Name: Neurones olfactifs obtenus à laide biopsie nasale combinée avec laser-Microdissection: Une approche potentielle pour étudier la réponse au traitement dans les troubles mentaux (Vidéo) | JoVE Journal
Uploaded: 2014-12-04T13:00:00.000+00:00
Duration: 8 min 33 s
Description: Découvrez la microdissection laser pour isoler des neurones olfactifs à partir de biopsies nasales et analyser l'expression génique par QPCR. Cette méthode permet d'étudier les réponses moléculaires au lithium dans le trouble bipolaire.

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Nous apprécions sincèrement les efforts et les contributions de Pearl Kim, Maria Papapavlou, Nao Gamo, Youjin Chung, Yukiko Lema et Mark Christie pour la coordination du processus de biopsie.

REMARQUE: Tous les bénévoles de recherche dans cette étude ont été administrés documents de consentement éclairé approuvés par la Commission de révision institutionnel de l&#39;Université Howard et l&#39;Université Johns Hopkins. Seuls les participants qui ont accepté en signant les documents de consentement éclairé ont été enrôlés dans l&#39;étude. La base d&#39;étude pour cette analyse a consisté à: 20 sujets (12 BD et 10 contrôles, 30% des hommes) et l&#39;âge (sd) de 38,2 (14,1) ans signifie. REMARQUE: Vaporiser toutes les surfaces avec Zap RNase pour éliminer la contamination RNase des surfaces de verre et de plastique. 1. Procédure biopsie <ol><li> Vaporiser actualité lidocaïne (xylocaïne) liquide 4% et oxymétazoline HCl 0,05% dans la cavité nasale du participant à l&#39;étude et de permettre 15 minutes de temps d&#39;engourdissement. </li><li> Faire tremper cottonoids chirurgicales ½ x 3 pouces dans un mélange de lidocaïne et oxymétazoline et l&#39;insérer dans la cavité nasale long de la partie supérieure de la cloison nasale et laisser reposer pendant 15 min. </li><li> L&#39;utilisation d&#39;un 30 ° rigideendoscope nasal pour localiser la partie supérieure de la cavité nasale, supprimer la muqueuse nasale en utilisant jusqu&#39;à ronger pince nasales de la partie supérieure de la cloison nasale, en prenant plusieurs petits spécimens. </li></ol> 2. Préparation des blocs de tissus <ol><li> Immédiatement avant la biopsie, remplissez cryomoules de taille standard avec le tissu milieu de congélation. </li><li> Aide de pincettes autoclave, monter tissu frais dans le milieu de congélation et de geler sur glace sèche. Remplissez reste de cryoblock avec le milieu congélation, cryoblock sur glace sèche, et les blocs de magasins à -80 ° C. </li></ol> 3. Cryosectioning <ol><li> Préparer polyéthylène (PEN) des lames de verre de la membrane immédiatement avant cryosectioning. Vaporiser diapositives avec une solution RNase Zap pendant 5 min. Ensuite, rincer les lames dans de diéthyle (DEPC) l&#39;eau et laissez sécher à l&#39;air pendant 30 min. Activer diapositives séché sous lumière UV pendant 30 minutes. </li><li> Cryosection chaque bloc entièrement à 30 um. Gardez diapositives sur i secCE, et des sections congelées autant que possible. Stocker les lames à -80 ºC à la fin. </li></ol> 4. Laser-Microdissection <ol><li> Commencez par déshydratation diapositives immédiatement avant microdissection. Laissez diapositives congelés dégeler pendant 10 secondes, puis appliquez la série de l&#39;éthanol suivant pour chaque diapositive: 60% (2 ml, 15 sec), 80% (2 ml, 15 sec), 95% (3 ml, 25 sec), 100 % (7 ml, 60 sec). </li><li> Tournez la microscopie de localisation photoactivé (PALM) microscope et réglez les conditions suivantes: Pour un grossissement 10X mettre l&#39;énergie à 82, se concentrer à 74, et la vitesse à 25 - 30. Pour 20X, définissez l&#39;énergie à 63, se concentrer à 67, et la vitesse à 5 - 6. Réglez que nécessaire pour obtenir des résultats de coupe optimaux. </li><li> Identifier visuellement neurones utilisant 20X ou grossissement 10X. Distinguer la surface fine couche de neurone olfactif de la sous-muqueuse sous-jacente sous un microscope sans l&#39;utilisation de la procédure de coloration. Observer les neurones comme un aspect colonnaire dense 18.</li><li> Utilisation de la fonction Crayon dans le microscope précité à l&#39;étape 4.2, tracer autour de la couche neuronale. Tracez un peu loin de neurones pour éviter de brûler des neurones du laser. Ceci est essentiel pour l&#39;obtention d&#39;ARN de haute qualité. Puis lancer laser guidé coupe. </li><li> Pick-up sections disséqués utilisant pince fine de microdissection de pointe et de mettre le tissu dans un microtube contenant 100 pi de tampon de lyse sur la glace. Répétez l&#39;opération pour toutes les sections de neurones obtenus à partir d&#39;un seul échantillon. Temps de dissection totale par échantillon ne doit pas dépasser 50 min. </li><li> Une fois la dissection est terminée, immédiatement lysats d&#39;échantillons de vortex et de garder sur la glace sèche. Conserver les échantillons à -80 ° C pour l&#39;isolement de l&#39;ARN total. </li></ol> 5. Isolement de l&#39;ARN total et de l&#39;analyse de contrôle de qualité <ol><li> Lysats d&#39;échantillons dégel sur la glace. Effectuer un isolement total d&#39;ARN avec RNAqueous Micro Kit avec DNase-je inactivation en suivant le protocole du fabricant sans modifications (voir &lt;strong&gt; Figure 1). Le volume d&#39;élution totale est d&#39;environ 20 ul. </li><li> Mesurer la concentration d&#39;ARN et d&#39;évaluer la qualité de l&#39;ARN avec l&#39;ARN Nombre intégrité (RIN) en utilisant Bioanalyzer. Les échantillons qui satisfont aux critères de contrôle de qualité de la figure 2 peuvent être utilisés pour la synthèse d&#39;ADNc. </li></ol> 6. cDNA Synthesis <ol><li> Synthétiser l&#39;ADNc en utilisant un kit commercial validé (voir le tableau des réactifs). Effectuer l&#39;étape de recuit en combinant 0,1 à 1,0 ng d&#39;ARN (selon disponibilité) et RNase eau libre à un volume total de 8 pi par tube. Puis ajouter 1 pl d&#39;oligo d (T) 20 amorce et 1 pl de 10 mM dNTP mix par tube, pour un volume total de 10 ul. </li><li> Doucement échantillons de vortex et centrifuger et des échantillons de recuit à 65 ° C pendant 5 min. Après la réaction est terminée, immédiatement les échantillons frais sur la glace. </li><li> Préparer la solution de mélange maître selon les spécifications du tableau 1. Puis ajouter 9,5 μl mélange maître et 0,5 ul de transcriptase inverse préparation du commerce (RT) à chaque tube. Ajouter 0,5 eau libre de RNase-pi de contrôler le tube à la place de la RT. </li><li> Exécutez une réaction RT avec la première incubation à 50 ° C pendant 50 min, puis 85 ° C pendant 5 minutes et une finale maintien à 4 ° C, sans vélo. </li><li> Diluer tous les échantillons par 5x avec de l&#39;eau et aliquote. Conserver les échantillons à -80 ºC. </li></ol> 7. PCR en temps réel - Confirmez neuronale Enrichissement <ol><li> Préparer la solution de mélange maître selon les spécifications dans le tableau 2. Utilisez un contrôle interne tels que GAPDH. Comparer olfactive protéine marqueur (OMP) expression dans le tissu microdisséqués avec l&#39;expression de OMP dans le tissu undissected pour déterminer l&#39;enrichissement neuronale. REMARQUE: OMP est un marqueur pour les neurones olfactifs. OMP séquence: avant, 5&#39;-CTGTCGGACCTGGCCAAG-3 &#39; inverser, 5&#39;-CACCCTCGCCAAAGGTGA-3 &#39; séquence de GAPDH: avant, 5&#39;-CATGAGAAGTATGACAACAGCCT-3 &#39; inverser, 5&#39;-AGTCCTTCCACGATACCAAAGT-3 &#39;. </li><li> Mettre en place la plaque PCR en ajoutant 7 pi de mélange maître dans chaque puits et 3 ul d&#39;ADNc. </li><li> Centrifugeuse plaque pendant 5 min à 300 g (1300 rpm). Exécuter réaction PCR en temps réel en utilisant les conditions de cyclage thermique par défaut spécifiées pour supermix commercial comme SYBR Greener qPCR. </li><li> Analyser les données (voir la figure 2 pour les spécifications). </li></ol> 8. PCR en temps réel - Expression des gènes d&#39;intérêt <ol><li> Effectuer sur des échantillons qui montrent l&#39;enrichissement neuronale de deux fois ou plus. </li><li> Préparer mélange maître sur la glace pour chaque sonde (sonde FAM marqué d&#39;intérêt et VIC marqué GAPDH) dans des tubes séparés selon les spécifications du tableau 3. </li><li> Mettre en place une plaque PCR avec 8 pi mélange maître dans chaque puits et 2 ul d&#39;ADNc. </li><li> Centrifuger la plaque pendant 5 min à 300 g (1300 rpm). Exécutez réaction PCR en temps réel en utilisant le defconditions de cyclage thermique ault que par l&#39;expression du gène protocole maître de mélange fourni par le fabricant. Analyser les résultats d&#39;expression (voir la figure 2 pour les spécifications). </li></ol>

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Les auteurs rapportent pas de relations financières avec des intérêts commerciaux.

Une nouvelle plate-forme pour obtenir des couches de neurones olfactifs enrichis en combinant la biopsie nasale et LCM est présenté et a été validé dans cette étude. Cette technique peut avoir de vastes répercussions. Il peut être appliqué vers des études de biomarqueurs, y compris ceux pour la réponse au traitement, et les efforts de découverte de médicaments pour d&#39;autres affections neuropsychiatriques, avoir un impact plus large dans le domaine. Pour obtenir neurones de haute qualité ...

Le trouble bipolaire (BD) est un trouble neuropsychiatrique sévère, caractérisée par des changements pathologiques de l&#39;humeur, le dynamisme et la cognition 1. Lithium utilisé pour le traitement de BD a été montré pour modifier les niveaux d&#39;ARNm de l&#39;état d&#39;équilibre d&#39;un grand nombre de gènes dans les études animales 2, mais il reste inconnu si l&#39;un de ces molécules est associée à la réponse clinique chez l&#39;homme 2. Comprendre le mécanisme de la réponse au lithium faudrait étudier les changements moléculaires induite lithium dans les tissus neuronaux. Malheureusement, il ne est pas pratique d&#39;obtenir des biopsies du cerveau de patients BD pré et post-traitement lithium pour identifier les signatures moléculaires de la réponse au lithium. Les tissus du cerveau post-mortem ont été utilisés pour étudier des biomarqueurs en BD, cependant, ils ne peuvent pas être utilisés pour évaluer les marqueurs moléculaires associés à des changements dynamiques dans les émotions, la cognition et de conduire; et la validité de la réponse au traitement a posteriori déterminé de lithium peut être problématique 4. Lymphocytes et les autres cellules sanguines pourraient être utiles, mais les changements moléculaires dans les cellules de sang peuvent ne pas refléter les modifications neuronales 3-5. Liquide céphalo-rachidien peut être insuffisant pour obtenir des informations sur les molécules intracellulaires qui peuvent refléter des changements intrinsèques associées à la maladie et des médicaments réversible. L&#39;épithélium olfactif (OE) est un élément unique du système nerveux central (SNC), embryologiquement liés aux structures limbiques 6; et il est facilement accessible par biopsies nasales. Il est constitué de cellules gliales cellules comme des cellules de soutien (par exemple, sustentaculaires), basales proliférantes, et les neurones récepteurs olfactifs à différents stades de développement 9.7. Par conséquent, OE offre une occasion unique d&#39;étudier de manière accessible changements dynamiques dans le SNC de patients atteints de maladies neuropsychiatriques 7. Des études démontrent l&#39;utilité de l&#39;OE comme un tissu de substitution pour l&#39;étude des maladies associées événements qui reflètent ces occurring dans les neurones du cerveau 8,9. Par exemple, des études ont utilisé OE pour enquêter sur les profils moléculaires associés à des troubles psychiatriques 10-14. Système olfactif sert également à identifier endophenoytpes cliniques tels que des déficits olfactifs qui sont associés à des symptômes négatifs de la schizophrénie 15. En outre, les processus neurodéveloppementaux continuent dans le OE long de la vie, en fournissant un moyen utile pour modéliser la physiopathologie sous-jacente des conditions psychiatriques 8,9. Cependant, un inconvénient de l&#39;utilisation de ce tissu est la contamination importante des biopsies olfactifs avec des cellules non neuronales 16. Par exemple, l&#39;ARN total utilisé pour les études d&#39;expression génique dans des études précédentes OE contenait l&#39;ARN extrait à partir de l&#39;ensemble du tissu nasal biopsie comprenant l&#39;ARN à partir de cellules non neuronales 17. Par conséquent, les approches précédentes ont été limitées par la qualité des cellules. Pour surmonter ce problème, une nouvelle approche pour obtenir<html> populations de cellules neuronales enrichies en combinant biopsies nasales avec laser capture microdissection (LCM) a été élaboré 18. LCM est une technique qui permet l&#39;isolement sélectif des cellules en utilisant le découpage au laser UV combinée à infra-rouge de 19 à 21 laser. Combinant LCM à l&#39;approche OE minimiser la contamination importante de OE par les cellules non-neuronales, améliorant ainsi l&#39;enrichissement des cellules neuronales 18. En outre, la couche neuronale peut être distinguée de la couche de sous-muqueuse au microscope, ce qui élimine la nécessité d&#39;une coloration. Types de cellules neuronales peuvent en outre être distinguées des autres populations de cellules en utilisant des anticorps primaires qui sont exprimés par le type d&#39;intérêt 7 de la cellule. Par conséquent, cette procédure établit une méthode plus simple pour l&#39;enrichissement de la population de cellules presque purement neuronale qui peut être utilisé pour des études d&#39;expression génique, immunohistochimie et autres investigations morphologiques. ve_content &quot;&gt; Cette étude vise à établir une plate-forme expérimentale pour étudier les changements moléculaires dans les neurones olfactifs associés à des états pathologiques et la réponse au traitement. Pour y remédier, un petit groupe de patients non-fumeurs qui ont rencontré les critères diagnostiques du DSM-IV pour BD basée sur l&#39;interview diagnostique pour les études génétiques (DIG) 22 a été recruté pour subir deux biopsies nasales: une biopsie pré-traitement avec le lithium et le deuxième biopsie, après 6 semaines de traitement quotidien de lithium orale outre, les patients BD éligibles doivent être:. symptomatique de la dépression , sur la base marquant ≥10 sur 60 dans le clinicien administré Montgomery Asberg-Rating Scale (MADRS) 23; symptomatique pour hypomanie ou de manie, basé sur un score ≥10 sur 56 sur le clinicien administré Young-Mania Rating Scale (YMRS) 24;. ≥10 ou sur les deux MADRS et YMRS coefficient évaluateur-Inter-évaluateur d&#39;accord entre les cliniciens pour les deux échelles est&gt; 0,96 Après biopsies, les neurones étaient enri.ched d&#39;OE par LCM. Suite à des mesures supplémentaires de contrôle de la qualité, afin d&#39;assurer l&#39;extraction de l&#39;ARN de haute qualité du tissu neuronal et l&#39;enrichissement, en temps réel RT-PCR a été menée pour étudier les niveaux pré- et post-expression de traitement de gènes d&#39;intérêt. Les sections suivantes contiennent une description de la validation de cette approche, soulignant l&#39;optimisation du protocole et les stratégies qui ont été appliquées pour le dépannage du protocole.

<table><tbody><tr><td colspan="4">Tissue Preparation</td></tr><tr><td>Tissue-Tek Cryomold Molds</td><td>Sakura Finetek</td><td>4557</td><td></td></tr><tr><td>Tissue-Tek O.C.T. Compound</td><td>Sakura Finetek</td><td>4583</td><td></td></tr><tr><td colspan="4">Cryosectioning</td></tr><tr><td>Membrane Slide 1.0 PEN (D)</td><td>Carl Zeiss Microscopy</td><td>415190-9041-000</td><td></td></tr><tr><td>Rnase Zap</td><td>Ambion</td><td>AM9780</td><td></td></tr><tr><td>Qualité de l’eau traitée DEPC</td><td>Biologique</td><td>351-068-131</td><td></td></tr><tr><td colspan="4">Microdissection</td></tr><tr><td>Microscope : PALM Series MicroLaser System</td><td>Carl Zeiss Microscopy</td><td></td><td>Modèle : Axiovert 200M 
Logiciel : Robo v3.2</td></tr><tr><td>No. 5 Dumont Microdissction Forceps</td><td>Roboz</td><td>RS-49085</td><td></td></tr><tr><td colspan="4">RNA Extraction</td></tr><tr><td>RNAqueous Micro Kit</td><td>Ambion</td><td>AM1931</td><td></td></tr><tr><td colspan="4">cDNA Synthesis</td></tr><tr><td>SuperScript III First Strand Synthesis</td><td>Kit Invitrogen</td><td>18080-051</td><td></td></tr><tr><td colspan="4">OMP qPCR</td></tr><tr><td>SYBR GreenER qPCR SuperMix</td><td>Invitrogen</td><td>11760-500</td><td></td></tr><tr><td colspan="4">Taqman qPCR</td></tr><tr><td>TaqMan Expression Assay Sobes</td><td>Applied Biosystems</td><td>Divers</td><td></td></tr><tr><td>TaqMan Gene Expression Master Mix</td><td>Applied Biosystems</td><td>4369016</td><td></td></tr></tbody></table>

neurones olfactifs obtenus à l&#39;aide biopsie nasale combinée avec laser-microdissection: une approche potentielle pour étudier la réponse au traitement dans les troubles mentaux

Olfactory Neurons Obtained through Nasal Biopsy Combined with Laser-Capture Microdissection: A Potential Approach to Study Treatment Response in Mental Disorders

Le trouble bipolaire (BD) est un trouble neuropsychiatrique sévère avec physiopathologie mal compris et généralement traité avec le stabilisateur de l&#39;humeur, le carbonate de lithium. Les études animales ainsi que des études génétiques humaines indiquent que le lithium affecte cibles moléculaires qui sont impliqués dans la croissance neuronale, la survie et la maturation, et notamment les molécules impliquées dans la signalisation Wnt. Compte tenu de l&#39;enjeu éthique à l&#39;obtention de biopsies du cerveau pour étudier les changements moléculaires dynamiques associés avec le lithium-réponse dans le système nerveux central (SNC), on peut envisager l&#39;utilisation de neurones obtenus à partir de tissus olfactifs pour atteindre cet goal.The épithélium olfactif contient des neurones récepteurs olfactifs à différents stades de développement et des cellules gliales comme des cellules de soutien. Cette offre une occasion unique d&#39;étudier les changements dynamiques dans le SNC de patients atteints de maladies neuropsychiatriques, en utilisant le tissu olfactif obtenu en toute sécurité à partir de biopsies nasales. Pour pallier l&#39;inconvénient posé par substcontamination antial de tissu olfactif biopsie avec des cellules non neuronales, une nouvelle approche pour obtenir des populations cellulaires enrichies neuronale a été développé en combinant biopsies nasales avec le laser capture microdissection. Dans cette étude, un système pour étudier les changements moléculaires dynamiques traitement associé dans le tissu neuronal a été élaboré et validé, en utilisant un petit échantillon pilote de patients BD recrutés pour l&#39;étude des mécanismes moléculaires de la réponse au traitement au lithium.

La stratégie de protocole et le dépannage dans l'étude des signatures moléculaires ont été optimisés avec succès. la qualité de l'ARN et les critères d'enrichissement neuronaux pour les échantillons à utiliser dans une analyse plus approfondie réel aval PCR en temps ont été normalisés. RIN et la concentration d'ARN ont été examinées comme des facteurs de confusion à des niveaux d'expression détectés. Sur la base de l'analyse de plusieurs échantillons avec RIN allant de 1 à 10, on a déterminé qu'un RIN minimum de ~ 3,0 e...

Dans cette étude, une nouvelle plate-forme d&#39;enquêter signatures moléculaires intraneuronaux de la réponse au traitement dans le trouble bipolaire (BD) a été développé et validé. Épithélium olfactif chez des patients BD a été obtenue par des biopsies nasales. Puis-microdissection laser a été combinée avec Temps réel RT-PCR pour enquêter sur la signature moléculaire de la réponse de lithium dans BD.

Neurones olfactifs obtenus à l&#39;aide biopsie nasale combinée avec laser-Microdissection: Une approche potentielle pour étudier la réponse au traitement dans les troubles mentaux

Bipolar disorder (BD) is a severe neuropsychiatric disorder with poorly understood pathophysiology and typically treated with the mood stabilizer, lithium ...

Cette procédure détaille l’utilisation de la microdissection par capture laser pour isoler les couches neuronales du tissu épithélium olfactif, et décrit également certaines analyses de l’expression génique en aval. Commencez par une biopsie nasale pour obtenir le tissu de l’épithélium olfactif. Effectuez ensuite une microdissection par capture laser pour isoler les couches neuronales.Ensuite, isolez l’ARN des échantillons. Transcrire inversement pour l’ADNC et analyser l’expression génique par QPCR. En fin de compte, la microdissection par capture laser est utilisée pour montrer qu’une population enrichie de neurones peut être isolée du tissu de l’épithélium olfactif et appliquée à de nombreuses applications en aval.Le principal avantage de cette technique par rapport aux métaux existants comme les cultures de cellules neuronales, est qu’elle nous permet d’étudier à la fois les changements d’état et les changements dynamiques dans un contexte neuronal. Nous avons eu l’idée de ce projet lorsque nous avons découvert le potentiel de combiner la micro dissection par capture laser avec des biopsies olfactives pour obtenir des populations neuronales enrichies. Cette méthode a été établie et démontrée par TDA.Nous avons élargi cette méthodologie et combiné l’analyse en aval Q-R-T-P-C-R chez les patients et les témoins, démontrant que la procédure sera démontrée par Chen Chung, un technicien de notre équipe à l’Université Johns Hopkins. Les procédures suivantes seront filmées dans les installations de Johns Hopkins immédiatement avant la microdissection. Laissez décongeler les lames congelées pendant 10 secondes, puis déshydratez le tissu à l’aide d’une série d’éthanol en utilisant les temps et les volumes indiqués dans le protocole textuel.Allumez le microscope pour la localisation activée par photo. La microscopie a défini les conditions d’un grossissement de 10 x comme une énergie de 82, une mise au point de 74 et une vitesse de 25 à 30 pour un grossissement de 20 x. Réglez l’énergie sur 63, la concentration sur 67 et la vitesse sur cinq à six.Identifiez maintenant visuellement les neurones à l’aide d’un grossissement de 20 x ou 10 x. Distinguez la fine couche de neurones olfactifs de surface de la sous-muqueuse sous-jacente au microscope sans utiliser de procédure de coloration. Observez les neurones sous la forme d’une cylindre dense à l’aide de la fonction crayon.Tracez autour de la couche neuronale, tracez légèrement en vous éloignant des neurones pour éviter la combustion des neurones du laser afin d’obtenir un ARN de haute qualité. Lancez ensuite la découpe guidée par laser. Prélevez les sections disséquées à l’aide d’une pince à micro-dissection à pointe fine et transférez le tissu dans un micro-tube contenant 100 microlitres de tampon de lyse sur de la glace.Répétez les dissections pour toutes les sections neuronales obtenues à partir d’un seul échantillon dans les 50 minutes suivant la fin de la dissection, utilisez immédiatement les lysats de l’échantillon et maintenez-les sur de la glace sèche. Stockez ensuite les échantillons à moins 80 degrés Celsius pour une isolation totale de l’ARN. Décongeler les lysats de l’échantillon sur de la glace.Réalisez l’isolement total de l’ARN avec le kit de micro inactivation aqueuse de l’ARN RN en suivant le protocole du fabricant sans aucune modification. Élué dans un volume total de 20 microlitres. À l’aide du bioanalyseur, mesurez la concentration d’ARN et évaluez la qualité de l’ARN avec le numéro d’intégrité de l’ARN.Sélectionner des échantillons qui répondent aux critères de contrôle de la qualité pour la synthèse de l’ADNC Synthétiser l’ADNC à l’aide d’un kit commercial validé pour chaque tube réactionnel. ANIL 0,1 à 1,0 nanogrammes d’ARN dans un volume total de huit microlitres d’eau libre d’ARN, un microlitre d’amorce oligo DT et un microlitre de 10 millimolaires DNTP Mix. Faites tourner doucement les échantillons à 65 degrés Celsius pendant cinq minutes.Une fois la réaction terminée, placez immédiatement les échantillons sur de la glace. Préparez la solution de mélange maître comme indiqué. Ajoutez ensuite 9,5 microlitres de mélange maître et 0,5 microlitre de transcriptase inverse préparée dans le commerce à chaque tube d’échantillon au tube de contrôle à 0,5 microlitre d’eau libre d’ARN.Au lieu de l’enzyme RT, exécutez une réaction RT avec la première incubation à 50 degrés Celsius pendant 50 minutes. Puis 85 degrés Celsius pendant cinq minutes. Et un dernier maintien de quatre degrés Celsius.Diluez tous les échantillons cinq fois avec de l’eau et des aliquotes pour déterminer l’enrichissement neuronal de l’expression des protéines marqueurs olfactifs. Préparez les solutions de mélange maître PCR à l’aide du contrôle interne G-A-P-D-H sur chaque puits de la plaque PCR. Ajoutez sept microlitres de mélange principal et trois microlitres de CDNA.Centrifugez ensuite la plaque pendant cinq minutes à 300 g. Exécutez la réaction PCR en temps réel en utilisant les conditions de cycle thermique par défaut spécifiées pour le super mélange commercial. Analysez les résultats de l’expression pour l’enrichissement du pli.Sélectionnez les échantillons qui montrent un enrichissement neuronal de deux fois ou plus. Ensuite, concevez une PCR en temps réel pour l’expression de gènes d’intérêt à l’aide d’une sonde d’intérêt marquée FAM et d’une sonde G-A-P-D-H marquée vic. Installez une plaque PCR avec huit microlitres de mélange principal dans chaque puits et deux microlitres de CDNA centrifugez la plaque pendant cinq minutes.À 300 g. Exécutez la réaction en utilisant les conditions de cycle thermique par défaut conformément au protocole de mélange maître d’expression génique fourni par le fabricant. Analysez maintenant les résultats de l’expression.Cette expérience a utilisé la capture laser, la micro dissection et le R-T-P-C-R pour mesurer l’effet du lithium sur les niveaux d’expression de la glycogène synthase kinase trois bêta dans l’épithélium olfactif chez ces deux patients atteints de trouble bipolaire Les analyses d’expression avant et après le traitement au lithium chez ces deux patients MB indiquent une diminution de l’expression de GSK trois bêta tandis que les sujets témoins n’ont montré aucun changement significatif après son développement. Cette technique a ouvert la voie aux chercheurs dans le domaine de la neuropsychiatrie pour explorer les changements moléculaires dans les cellules neuronales des patients. Après avoir regardé cette vidéo, vous devriez avoir une bonne compréhension de la façon d’utiliser votre microdissection par capture laser pour isoler une population enrichie de neurones, qui peuvent ensuite être utilisés pour l’analyse de l’expression génique en aval.

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Nous décrivons ici une méthode pour biopsies muqueuse olfactive de rat et humain des cavités nasales. Ces biopsies peuvent être utilisés soit pour identifier les anomalies moléculaires dans les maladies du cerveau ou d'isoler cellules souches adultes multipotentes qui peuvent être utilisés pour la transplantation de cellules dans des modèles animaux de traumatisme crânien /...

Isoler les cellules souches nasal olfactif des rongeurs ou des êtres humains

Neurones adultes-né du bulbe olfactif peut être contrôlé à l'aide optogenetically Channelrhodopsin2 exprimant l'injection lentiviral dans le flux migratoire et rostrale photostimulation chronique avec une miniature implanté à LED.

Sélective transduction virale des adultes-né pour les neurones olfactifs chronique In vivo Stimulation optogénétique

Neurones récepteurs olfactifs (ORNs) convertir les signaux d'odeurs dans un premier récepteur de courant qui à son tour déclenche des potentiels d'action qui sont acheminés à des neurones de second ordre dans le bulbe olfactif. Ici, nous décrivons la technique pipette d'aspiration d'enregistrer simultanément le récepteur olfactif courant induit et des potentiels d'action de ORNs souris.

Odorant induites réponses enregistrées à partir de neurones récepteurs olfactifs en utilisant la technique de la pipette d&#39;aspiration

Nous démontrons variations de la technique d'enregistrement multi-unité extracellulaire de caractériser les odeurs réponses évoquées dans les trois premières étapes de la voie olfactive invertébrés. Ces techniques peuvent être facilement adaptés pour examiner l'activité d'ensemble dans d'autres systèmes neuronaux ainsi.

Méthodes d&#39;enregistrement multi-unités pour caractériser l&#39;activité neuronale dans le Criquet (<em&gt; Schistocerca americana</em&gt; Circuits olfactifs)

Un désossage méthode manuelle en vigueur pour préparer Intact souris tissu nasal avec l&#39;organisation anatomique préservée

Ce protocole introduit l’apprentissage précoce latéralisé de la préférence olfactive chez les rats utilisant l’occlusion aiguë d’un seul naris. L’apprentissage latéralisé permet d’examiner les résultats comportementaux et les mécanismes biologiques sous-jacents chez les mêmes animaux, réduisant ainsi la variance induite par les conceptions inter-animaux. Ce protocole peut être utilisé pour étudier les mécanismes moléculaires qui sous-tendent l’apprentissage précoce des odeurs.

Un modèle d&#39;apprentissage latéralisé odeur chez les rats nouveau-nés pour dissection Formation Neural Circuits Soutenir la mémoire

L’analyse des propriétés physiologiques des neurones sensoriels olfactifs se heurte encore à des limites techniques. Ici, nous les enregistrons à l’aide d’un patch-clamp perforé dans une préparation intacte de l’épithélium olfactif chez des souris ciblées par des gènes. Cette technique permet de caractériser les propriétés membranaires et les réponses à des ligands spécifiques de neurones exprimant des récepteurs olfactifs définis.

Perforé patch-clamp enregistrement des souris neurones sensoriels olfactifs dans neuroépithélium Intact: Analyse fonctionnelle des neurones exprimant un récepteur odorant Identifié

Ce protocole explique comment collecter des neurones uniques, des microglies et des astrocytes du noyau central de l’amygdale avec une grande précision et une spécificité anatomique à l’aide de la microdissection de capture laser. En outre, nous expliquons notre utilisation de microfluidique RT-qPCR pour mesurer un sous-ensemble du transcriptome de ces cellules.

Combiner la microdissection de capture laser et le QPCR microfluidique pour analyser les profils transcriptionnels des cellules uniques : une approche de biologie des systèmes à la dépendance aux opioïdes

Cet article décrit l’utilisation d’un olfactomètre synchronisé avec la respiration pour déclencher une stimulation magnétique transcrânienne (TMS) à simple et double bobine lors de la présentation de l’odorant synchronisée avec la respiration nasale humaine. Cette combinaison nous permet d’étudier objectivement l’impact des odeurs agréables et désagréables sur l’excitabilité corticospinale et la connectivité cérébrale efficace chez un individu donné.

Combinaison d’un olfactomètre synchronisé avec la respiration et d’une simulation cérébrale pour étudier l’impact des odeurs sur l’excitabilité corticospinale et la connectivité efficace

Cet article fournit un protocole simplifié pour la dissection et la dissociation de l’épithélium olfactif murin à des fins de séquençage de l’ARN à noyau unique.

Dissection rapide et dissociation de l’épithélium olfactif de souris pour des suspensions à noyau unique

Découvrez la microdissection laser pour isoler des neurones olfactifs à partir de biopsies nasales et analyser l'expression génique par QPCR. Cette méthode permet d'étudier les réponses moléculaires au lithium dans le trouble bipolaire.

Neurones olfactifs obtenus à laide biopsie nasale combinée avec laser-Microdissection: Une approche potentielle pour étudier la réponse au traitement dans les troubles mentaux (Vidéo) | JoVE Journal

Neurones olfactifs obtenus à l'aide biopsie nasale combinée avec laser-Microdissection: Une approche potentielle pour étudier la réponse au traitement dans les troubles mentaux

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