Name: Analyser le Mouvement de la Nauplios Artemia salina Par suivi optique de plasmons de surface de nanoparticules (Vidéo) | JoVE Journal
Uploaded: 2014-07-15T14:00:00.000+00:00
Duration: 5 min 52 s
Description: Découvrez l'analyse du mouvement des nauplios Artemia salina par suivi optique de nanoparticules plasmoniques. Cette méthode utilise des pinces optiques pour caractériser les fréquences de déplacement de ces micro-organismes aquatiques.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

Le soutien financier par l&#39;ERC par Advanced Investigator Grant HYMEM, par la DFG par la nanosystèmes Initiative Munich (NIM) et par la Sonderforschungsbereich (SFB1032), projet A8 est grandement appréciée. Nous sommes reconnaissants au Dr Alexander Ohlinger, le Dr Sol Carretero-Palacios et spas Nedev de soutien et de discussions fructueuses.

1. Installation expérimentale <ol><li> Utiliser un microscope en haut à droite et un champ sombre condenseur d&#39;huile avec une ouverture numérique (NA) = 1,2 pour l&#39;éclairage de champ sombre. Utilisez un objectif à immersion d&#39;eau avec un grossissement de 100X et un NA = 1,0 pour les observations de particules et le piégeage. Utilisez un objectif de l&#39;air avec un grossissement de 10X et un NA = 0,2 pour suivre le mouvement de la Nauplios. </li><li> Utilisez une configuration de pinces optiques avec un laser nm 1064 à onde continue couplée dans le microscope en haut à droite. Régler la puissance de laser du piège optique à 100 mW (mesurée avec un appareil de mesure de puissance après l&#39;objectif). </li><li> Utilisez un appareil photo à haute vitesse CMOS ou un reflex numérique unique objectif (DSLR) de la caméra pour détecter et l&#39;image du mouvement de particules d&#39;or dans le piège optique et le mouvement de la Nauplios. </li><li> Utiliser un filtre coupe-bande pour éviter que le laser de pénétrer dans l&#39;appareil. </li><li> Utiliser un wattmètre pour mesurer la puissance du laser après l&#39;objectif. </li></ol> 2. Préparation de l&#39;échantillon </p&gt; <ol><li> Pipeter une gouttelette d&#39;eau (180 ul) sur une lame de verre de microscope et la position de l&#39;échantillon sur le microscope à fond noir. </li><li> Pipeter une Nauplios à partir d&#39;un petit réservoir d&#39;eau de la goutte d&#39;eau. </li><li> Utilisation d&#39;un objectif 10X d&#39;air pour observer le mouvement de la Nauplios dans la solution et d&#39;enregistrer un flux vidéo. </li><li> Utilisation d&#39;une nanoparticule d&#39;or d&#39;un diamètre de 60 nm en tant que détecteur d&#39;observer le mouvement du fluide généré par l&#39;Nauplios. Par conséquent, ajouter 5 ul d&#39;une solution très diluée de particules dans la gouttelette d&#39;eau, de sorte que d&#39;environ une particule peut être vue dans le champ de vision avec un objectif à immersion dans l&#39;eau de 100X. </li></ol> 3. Particules Suivi Expérience <ol><li> Piège une nanoparticule d&#39;or avec la pince optique. Par conséquent, amener le laser de piégeage de 1064 nm à proximité d&#39;une nanoparticule d&#39;or qui se diffuse dans la solution en déplaçant la platine du microscope. Les forces optiques intéressantes tirent la nanoparticule d&#39;or vers le point focal du ee faisceau laser. La particule piégée est pas plus diffuse et plutôt maintient sa position. Prenez un flux vidéo de la nanoparticule piégé avec l&#39;appareil photo reflex numérique à un taux de 50 Hz pour 30 sec de cadre. </li><li> Éteignez le laser de la pince optique et libérer la nanoparticule d&#39;or du piège. </li><li> Utilisez un programme de suivi de particules à la lecture de la position de la particule d&#39;or optiquement piégé à chaque trame du flux vidéo. Une transformation de Fourier rapide (FFT) de xy-position de la particule au cours du temps montre un spectre de fréquences. NOTE: Ici, un code de programme informatique &#39;IGOR PRO&#39; auto-écrite a été utilisé pour analyser la position de centre de la particule dans le plan xy au fil du temps et de l&#39;analyse FFT. </li><li> Comme une alternative à un code IGOR auto-écrite utiliser le programme gratuit &quot;Vidéo spot Tracker» pour le suivi de la particule dans la vidéo. Utilisez le logiciel commercial «Origine» pour effectuer la transformation de Fourier des données de suivi: <ol&gt; <li> Faites glisser le fichier vidéo pour le programme ouvert »Vidéo spot Tracker. </li><li> Clic de souris sur la particule vu dans la première image du flux vidéo et une région d&#39;intérêt circulaire apparaît. </li><li> Choisissez &quot;symétrique&quot; et &quot;optimiser&quot; dans le haut commandement fenêtre d&#39;invite à optimiser le suivi de la particule. </li><li> Clic de souris &quot;exploitation forestière&quot; dans le haut commandement fenêtre d&#39;invite et choisir un dossier pour enregistrer les données. Les données de suivi seront enregistrés comme une feuille de données. </li><li> Clic de souris &quot;jeu vidéo&quot; sur la fenêtre de commande gauche du programme de suivi et de patienter jusqu&#39;à ce que tous les cadres de la vidéo sont analysés. </li><li> Fermez le programme et ouvrir la feuille de calcul des données enregistrées avec «Origine». Définissez les valeurs de colonne comme &quot;y 1&quot; et &quot;2 y&quot;. </li><li> Situé pas de temps pour chaque image vidéo comme &quot;x&quot; dans la feuille de calcul de données &#39;origine&#39;. </li><li> Mark xPosition colonne et effectuer une FFT en choisissant &quot;Analyse des données&quot; et &quot;FFT&quot; dans le haut commandement fenêtre d&#39;invite. Répétez l&#39;étape pour la colonne de la position y. </li><li> Tracer les amplitudes du signal FFT calculé en x et la direction y par rapport à la fréquence. </li></ol></li></ol> 4. Simulation numérique <ol><li> Calculer les α de polarisabilité de la particule 60 nm d&#39;or en utilisant le programme informatique «Mathematica». <ol><li> Utiliser l&#39;équation (1) pour le calcul de la polarisabilité selon Kuwata et al 16.: <img alt="Equation 1" fo:content-width="3in" src="/files/ftp_upload/51502/51502eq1.jpg" width="300" /> (1) </li><li> Définir les trois paramètres suivants dans le code de programme: la fonction diélectrique complexe dépendant de la longueur d&#39;onde de la particule d&#39;or, le rayon de la nanoparticule, et l&#39;indice de réfraction du milieu environnant. </li></ol></li><li> Utiliser la description des élecdistribution du champ trique d&#39;un faisceau gaussien focalisé selon Agayan et al 17 pour le calcul des forces optiques agissant sur ​​une particule d&#39;or de 60 nm.: <img alt="Equation 2" fo:content-width="4in" src="/files/ftp_upload/51502/51502eq2.jpg" width="500" /> (2) <ol><li> . Utilisation des équations (3) - (6) à partir de Agayan et al 17 pour calculer à la fois, et le gradient de diffusion des forces agissant sur ​​la particule: <img alt="Equation 3" fo:content-width="3.5in" src="/files/ftp_upload/51502/51502eq3.jpg" width="350" /> (3) <img alt="Equation 4" fo:content-width="3in" src="/files/ftp_upload/51502/51502eq4.jpg" width="300" /> (4) <img alt="Equation 5" fo:content-width="5in" src="/files/ftp_upload/51502/51502eq5.jpg" width="500" /> (5) <img alt="Equation 6" fo:content-width="3in" src="/files/ftp_upload/51502/51502eq6.jpg" width="300" /> (6) </li><li> Dans le code de programme, de définir les paramètres de la puissance du laser, l&#39;ouverture numérique de l&#39;objectif, et la polarisabilité complexe de la nanoparticule. </li><li> Résumer la force de gradient et la force de diffusion pour calculer la force optique totale agissant sur la particule d&#39;or dans un piège optique. </li></ol></li><li> Lancer la simulation en appuyant simultanément sur &quot;Control&quot; et &quot;Enter&quot;. </li></ol>

<ol><li>Hellawell, J. M. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aHellawell%2C+JM+%22Biological+indicators+of+freshwater+pollution+and+environmental+management%22">Biological indicators of freshwater pollution and environmental management</a>. , Elsevier Applied Science Publishers. (1986).</li>
<li>Diamond, J. M., Barbour, M. T., Stribling, J. B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Characterizing+and+comparing+bioassessment+approaches+and+their+results%3A+A+perspective%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+the+North+American+Benthological+Society%22%5BJournal%5D)">Characterizing and comparing bioassessment approaches and their results: A perspective.</a> Journal of the North American Benthological Society. 15, 713-727 (1996).</li>
<li>Carlisle, D. M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+quality+of+our+Nation%E2%80%99s+waters%E2%80%94Ecological+health+in+the+Nation%E2%80%99s+streams%2C+1993%E2%80%932005%5BTitle%5D)+AND+%22U.S.+Geological+Survey+Circular%22%5BJournal%5D)">The quality of our Nation’s waters—Ecological health in the Nation’s streams, 1993–2005.</a> U.S. Geological Survey Circular. 1391, (2013).</li>
<li>Boxhall, G. A., Defaye, D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Global+diversity+of+copepods+%28Crustacea+Copepoda%29+in+freshwater%5BTitle%5D)+AND+%22Hydrobiologia%22%5BJournal%5D)">Global diversity of copepods (Crustacea Copepoda) in freshwater.</a> Hydrobiologia. 595 (1), 195-207 (2008).</li>
<li>Ferdous, Z., Muktadir, A. K. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+Review%3A+Potentiality+of+Zooplankton+as+Bioindicator%5BTitle%5D)+AND+%22American+Journal+of+Applied+Sciences%22%5BJournal%5D)">A Review: Potentiality of Zooplankton as Bioindicator.</a> American Journal of Applied Sciences. 6 (10), 1815-1819 (2009).</li>
<li>Andersen Borg, C. M., Bruno, E., Kiørboe, T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+Kinematics+of+Swimming+and+Relocation+Jumps+in+Copepod+Nauplii%5BTitle%5D)+AND+%22PLoS+ONE%22%5BJournal%5D)">The Kinematics of Swimming and Relocation Jumps in Copepod Nauplii.</a> PLoS ONE. 7 (10), (2012).</li>
<li>Gilchrist, B. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Growth+and+Form+of+the+Brine+Shrimp+Artemia+Salina%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Zoology%22%5BJournal%5D)">Growth and Form of the Brine Shrimp Artemia Salina.</a> Journal of Zoology. 134 (2), 221-235 (1960).</li>
<li>Boone, E., Baas-Becking, L. G. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Salt+Effects+on+Egga+and+Nauplii+of+Artemia+Salina+L%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+General+Physiology%22%5BJournal%5D)">Salt Effects on Egga and Nauplii of Artemia Salina L.</a> Journal of General Physiology. 14 (6), 453-763 (1931).</li>
<li>Drewes, C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Quantitative+investigations+of+hatching+in+brine+shrimp+cysts%5BTitle%5D)+AND+%22Association+for+Biology+Laboratory+Education%22%5BJournal%5D)">Quantitative investigations of hatching in brine shrimp cysts.</a> Association for Biology Laboratory Education. 27, 299-312 (2006).</li>
<li>Williams, T. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+model+of+rowing+propulsion+and+the+ontogeny+of+locomotion+in+Artemia+larvae%5BTitle%5D)+AND+%22Biological+Bulletin%22%5BJournal%5D)">A model of rowing propulsion and the ontogeny of locomotion in Artemia larvae.</a> Biological Bulletin. 187, 164-173 (1994).</li>
<li>Croghan, P. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+Mechanism+of+Osmotic+Regulation+in+the+Artemia+Salina+%28L.%29%3A+The+Physiology+of+the+Branchiae%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Experimental+Biology%22%5BJournal%5D)">The Mechanism of Osmotic Regulation in the Artemia Salina (L.): The Physiology of the Branchiae.</a> Journal of Experimental Biology. 35, 234-242 (1958).</li>
<li>Ashkin, A., Dziedzic, J. M., Bjorkholm, J. E., Chu, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Observation+of+a+single-beam+gradient+force+optical+trap+for+dielectric+particles%5BTitle%5D)+AND+%22Optics+Letters%22%5BJournal%5D)">Observation of a single-beam gradient force optical trap for dielectric particles.</a> Optics Letters. 11 (5), 288-290 (1986).</li>
<li>Svoboda, K., Block, S. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Optical+trapping+of+metallic+Rayleigh+particles%5BTitle%5D)+AND+%22Optics+Letters%22%5BJournal%5D)">Optical trapping of metallic Rayleigh particles.</a> Optics Letters. 19 (13), 930-932 (1994).</li>
<li>Hansen, P. M., Bhatia, V. K., Harrit, N., Oddershede, L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Expanding+the+Optical+Trapping+Range+of+Gold+Nanoparticles%5BTitle%5D)+AND+%22Nano+Letters%22%5BJournal%5D)">Expanding the Optical Trapping Range of Gold Nanoparticles.</a> Nano Letters. 5 (10), 1937-1942 (2005).</li>
<li>Ohlinger, A., Deak, A., Lutich, A. A., Feldmann, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Optically+Trapped+Gold+Nanoparticle+Enables+Listening+at+the+Microscale%5BTitle%5D)+AND+%22Physical+Review+Letters%22%5BJournal%5D)">Optically Trapped Gold Nanoparticle Enables Listening at the Microscale.</a> Physical Review Letters. 108 (1), (2012).</li>
<li>Kuwata, H., Tamaru, H., Esumi, K., Miyano, K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Resonant+light+scattering+particles%3A+Practical+analysis+beyond+Rayleigh+approximation%5BTitle%5D)+AND+%22Applied+Physics+Letters%22%5BJournal%5D)">Resonant light scattering particles: Practical analysis beyond Rayleigh approximation.</a> Applied Physics Letters. 83 (22), 4625-4628 (2003).</li>
<li>Agayan, R. R., Gittes, F., Kopelman, R., Schmidt, C. F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Optical+trapping+near+resonance+absorption%5BTitle%5D)+AND+%22Applied+Optics%22%5BJournal%5D)">Optical trapping near resonance absorption.</a> Applied Optics. 41 (12), 2318-2327 (2002).</li>
<li>Klar, T., Perner, M., Grosse, S., von Plessen, G., Spirkl, W., Feldmann, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Surface-Plasmon+Resonances+in+Single+Metallic+Nanoparticles%5BTitle%5D)+AND+%22Physical+Review+Letters%22%5BJournal%5D)">Surface-Plasmon Resonances in Single Metallic Nanoparticles.</a> Physical Review Letters. 80, 4249-4252 (1998).</li>
<li>Ohlinger, A., Nedev, S., Lutich, A. A., Feldmann, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Optothermal+Escape+of+Plasmonically+Coupled+Silver+Nanoparticles+from+a+Three-Dimensional+Optical+Trap%5BTitle%5D)+AND+%22Nano+Letters%22%5BJournal%5D)">Optothermal Escape of Plasmonically Coupled Silver Nanoparticles from a Three-Dimensional Optical Trap.</a> Nano Letters. 11 (4), 1770-1774 (2011).</li>
<li>Urban, A. S., Lutich, A. A., Stefani, F. D., Feldmann, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Laser+Printing+Single+Gold+Nanoparticles.+Nano+Letters%5BTitle%5D)+AND+%22Nano+Letters%22%5BJournal%5D)">Laser Printing Single Gold Nanoparticles. Nano Letters.</a> Nano Letters. 10 (12), 4794-4798 (2010).</li>
<li>Urban, A. S., Fedoru, K. M., Nedev, S., Lutich, A., Lohmueller, T., Feldmann, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Shrink-to-fit+Plasmonic+Nanostructures%5BTitle%5D)+AND+%22Advanced+Optical+Materials%22%5BJournal%5D)">Shrink-to-fit Plasmonic Nanostructures.</a> Advanced Optical Materials. 1 (2), 123-127 (2013).</li>
</ol>

Les auteurs déclarent qu&#39;ils n&#39;ont aucun intérêt financier concurrents.

Microscopie en champ sombre est un outil puissant pour la visualisation de nanoparticules d&#39;or avec des dimensions inférieures à la limite de diffraction optique, depuis la section efficace de diffusion des nanoparticules métalliques dépasse leur section géométrique (cf. figure 2A) 18. Dans une configuration de type brucelles, cette approche permet de distinguer même si seulement un seul ou plusieurs des nanoparticules d&#39;or sont piégés par le faisceau laser, car le couplage plasmoniqu...

évaluation de la qualité de l&#39;eau basée sur des indicateurs chimiques et biologiques est d&#39;une importance fondamentale pour mieux comprendre les conditions de l&#39;Etat et de l&#39;environnement d&#39;un écosystème aquatique 1-3. Les méthodes classiques d&#39;analyse chimique de l&#39;eau sont basées sur les propriétés organoleptiques ou la détermination des paramètres physico-chimiques. Les indicateurs biologiques, d&#39;autre part, sont des espèces animales dont la présence et la viabilité donner un aperçu sur les conditions environnementales et l&#39;effet des polluants pour un écosystème qui se produisent po exemples typiques de bio-indicateurs sont copépodes, un groupe de petits crustacés d&#39;eau, qui peut être trouvé dans presque toutes les 4,5 de l&#39;habitat de l&#39;eau. Observer l&#39;activité et la viabilité de ces espèces à partir d&#39;un échantillon d&#39;eau peut ainsi être utilisée pour obtenir des informations sur les conditions générales de l&#39;écosystème 5. Les larves de copépodes, qui sont appelés Nauplii, utilisez coups rythmiques de leurs antennes (larve possède trois paires de appendages à leur région de la tête) de nager dans l&#39;eau 6. La fréquence et l&#39;intensité de ces coups est ainsi un indicateur direct de l&#39;âge, la condition physique, et les conditions environnementales de l&#39;animal 7-10. Toutes les enquêtes sur ces spécimens sont généralement effectués avec un microscope par l&#39;observation et le comptage des coups d&#39;antenne de l&#39;Nauplii directement. En raison de leur taille (~ 100-500 um) 11, cela nécessite souvent de faire des mesures soit un par un ou de fixer un seul Nauplios à un substrat. Ici, nous démontrons une nouvelle approche pour observer l&#39;activité de copépodes larves dans les échantillons d&#39;eau à l&#39;aide d&#39;une nanoparticule d&#39;or optiquement piégé comme un détecteur ultra-sensible. Pinces optiques sont généralement utilisés par de nombreux groupes comme un outil expérimental amende à appliquer ou mesurer des forces entre les molécules jusqu&#39;à la plage de piconewton 12-14. Plus récemment, la gamme d&#39;applications pour les pinces optiques a été élargie pour observer les vibrations acoustiques et résoudrefluctuations nt en milieu liquide en surveillant le mouvement de nano-et microparticules qui sont confinés dans un piège optique 15. Les particules qui sont immergés dans un liquide sont soumis à un mouvement brownien. L&#39;intérieur d&#39;un piège optique, cependant, cette motion est partiellement atténué par une forte, induite par laser, la force de gradient. Par conséquent, la rigidité du piège optique et la localisation de la particule dans le foyer du faisceau laser peuvent être réglées par la puissance du laser. Dans le même temps, il est possible de révéler des caractéristiques concernant le potentiel de piégeage et d&#39;analyser les interactions des molécules avec la particule en surveillant le mouvement des particules en fonction du temps dans le piège. Cette approche rend possible de récupérer la fréquence, l&#39;intensité et la direction du mouvement fluidique qui est généré par un objet en mouvement dans son environnement liquide. Nous montrons comment cette idée générale peut être appliquée pour obtenir un spectre de fréquence du mouvement d&#39;un individu Nauplios sans l&#39;exigenced&#39;interférer directement avec le spécimen. Cette approche expérimentale introduit un nouveau concept général pour l&#39;observation du comportement mobiles de spécimens aquatiques d&#39;une manière très sensible. Pour les observations sur les espèces bio-indicatrices, ce qui pourrait élargir la méthodologie actuelle pour l&#39;analyse de l&#39;eau et pourrait être appliqué pour obtenir des informations sur la santé et l&#39;intégrité des écosystèmes aquatiques.

<table><tbody><tr><td>Microscope Zeiss Axio Scope.A1</td><td>Carl Zeiss</td><td>490035-0012-000</td><td>Éclairage en fond noir</td></tr><tr><td>Objectif à eau Achroplan</td><td>Carl Zeiss</td><td>440087</td><td>Grossissement 100X, NA = 1,0</td></tr><tr><td>Objectif à air Epiplan</td><td>Carl Zeiss</td><td>442934</td><td>Grossissement 10X, NA = 0,2</td></tr><tr><td>Condenseur à huile en champ noir</td><td>Carl Zeiss</td><td>445323</td><td>NA = 1,2</td></tr><tr><td>Cobolt Rumba CW 1 064 nm DPSSL</td><td>Cobolt</td><td>1064-05-01-2000-500</td><td>1 064 nm, CW, &lambda ; = 1 064 nm, 2 Watt, TEM00</td></tr><tr><td>Expanseur de faisceau</td><td>Edmund Optics</td><td></td><td>Réf. 1064 2-8X 64414</td></tr><tr><td>Caméra haute vitesse Dimax HD</td><td>PCO. Allemagne</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Appareil photo couleur Canon EOS 500 D&nbsp ;</td><td></td><td></td><td>Canon FAQ-ID : 8201395700</td></tr><tr><td>Filtre coupe-bande StopLine 532/1064</td><td>Semrock</td><td>A11149-711265</td><td>Réf. NF01-532U</td></tr><tr><td>Eau&nbsp ;</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Nauplius Artemia salina</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Gold colloïde</td><td>BBInternational</td><td>Batch 13741&nbsp ;</td><td>Diamètre 60 nm</td></tr><tr><td>MQMie version 3.2&nbsp ;</td><td>Dr. Michael Quinten</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Mathematica 8.0</td><td>Wolfram</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Comsol Multiphysics 4.0&nbsp ;</td><td>COMSOL, Inc.</td><td></td><td></td></tr></tbody></table>

analyser le mouvement de la nauplios &#39;<em&gt; artemia salina</em&gt; &#39;par suivi optique de plasmons de surface de nanoparticules

Analyzing the Movement of the Nauplius 'Artemia salina' by Optical Tracking of Plasmonic Nanoparticles

Nous montrons comment pinces optiques peuvent fournir un outil sensible pour analyser les vibrations fluidiques générées par le mouvement de petits organismes aquatiques. Une nanoparticule d&#39;or unique détenu par une pince optique est utilisé comme un capteur de quantifier le mouvement rythmique d&#39;une larve Nauplios (Artemia salina) dans un échantillon d&#39;eau. Ceci est réalisé en surveillant le déplacement dépendant de la nanoparticule piégé de temps comme une conséquence de l&#39;activité Nauplios. Une analyse de Fourier de la position de la nanoparticule obtient ainsi un spectre de fréquence qui est caractéristique pour le mouvement des espèces observées. Cette expérience démontre la capacité de cette méthode pour mesurer et caractériser l&#39;activité des petites larves aquatiques sans l&#39;obligation de les observer directement et à obtenir des informations sur la position des larves par rapport à la particule piégée. Dans l&#39;ensemble, cette approche pourrait donner un aperçu de la vitalité de certaines espèces trouvées dans un e aquatiquecosystem et pourrait élargir l&#39;éventail des méthodes classiques d&#39;analyse des échantillons d&#39;eau.

Une illustration schématique du dispositif expérimental est représenté sur la Figure 1A. Une configuration de champ foncé est nécessaire pour détecter optiquement le déplacement d&#39;une particule d&#39;or de 60 nm dans un piège optique 15. La longueur d&#39;onde de 1064 nm pour le laser de piégeage est choisie pour garantir un confinement stable du 12,14 de particules d&#39;or de détecteur. Un diviseur de faisceau dans le microscope est utilisé pour focaliser le faisceau de piége...

Nous utilisons suivi optique de nanoparticules plasmoniques à sonder et à caractériser les mouvements de fréquence d&#39;organismes aquatiques.

Analyser le Mouvement de la Nauplios &#39;<em&gt; Artemia salina</em&gt; &#39;Par suivi optique de plasmons de surface de nanoparticules

We demonstrate how optical tweezers may provide a sensitive tool to analyze the fluidic vibrations generated by the movement of small aquatic organisms. A ...

L'objectif général de cette procédure est d'analyser les fréquences du mouvement d'un microorganisme aquatique à l'aide d'une nanoparticule plasmonique piégée optiquement. Cela est réalisé en premier lieu en observant des larves OPIS dans l'eau au microscope, équipé d'une pince optique et d'une caméra. La deuxième étape consiste à ajouter des nanoparticules d'or de 16 nanomètres de diamètre dans l'environnement des OPIS.Ensuite, la pince optique est utilisée pour piéger une nanoparticule d'or unique près des NOIs. La dernière étape consiste à observer la diffusion de la nanoparticule piégée sous l'influence du mouvement des Nous. Les données vidéo sont capturées et analysées à l'aide d'un logiciel de suivi de particules.En fin de compte, la position dépendante du temps de la nanoparticule est transformée dans l'espace de Fourier afin d'extraire les fréquences de mouvement des nous. Le principal avantage de cette technique par rapport aux méthodes existantes telles que la microscopie classique réside dans le fait que les vibrations fluidiques sont analysées, et par conséquent, cette méthode n'est soumise à aucune limitation liée à la résolution optique. Cette méthode peut aider à répondre à des questions clés en écologie, telles que l'analyse de l'eau dans les écosystèmes socratiques.Commencez par préparer un microscope droit équipé pour l'éclairage en champ sombre. Fournissez au microscope un objectif à immersion dans l'eau et un objectif à air. En outre, couplez une pince optique en onde continue de 1064 nanomètres au microscope.Ensuite, montez une caméra équipée d'un filtre réjecteur de 1064 nanomètres pour détecter et imager le mouvement des particules d'or et d'opus. Utilisez un mesureur de puissance après l'objectif pour régler la puissance du laser à 1000 milliwatts. Éteignez le laser jusqu'à ce qu'il soit nécessaire.La préparation de l'échantillon commence par le pipetage d'une goutte d'eau de 180 microlitres sur une lame de microscope. Placez l'échantillon sur le microscope en champ sombre à ce stade, puis pipetez l'OPIS depuis un réservoir d'eau. Transférez-le dans la goutte d'eau.Sélectionnez l'objectif à air 10 x. Observez le mouvement de l'OPIS en solution et enregistrez un flux vidéo de dix secondes à 25 images par seconde. Une fois cela terminé, préparez-vous pour l'étape suivante.Diluez une partie de solution mère de nanoparticules d'or de 60 nanomètres de diamètre dans 100 parties d'eau. Retournez au microscope et prélevez cinq microlitres de la solution. Ajoutez-les à la goutte d'eau à l'aide d'opus.Lorsque vous êtes prêt, passez à un objectif à immersion d'eau de 100 x. Pour observer la goutte d'eau, procédez lorsque environ une nanoparticule d'or est visible dans le champ. Pour piéger une particule, activez le laser du piège optique et observez la goutte.Déplacez la platine du microscope pour amener le faisceau laser près d'une nanoparticule d'or. La particule sera attirée vers le point focal du faisceau laser et cessera de diffuser. Enregistrez une vidéo de la nanoparticule piégée à 50 images par seconde pendant 30 secondes, puis éteignez le laser du piège optique pour libérer la particule du piège.L'étape suivante consiste à analyser la vidéo sur un ordinateur. Utilisez un logiciel de suivi de particules pour déterminer la position XY de la particule en fonction du temps, puis déterminez le spectre de fréquence à l'aide d'une transformée de Fourier rapide de ces données. Ce graphique montre le déplacement XY d'une nanoparticule d'or piégée, qui ne subit que le mouvement brownien.La distribution est gaussienne. Après l'ajout d'un OIS à l'eau, le déplacement XY de la particule change en raison de vibrations fluidiques. L'écoulement microfluidique généré par l'animal provoque une distorsion dépendante de la fréquence dans la direction Y.Ces graphiques montrent les spectres de fréquence dans les directions x et y en noir, un spectre de référence pour une particule piégée optiquement qui n'est pas en présence d'OPIS. Les courbes rouges montrent les spectres d'une particule piégée avec un OPIS en mouvement. Le spectre dans la direction X ne présente pas de signal intense en raison de la position de l'OPIS par rapport à la particule piégée.L'écoulement est principalement dans la direction Y, comme indiqué dans l'encart. Le spectre dans la direction Y, enregistré avec les boutons de nage, montre une réponse. La réponse fréquentielle large dans la mesure est compatible avec la motilité de l'organisme, par exemple le mouvement de l'antenne principale ou d'autres parties du corps.Maxima de fréquence. À travers toutes les mesures, les maxima se sont révélés compris entre 3,0 et 7,2 hertz, en bon accord avec les fréquences observées directement. Une fois maîtrisée, cette technique peut être réalisée en moins de 30 minutes si elle est effectuée correctement.Lors de la réalisation de cette procédure, il est important de se rappeler d'assurer un piégeage tridimensionnel stable du nanoparticule d'or à l'aide de forces optiques.

analyzing-movement-nauplius-artemia-salina-optical-tracking-plasmonic

Research

Recherche

JoVE Journal

Engineering

Ingénierie

Brucelles plasmonique et nanostructures cristaux photoniques sont présentés à produire des améliorations utiles dans le contrôle de l'efficacité et l'orientation de piégeage optique des micro-et nano-particules.

L&#39;utilisation de nanostructures cristal plasmonique et photoniques pour la manipulation des micro-et nanoparticules améliorée

Nous avons développé un système de vidéo-microscope taux de suivi qui permet d'enregistrer et de...

C. elegans Suivi et évaluation comportementale

Organismes microscopiques comme le nématode nage...

Étude quantitative de la Locomotion librement Piscine Micro-organismes utilisant la diffraction laser

Les détails qui suivent l'approche de configuration de piégeage faible puissance optique diélectrique des nanoparticules à l'aide d'un double-nanotrou dans le film métallique.

Le piégeage optique de nanoparticules

Un procédé de fabrication de puce électronique qui intègre une pince à épiler plasmoniques est présentée ici. La puce permet de mesurer l'imagerie d'une particule piégée forces de piégeage maximale.

Plasmonique et Piégeage Libération de Nanoparticules dans un environnement de surveillance

Nous décrivons une procédure pour intercepter optiquement micro-particules dans nanoplasmonic réseau optique.

Piégeage de Micro particules dans trellis optique Nanoplasmonic

Détails de ce protocole la construction et l’exploitation d’un microscope de suivi en temps réel 3D seule particule capable de suivi échelle nanométrique fluorescent sondes à grande vitesse par diffusion et taux de comptage de photons de faible.

Un protocole pour un suivi en temps réel 3D seule particule

Nous présentons ici un protocole afin de suivre individuellement les animaux sur une longue période de temps. Il utilise la vision par ordinateur pour identifier un ensemble de balises construits manuellement en utilisant un groupe de homards comme étude de cas, en fournissant des informations sur la façon de la maison, manipuler et marque les homards.

Suivi à long terme de vidéo d’animaux aquatiques Cohoused : une étude de cas de l’activité locomotrice quotidienne de la langoustine (Nephrops norvegicus)

Nous présentons ici les méthodes d’étude haut débit d’une série de la mexicaine agassizii comportements et coloration vitale d’un système de mécanosensoriels. Ces méthodes utilisent des scripts logiciel libre et sur mesure, fournissant une méthode pratique et rentable pour l’étude des comportements.

Suivi comportemental et l’imagerie de Neuromast des Mexicains Agassizii

Ici, nous montrons l’utilisation de la microscopie traditionnelle en champ sombre pour surveiller la dynamique des nanorods d’or (AuNRs) sur la membrane cellulaire. L’emplacement et l’orientation des aunrs simples sont détectés à l’aide d’ImageJ et de MATLAB, et les états diffusifs des AuNRs sont caractérisés par une analyse unique du suivi des particules.

Visualisation de la dynamique diffusionnelle des nanorods d’or sur la membrane cellulaire à l’aide d’une microscopie darkfield nanoparticule unique

Les nanopinces plasmoniques utilisent la résonance plasmonique de surface localisée dans les nanostructures d’or pour piéger des nanoparticules uniques, y compris des protéines, dans un champ optique à l’échelle nanométrique. Les modifications du signal diffusé révèlent la présence de protéines et la dynamique conformationnelle, ce qui permet une surveillance sans modifications de fluorophores ni attache de surface.

Surveillance de la dynamique conformationnelle de protéines uniques non modifiées à l’aide de nanoweezers plasmoniques

Découvrez l'analyse du mouvement des nauplios Artemia salina par suivi optique de nanoparticules plasmoniques. Cette méthode utilise des pinces optiques pour caractériser les fréquences de déplacement de ces micro-organismes aquatiques.

Analyser le Mouvement de la Nauplios '

Explorer plus de vidéos