). Ouvrir le quatrième espace intercostal (entre les nervures 4 et 5). </li><li> Utilisez un petit écarteur pour écarter les côtes et à exposer le cœur. Ouvrez le péricarde attentivement. Recherchez et ligaturer descendante antérieure gauche artère coronaire (DAL) avec un 7,0 mm suture 4 ci-dessous l&#39;atrium. </li><li> Fermez l&#39;espace intercostal avec deux points à l&#39;aide de 3,0 points de suture. Placez les deux points de suture proximale et distale du sternum. Tout d&#39;abord, tighten la suture distale. Fixer la tubulure d&#39;échappement du ventilateur pendant 2 s pour gonfler la poitrine et d&#39;éviter toute pneumothorax. Serrer la deuxième suture. Placez les couches de muscles en place (pas de sutures sont nécessaires). Fermez la peau avec une suture 5.0. </li><li> Désinfecter la suture avec une solution de Betadine 1%. Injecter le reste de la solution de buprénorphine. Éteignez le système d&#39;anesthésie. Retirer intubation cathéter. </li><li> Gardez le rat dans la cage sous une lampe chaude pendant 1-2 heures. Conserver un thermomètre dans la cage et de contrôler la distance entre la lampe et la cage chaud afin d&#39;éviter toute surchauffe. Retour le rat dans l&#39;unité IVC. Injecter par voie sous cutanée buprénorphine 0,05-0,1 mg / kg après chaque -operatively 6-12 h pendant 48 heures. </li></ol> 3. épicardique administration de la Via traitement seconde thoracotomie <ol><li> Répétez les étapes 2.1 à 2.3. </li><li> Inciser la peau perpendiculairement au sternum à la cinquième espace intercostal. Séparer la couche 3s de muscle thoracique (grand pectoral, ordre croissant pectoral et grand pectoral oblique externe). Ouvrez le cinquième espace intercostal (entre les nervures 5 et 6). </li><li> Utilisez un petit écarteur pour écarter les côtes et à exposer le cœur. Si il ya une certaine adhésion, les retirer soigneusement avec une pince fine. </li><li> Localisez la zone de l&#39;infarctus qui apparaît comme une zone pâle dessous de la ligature. REMARQUE: Si nécessaire, utiliser un morceau de 10 cm de fil de suture (7.0) inséré au sommet de mieux visualiser le ventricule gauche. Tirez doucement à la suture lâche maintenu par une pince pour exposer le cœur. </li><li> Appliquer l&#39;un des traitements suivants: <ol><li> Positionner la biograft à la surface du cœur. Utiliser la seringue pré-remplie d&#39;agent d&#39;étanchéité de fibrine préchauffée à la température ambiante pendant 10 min. Appliquez une goutte (50-100 pi) de la colle de fibrine sous la biograft aide d&#39;une aiguille 25 G Luer. Vérifiez que le biograft est parfaitement étanche. </li><li> Alternativement, appliquer le culot cellulaire recueilli avec une pipette à la surface of le cœur sur la zone pâle dessous de la ligature. Appliquer une goutte (50 à 100 pi) de la colle de fibrine sur le culot cellulaire. </li></ol></li><li> Retirez le morceau de suture à partir du sommet. </li><li> Répétez les étapes 2,6-2,8. </li></ol>

<ol><li>Gjesdal, O., Bluemke, D. A., Lima, J. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cardiac+remodeling+at+the+population+level--risk+factors%2C+screening%2C+and+outcomes%5BTitle%5D)+AND+%22Nat.+Rev.+Cardiol%22%5BJournal%5D)">Cardiac remodeling at the population level--risk factors, screening, and outcomes.</a> Nat. Rev. Cardiol. 8, 673-685 (2011).</li>
<li>Alcon, A., Cagavi Bozkulak, E., Qyang, Y. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Regenerating+functional+heart+tissue+for+myocardial+repair%5BTitle%5D)+AND+%22Cell+Mol.+Life+Sci%22%5BJournal%5D)">Regenerating functional heart tissue for myocardial repair.</a> Cell Mol. Life Sci. 69, 2635-2656 (2012).</li>
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<li>Terrovitis, J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Noninvasive+Quantification+and+Optimization+of+Acute+Cell+Retention+by+In+Vivo+Positron+Emission+Tomography+After+Intramyocardial+Cardiac-Derived+Stem+Cell+Delivery%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Am.+Coll.+Cardiol%22%5BJournal%5D)">Noninvasive Quantification and Optimization of Acute Cell Retention by In Vivo Positron Emission Tomography After Intramyocardial Cardiac-Derived Stem Cell Delivery.</a> J. Am. Coll. Cardiol. 54, 1619-1626 (2009).</li>
<li>Guo, H. D., Wang, H. J., Tan, Y. Z., Wu, J. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Transplantation+of+marrow-derived+cardiac+stem+cells+carried+in+fibrin+improves+cardiac+function+after+myocardial+infarction%5BTitle%5D)+AND+%22Tissue+Eng.+Part+A%22%5BJournal%5D)">Transplantation of marrow-derived cardiac stem cells carried in fibrin improves cardiac function after myocardial infarction.</a> Tissue Eng. Part A. 17, 45-58 (2011).</li>
<li>Qiao, H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Death+and+Proliferation+Time+Course+of+Stem+Cells+Transplanted+in+the+Myocardium%5BTitle%5D)+AND+%22Mol.+Imaging+Biol%22%5BJournal%5D)">Death and Proliferation Time Course of Stem Cells Transplanted in the Myocardium.</a> Mol. Imaging Biol. 11, 408-414 (2009).</li>
<li>Conradi, L., Pahrmann, C., Schmidt, S., Deuse, T., Hansen, A., Eder, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Bioluminescence+Imaging+for+Assessment+of+Immune+Responses+Following+Implantation+of+Engineered+Heart+Tissue+%28EHT%29%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Vis.+Exp%22%5BJournal%5D)">Bioluminescence Imaging for Assessment of Immune Responses Following Implantation of Engineered Heart Tissue (EHT).</a> J. Vis. Exp. 52 (e2605), (2011).</li>
</ol>

Les auteurs n’ont rien à divulguer.

La ligature permanente de LAD provoque une lésion myocardique irréversible. Le premier modèle animal a été décrit en 1960 4. Depuis lors, il a été considéré comme un modèle standard et adapté à MI chronique. Sa stabilité et la reproductibilité autorisés évaluation expérimentale de thérapies pour MI 5. L&#39;amélioration des procédures suivantes la description initiale ont signalé un taux de mortalité opératoire de 35-13% 6. Comme prévu, DAL ligature induite f...

Depuis la fin du 19 e siècle, les maladies cardiovasculaires est resté le numéro un tueur en série dans les pays industrialisés. Parmi ceux-ci, d&#39;une maladie de l&#39;artère coronaire représente l&#39;étiologie principale. Les résultats de la phase aiguë de l&#39;infarctus du myocarde (IM) et est suivi par le remodelage inadapté qui se développe progressivement vers une phase chronique et une insuffisance cardiaque sévère. Malgré les progrès technologiques et thérapeutiques significatifs récents, la morbidité et la mortalité dues à la progression de l&#39;insuffisance cardiaque est encore en croissance 1. Dans ce contexte, la thérapie cellulaire a acquis un intérêt croissant en tant que nouvelle option thérapeutique pour stopper la progression de la maladie vers l&#39;insuffisance cardiaque et à stimuler la capacité de régénération a récemment identifié du myocarde. Des études expérimentales et cliniques ont fourni des preuves convaincantes des effets bénéfiques obtenus après transplantation cardiaque de divers types de cellules. Les principaux résultats figurent l&#39;amélioration de cardila fonction contractile alternatif, une diminution de remodelage ventriculaire gauche, diminution de la taille de l&#39;infarctus, et a augmenté la densité vasculaire dans la zone infarcie. Toutefois, le nombre de cellules à faible rétention après l&#39;injection des cellules est resté un inconvénient important. Association de cellules avec une biomatrice pour améliorer la prestation de la cellule 2 ont récemment favorisé chercheur et intérêts cliniques. La ligature de la descendante antérieure gauche de l&#39;artère coronaire (DAL) est une méthode de référence pour MI en petit modèle animal qui se traduit par infarctus transmural et une cicatrice mature. La thérapie cellulaire appliqué dans la phase chronique de la MI nécessite une deuxième intervention chirurgicale. Une sternotomie médiane est généralement réalisée pour permettre l&#39;injection intramyocardique de l&#39;implantation des cellules ou de biografts épicardique. Ces procédures chirurgicales invasives augmentent le taux de mortalité post-opératoire temps de récupération, la douleur et le risque d&#39;infection. L&#39;approche mini-invasive présentée ici non seulement empêche une telle partialité, mais fournit également des oaccessibilité ptimal du cœur pour l&#39;application du traitement. MI et l&#39;implantation épicardique de cellules associées à une biomatrice de type gel sont effectuées sur un coeur battant par thoracotomie intercostale gauche.

<table><tbody><tr><td>Polysorb 3-0 suture</td><td>Covidien</td><td>UL 204</td><td></td></tr><tr><td>Polysorb 5-0 suture</td><td>Covidien</td><td>UL 202</td><td></td></tr><tr><td>Surgipro II 7-0 Suture</td><td>Covidien</td><td>VP904X</td><td></td></tr><tr><td>Cathéter Insyte 14 G</td><td>BD</td><td>381267</td><td></td></tr><tr><td>Inspira Advanced Volume Controlled Ventilator</td><td>Harvard</td><td>Apparatus 557058</td><td></td></tr><tr><td>Dumont #7 Forceps</td><td>FST Germany</td><td>11274-20</td><td></td></tr><tr><td>Scellant Fibrin</td><td>Baxter</td><td>1501441</td><td>Colle TISSEEL, Congelé -20 &deg ; C</td></tr><tr><td>Castroviejo Eye Specula</td><td>Harvard Apparatus</td><td>72-8925</td><td>à utiliser comme écarteur pour les côtes</td></tr><tr><td>IMDM GlutaMAX</td><td>Gibco</td><td>31980</td><td></td></tr><tr><td>Pen/Strep</td><td>Gibco</td><td>15140</td><td></td></tr><tr><td>FBS</td><td>PAA Clone</td><td>&nbsp ; &nbsp ; &nbsp ; &nbsp ; &nbsp ; A15-101</td><td></td></tr><tr><td>Ciseaux à os</td><td>Outils de sciences fines</td><td>16044-10</td><td></td></tr><tr><td>Solution de lyse des globules rouges</td><td>Gentra Systems</td><td>D-50K1</td><td></td></tr><tr><td>Solution de détachement de cellules accutases</td><td>Technologie des cellules souches</td><td>7920</td><td></td></tr></tbody></table>

thérapie à base de cellules pour l&#39;insuffisance cardiaque chez le rat: double thoracotomie pour infarctus du myocarde et épicardique implantation de cellules et biomatrice

Cell-based Therapy for Heart Failure in Rat: Double Thoracotomy for Myocardial Infarction and Epicardial Implantation of Cells and Biomatrix

La thérapie cellulaire cardiaque a suscité un intérêt et l&#39;implantation de biomatériaux associés à des cellules de plus en plus est devenu un enjeu majeur pour optimiser la prestation des cellules myocardiques. modèle de rongeur de l&#39;infarctus du myocarde (IM) constitué de gauche artère interventriculaire antérieure (AIA) ligature a généralement été réalisée via une thoracotomie; une deuxième opération à cœur ouvert via une sternotomie est traditionnellement réalisée à une application épicardique du traitement. Depuis la description de modèle de ligature LAD, le taux de mortalité post-opératoire a chuté de 35 à 13%, mais la deuxième chirurgie est restée critique. Afin d&#39;améliorer la récupération post-opératoire et de réduire la douleur et l&#39;infection, les procédures chirurgicales minimalement invasives sont présentés. Deux thoracotomie ont été réalisées, une première pour la ligature LAD et le second pour le traitement administration épicardique. Biografts constitués de cellules associées à des matrices solides ou de type gel ont été appliqués sur l&#39;ar infarciech. CONT ligature a entraîné la perte de la fonction cardiaque telle que confirmée par échocardiographie réalisée au bout de 2 et 6 semaines. Goldner coloration au trichrome effectué sur des sections de coeur confirmé la formation de cicatrices transmurale. Des premier et second chirurgies entraîné moins de 10% de la mortalité post-opératoire.

Tous les animaux ont récupéré dans 1 heure après thoracotomie. La cicatrisation des plaies a été rapide. Aucune infection ou un oedème a été observé. La thoracotomie gauche double a permis un accès optimal à cœur (Figure 1). La douleur et la mortalité post-opératoire était faible. L&#39;animal a récupéré rapidement de la chirurgie et a pris du poids (figure 2). Kaplan Meir pour cent de survie était de 96% pour la première thoracotomie. Quatre rats plus de 10...

L&#39;implantation d&#39;un biograft pour traiter l&#39;infarctus du myocarde induite par la ligature LAD dans un modèle de rongeur est classiquement requise des deux opérations à cœur ouvert. Afin de réduire la mortalité et de fournir des conditions optimales pour la fixation de biomatrices gélatineuses solides et associés à des cellules, des procédures minimalement invasives ont été développées.

Thérapie à base de cellules pour l&#39;insuffisance cardiaque chez le rat: Double thoracotomie pour infarctus du myocarde et épicardique implantation de cellules et Biomatrice

Cardiac cell therapy has gained increasing interest and implantation of biomaterials associated with cells has become a major issue to optimize myocardial ...

L'objectif de cette procédure est d'effectuer une double thoracotomie sur des rats afin de réaliser une ligature coronaire et une application épipéricardique. Cela est accompli en réalisant d'abord une thoracotomie au niveau de l'espace intercostal quatrième. Ensuite, l'artère coronaire descendante antérieure, ou LAD, est ligaturée.Ensuite, une seconde thoracotomie est réalisée deux semaines plus tard au niveau de l'espace intercostal cinq. Enfin, les cellules et la matrice sont appliquées à la surface du cœur infarctus en battement. En définitive, une échocardiographie est effectuée pour évaluer la fonction cardiaque et une histologie est réalisée par mesure de la taille de l'infarctus.L'avantage principal de cette technique par rapport aux méthodes existantes, comme la sternotomie, est qu'il s'agit d'une approche peu invasive. La démonstration de la procédure sera effectuée et ine Lopez enverra des collaborateurs de notre laboratoire. Tous les animaux ont été traités conformément aux recommandations de la F-E-L-A-S-A et à la loi suisse sur la protection des animaux. Après avoir saigné à blanc un rat, isolé et nettoyé les os fémoraux selon le protocole décrit, utilisez des ciseaux

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