Cartographie de la destinée cellulaire
Biologistes du développement utilisent le mappage de sort comme un outil pour les lignées cellulaires trace tandis que l’organisme arrive à maturité. Cela se fait par marquage des cellules à un stade embryonnaire et puis suivi eux et leur progéniture au cours du développement de l’organisme. Cartographie de sort est également utilisée pour étudier la migration cellulaire et la différenciation au cours de développement, ainsi que la régénération et de réparation au cours de l’âge adulte.
Cette vidéo sera donner un aperçu des cartes de sort, expliquer un protocole utilisé pour générer une carte sort chez le poisson zèbre et présentent quelques façons dans lequel cette technique est actuellement appliquée dans les laboratoires.
Avant de sauter dans les détails de procédure, nous allons discuter de ce qu’est une carte de sort est et comment il est construit.
En sort classique cartographie des expériences, les scientifiques teint groupes de cellules dans l’embryon précoce, telles que celles de la gastrulation, avec un colorant qui serait répercuté tous les descendants de ces cellules. Après avoir laissé l’embryon de se développer pendant une certaine période de temps, ils ont vu les cellules colorées dans l’organisme plus mature. L’emplacement de cellules colorées dans l’organisme mature a ensuite noté. Mis en commun les résultats de plusieurs expériences similaires a permis la construction d’un schéma connu comme une carte de sort.
Par conséquent, une carte de sort est un plan global qui décrit le sort de chaque partie d’un embryon précoce. Ces cartes aident les scientifiques à déterminer des choses comme les cellules embryonnaires se différencient en cellules adultes qui fonctionnelles, et comment ils migrent et organisent en structures matures.
Scientifiques ont utilisé de nombreux organismes modèles pour créer des cartes de sort, y compris les grenouilles, les nématodes, poisson, poussins et la souris. Certains organismes modèles, tels que le poisson-zèbre Danio rerio, ont un autre avantage dans ce type d’expérience. Puisqu’ils sont petits et restent transparentes pour une grande partie du processus du développement, scientifiques peuvent facilement repérer les cellules en affichant les poissons sous un microscope optique. Ce qui est important, avances dans la cellule techniques d’étiquetage maintenant permettre aux scientifiques de justement marquer des cellules individuelles et retracer leur que l’organisme se développe, qui aide à la création d’une carte extrêmement détaillée.
Maintenant que vous avez une idée sur ce que le destin des cartes sont, nous allons discuter un protocole pour la cartographie sort chez le poisson zèbre qui utilise photoactivation. Cette approche relativement nouvelle dépend des protéines photoactivatable. Ce sont des protéines fluorescentes spéciales, qui sont « mis en cage, » ce qui signifie qu’ils sont détenus dans une conformation spécifique afin d’éviter la fluorescence. Une application d’une impulsion laser contrôlé provoque un changement conformationnel, dénommé « uncaging, » qui résulte de la fluorescence visible.
Afin de réaliser cette expérience, ces protéines spécialisées en cage sont pour la première fois et ensuite injectées dans un ou deux embryons de poisson-zèbre de stade de cellules. Ensuite, les embryons sont autorisées à mûrir à l’étape du développement souhaité avant la photoactivation.
Ensuite, pour préparer le poisson photoactivation, les embryons sont déchorionés afin de rendre le tissu cible accessible. Ensuite, ils sont montés dans un milieu optiquement clair, tels que l’agarose de température basse fusion, qui les maintient en toute sécurité dans une position stable. Les échantillons sont alignés pour exposer la zone d’intérêt et montés sur un microscope équipé de laser. Une impulsion laser est appliquée aux cellules contenant d’intérêt, induisant la photoactivation zone ciblée.
Après le traitement au laser, embryons sont soigneusement retirés de l’agarose et retournés à son environnement naturel jusqu'à ce que le stade de développement souhaité est atteint. Afin de retracer les cellules de photoactivation, embryons encore incorporés dans la basse fusion agarose de la température, et les cellules de photoactivation peuvent ensuite être visualisées et tracé à l’aide de fluorescence directe ou immunostaining.
Maintenant que vous avez une compréhension globale d’un protocole de cartographie du destin, nous allons jeter un oeil à quelques expériences de laboratoire qui tirent parti de cette procédure.
En plus d’étudier le développement embryonnaire, mappage de sort peut être utilisé pour examiner la réparation dans des systèmes matures. Dans cette expérience, un sous-type de cellule spécifique a été pratiqué l’ablation d’un poisson transgénique zèbre de la rétine. Scientifiques puis tracés génétiquement marquées des cellules souches adultes résidant à déterminer leur sort après une blessure. Enfin, l’analyse d’images a été réalisée, qui a montré l’activation des cellules souches adultes et de la réparation des tissus suivants.
Les scientifiques utilisent également des protocoles comparables pour comprendre le destin des cellules souches transplantées. Ici, le tag génétiquement des cellules souches embryonnaires humaines, ou les CSEh, ont été transplantées dans un modèle de souris immunodéprimées. Les cellules implantées pouvaient différencier pendant 8 à 12 semaines, après quoi le tératome résultante, qui est une tumeur qui contient de multiples couches de germe des tissus, a été récoltée, fixe et immunomarquage afin de déterminer le sort d’implanté des cellules souches. Ce type d’expérience aide les scientifiques pour confirmer le potentiel différenciantes in vivo de cellules souches cultivées.
Comme mentionné précédemment, les scientifiques réalisent des procédures de cartographie sort dans divers organismes modèles, y compris les mammifères. Dans cette étude, les scientifiques marqué des cellules dans une région spécifique d’un jeune embryon de souris en utilisant des approches génétiques inductibles. Cela se fait par l’administration d’un agent inducteur d’une souris enceinte transportant des descendants génétiquement modifiés. Les cellules marquées ont été suivis tout au long des stades du développement, qui a aidé les scientifiques à déterminer leur destin final.
Vous avez juste regardé les vidéo de JoVE sur la cartographie du destin. Cette vidéo a fourni un aperçu de la création de cartes de sort, étudié un destin spécifique protocole de cartographie et discuté de certaines des modifications et les applications de cette technique extrêmement utile. Comme toujours, Merci pour regarder !
Cartographie du destin est une technique utilisée pour comprendre comment embryonnaires diviser, différencier et migrer au cours du développement. Dan…
Biologistes du développement utilisent le mappage de sort comme un outil pour les lignées cellulaires trace tandis que l’organisme arrive à maturité. Cela se fait par marquage des cellules à un stade embryonnaire et puis suivi eux et leur progéniture au cours du développement de l’organisme. Cartographie de sort est également utilisée pour étudier la migration cellulaire et la différenciation au cours de développement, ainsi que la régénération et de réparation au cours de l’âge adulte.
Cette vidéo sera donner un aperçu des cartes de sort, expliquer un protocole utilisé pour générer une carte sort chez le poisson zèbre et présentent quelques façons dans lequel cette technique est actuellement appliquée dans les laboratoires.
Avant de sauter dans les détails de procédure, nous allons discuter de ce qu’est une carte de sort est et comment il est construit.
En sort classique cartographie des expériences, les scientifiques teint groupes de cellules dans l’embryon précoce, telles que celles de la gastrulation, avec un colorant qui serait répercuté tous les descendants de ces cellules. Après avoir laissé l’embryon de se développer pendant une certaine période de temps, ils ont vu les cellules colorées dans l’organisme plus mature. L’emplacement de cellules colorées dans l’organisme mature a ensuite noté. Mis en commun les résultats de plusieurs expériences similaires a permis la construction d’un schéma connu comme une carte de sort.
Par conséquent, une carte de sort est un plan global qui décrit le sort de chaque partie d’un embryon précoce. Ces cartes aident les scientifiques à déterminer des choses comme les cellules embryonnaires se différencient en cellules adultes qui fonctionnelles, et comment ils migrent et organisent en structures matures.
Scientifiques ont utilisé de nombreux organismes modèles pour créer des cartes de sort, y compris les grenouilles, les nématodes, poisson, poussins et la souris. Certains organismes modèles, tels que le poisson-zèbre Danio rerio, ont un autre avantage dans ce type d’expérience. Puisqu’ils sont petits et restent transparentes pour une grande partie du processus du développement, scientifiques peuvent facilement repérer les cellules en affichant les poissons sous un microscope optique. Ce qui est important, avances dans la cellule techniques d’étiquetage maintenant permettre aux scientifiques de justement marquer des cellules individuelles et retracer leur que l’organisme se développe, qui aide à la création d’une carte extrêmement détaillée.
Maintenant que vous avez une idée sur ce que le destin des cartes sont, nous allons discuter un protocole pour la cartographie sort chez le poisson zèbre qui utilise photoactivation. Cette approche relativement nouvelle dépend des protéines photoactivatable. Ce sont des protéines fluorescentes spéciales, qui sont « mis en cage, » ce qui signifie qu’ils sont détenus dans une conformation spécifique afin d’éviter la fluorescence. Une application d’une impulsion laser contrôlé provoque un changement conformationnel, dénommé « uncaging, » qui résulte de la fluorescence visible.
Afin de réaliser cette expérience, ces protéines spécialisées en cage sont pour la première fois et ensuite injectées dans un ou deux embryons de poisson-zèbre de stade de cellules. Ensuite, les embryons sont autorisées à mûrir à l’étape du développement souhaité avant la photoactivation.
Ensuite, pour préparer le poisson photoactivation, les embryons sont déchorionés afin de rendre le tissu cible accessible. Ensuite, ils sont montés dans un milieu optiquement clair, tels que l’agarose de température basse fusion, qui les maintient en toute sécurité dans une position stable. Les échantillons sont alignés pour exposer la zone d’intérêt et montés sur un microscope équipé de laser. Une impulsion laser est appliquée aux cellules contenant d’intérêt, induisant la photoactivation zone ciblée.
Après le traitement au laser, embryons sont soigneusement retirés de l’agarose et retournés à son environnement naturel jusqu'à ce que le stade de développement souhaité est atteint. Afin de retracer les cellules de photoactivation, embryons encore incorporés dans la basse fusion agarose de la température, et les cellules de photoactivation peuvent ensuite être visualisées et tracé à l’aide de fluorescence directe ou immunostaining.
Maintenant que vous avez une compréhension globale d’un protocole de cartographie du destin, nous allons jeter un oeil à quelques expériences de laboratoire qui tirent parti de cette procédure.
En plus d’étudier le développement embryonnaire, mappage de sort peut être utilisé pour examiner la réparation dans des systèmes matures. Dans cette expérience, un sous-type de cellule spécifique a été pratiqué l’ablation d’un poisson transgénique zèbre de la rétine. Scientifiques puis tracés génétiquement marquées des cellules souches adultes résidant à déterminer leur sort après une blessure. Enfin, l’analyse d’images a été réalisée, qui a montré l’activation des cellules souches adultes et de la réparation des tissus suivants.
Les scientifiques utilisent également des protocoles comparables pour comprendre le destin des cellules souches transplantées. Ici, le tag génétiquement des cellules souches embryonnaires humaines, ou les CSEh, ont été transplantées dans un modèle de souris immunodéprimées. Les cellules implantées pouvaient différencier pendant 8 à 12 semaines, après quoi le tératome résultante, qui est une tumeur qui contient de multiples couches de germe des tissus, a été récoltée, fixe et immunomarquage afin de déterminer le sort d’implanté des cellules souches. Ce type d’expérience aide les scientifiques pour confirmer le potentiel différenciantes in vivo de cellules souches cultivées.
Comme mentionné précédemment, les scientifiques réalisent des procédures de cartographie sort dans divers organismes modèles, y compris les mammifères. Dans cette étude, les scientifiques marqué des cellules dans une région spécifique d’un jeune embryon de souris en utilisant des approches génétiques inductibles. Cela se fait par l’administration d’un agent inducteur d’une souris enceinte transportant des descendants génétiquement modifiés. Les cellules marquées ont été suivis tout au long des stades du développement, qui a aidé les scientifiques à déterminer leur destin final.
Vous avez juste regardé les vidéo de JoVE sur la cartographie du destin. Cette vidéo a fourni un aperçu de la création de cartes de sort, étudié un destin spécifique protocole de cartographie et discuté de certaines des modifications et les applications de cette technique extrêmement utile. Comme toujours, Merci pour regarder !
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Biologistes du développement utilisent le mappage de sort comme un outil pour les lignées cellulaires trace tandis que l’organisme arrive à maturité. Cela se fait par marquage des cellules à un stade embryonnaire et puis suivi eux et leur progéniture au cours du développement de l’organisme. Cartographie de sort est également utilisée pour étudier la migration cellulaire et la différenciation au cours de développement, ainsi que la régénération et de réparation au cours de l’âge adulte.
Cette vidéo sera donner un aperçu des cartes de sort, expliquer un protocole utilisé pour générer une carte sort chez le poisson zèbre et présentent quelques façons dans lequel cette technique est actuellement appliquée dans les laboratoires.
Avant de sauter dans les détails de procédure, nous allons discuter de ce qu’est une carte de sort est et comment il est construit.
En sort classique cartographie des expériences, les scientifiques teint groupes de cellules dans l’embryon précoce, telles que celles de la gastrulation, avec un colorant qui serait répercuté tous les descendants de ces cellules. Après avoir laissé l’embryon de se développer pendant une certaine période de temps, ils ont vu les cellules colorées dans l’organisme plus mature. L’emplacement de cellules colorées dans l’organisme mature a ensuite noté. Mis en commun les résultats de plusieurs expériences similaires a permis la construction d’un schéma connu comme une carte de sort.
Par conséquent, une carte de sort est un plan global qui décrit le sort de chaque partie d’un embryon précoce. Ces cartes aident les scientifiques à déterminer des choses comme les cellules embryonnaires se différencient en cellules adultes qui fonctionnelles, et comment ils migrent et organisent en structures matures.
Scientifiques ont utilisé de nombreux organismes modèles pour créer des cartes de sort, y compris les grenouilles, les nématodes, poisson, poussins et la souris. Certains organismes modèles, tels que le poisson-zèbre Danio rerio, ont un autre avantage dans ce type d’expérience. Puisqu’ils sont petits et restent transparentes pour une grande partie du processus du développement, scientifiques peuvent facilement repérer les cellules en affichant les poissons sous un microscope optique. Ce qui est important, avances dans la cellule techniques d’étiquetage maintenant permettre aux scientifiques de justement marquer des cellules individuelles et retracer leur que l’organisme se développe, qui aide à la création d’une carte extrêmement détaillée.
Maintenant que vous avez une idée sur ce que le destin des cartes sont, nous allons discuter un protocole pour la cartographie sort chez le poisson zèbre qui utilise photoactivation. Cette approche relativement nouvelle dépend des protéines photoactivatable. Ce sont des protéines fluorescentes spéciales, qui sont « mis en cage, » ce qui signifie qu’ils sont détenus dans une conformation spécifique afin d’éviter la fluorescence. Une application d’une impulsion laser contrôlé provoque un changement conformationnel, dénommé « uncaging, » qui résulte de la fluorescence visible.
Afin de réaliser cette expérience, ces protéines spécialisées en cage sont pour la première fois et ensuite injectées dans un ou deux embryons de poisson-zèbre de stade de cellules. Ensuite, les embryons sont autorisées à mûrir à l’étape du développement souhaité avant la photoactivation.
Ensuite, pour préparer le poisson photoactivation, les embryons sont déchorionés afin de rendre le tissu cible accessible. Ensuite, ils sont montés dans un milieu optiquement clair, tels que l’agarose de température basse fusion, qui les maintient en toute sécurité dans une position stable. Les échantillons sont alignés pour exposer la zone d’intérêt et montés sur un microscope équipé de laser. Une impulsion laser est appliquée aux cellules contenant d’intérêt, induisant la photoactivation zone ciblée.
Après le traitement au laser, embryons sont soigneusement retirés de l’agarose et retournés à son environnement naturel jusqu'à ce que le stade de développement souhaité est atteint. Afin de retracer les cellules de photoactivation, embryons encore incorporés dans la basse fusion agarose de la température, et les cellules de photoactivation peuvent ensuite être visualisées et tracé à l’aide de fluorescence directe ou immunostaining.
Maintenant que vous avez une compréhension globale d’un protocole de cartographie du destin, nous allons jeter un oeil à quelques expériences de laboratoire qui tirent parti de cette procédure.
En plus d’étudier le développement embryonnaire, mappage de sort peut être utilisé pour examiner la réparation dans des systèmes matures. Dans cette expérience, un sous-type de cellule spécifique a été pratiqué l’ablation d’un poisson transgénique zèbre de la rétine. Scientifiques puis tracés génétiquement marquées des cellules souches adultes résidant à déterminer leur sort après une blessure. Enfin, l’analyse d’images a été réalisée, qui a montré l’activation des cellules souches adultes et de la réparation des tissus suivants.
Les scientifiques utilisent également des protocoles comparables pour comprendre le destin des cellules souches transplantées. Ici, le tag génétiquement des cellules souches embryonnaires humaines, ou les CSEh, ont été transplantées dans un modèle de souris immunodéprimées. Les cellules implantées pouvaient différencier pendant 8 à 12 semaines, après quoi le tératome résultante, qui est une tumeur qui contient de multiples couches de germe des tissus, a été récoltée, fixe et immunomarquage afin de déterminer le sort d’implanté des cellules souches. Ce type d’expérience aide les scientifiques pour confirmer le potentiel différenciantes in vivo de cellules souches cultivées.
Comme mentionné précédemment, les scientifiques réalisent des procédures de cartographie sort dans divers organismes modèles, y compris les mammifères. Dans cette étude, les scientifiques marqué des cellules dans une région spécifique d’un jeune embryon de souris en utilisant des approches génétiques inductibles. Cela se fait par l’administration d’un agent inducteur d’une souris enceinte transportant des descendants génétiquement modifiés. Les cellules marquées ont été suivis tout au long des stades du développement, qui a aidé les scientifiques à déterminer leur destin final.
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Q1: What is a fate map and how do scientists construct one?
A fate map is a diagram outlining the fate of each part of an early embryo. Scientists construct fate maps by staining groups of cells in early embryos, such as gastrula stage cells, with dye that passes to all descendants. After allowing development, they note stained cell locations in mature organisms. Pooled results from multiple experiments create the complete fate map.
Q2: Why is zebrafish a preferred model organism for fate mapping experiments?
Zebrafish are ideal for fate mapping because they are small and remain transparent throughout much of development, allowing scientists to easily track cells under a light microscope. This transparency advantage, combined with advances in cell labeling techniques, enables precise marking of single cells and creation of extremely detailed fate maps during embryonic development.
Q3: How does photoactivation work in fate mapping protocols?
Photoactivation uses special fluorescent proteins that are caged, preventing fluorescence until activated. A controlled laser pulse causes uncaging, a conformational change that results in visible fluorescence. Scientists inject these photoactivatable proteins into early zebrafish embryos, then apply laser pulses to targeted cells at desired developmental stages to induce fluorescence and trace cell lineages.
Q4: What preparation steps are necessary before photoactivating embryonic cells?
Before photoactivation, embryos must be dechorionated to make target tissue accessible. They are then mounted in optically clear medium, such as low melting temperature agarose, which maintains steady positioning. Samples are aligned to expose the area of interest and mounted onto a laser-equipped microscope for precise photoactivation of targeted cells.
Q5: How can fate mapping be applied to study tissue repair in adult organisms?
Fate mapping can examine repair in mature systems by ablating specific cell subtypes and tracing genetically labeled resident adult stem cells to determine their fate following injury. Image analysis demonstrates activation of adult stem cells and subsequent tissue regeneration with somatic stem cells, revealing how stem cells respond to damage and contribute to healing.
Q6: What do scientists learn from transplanting labeled stem cells into animal models?
Scientists transplant genetically tagged human embryonic stem cells into immunocompromised mice and allow differentiation for 8-12 weeks. The resulting teratoma, a tumor containing tissue from multiple germ layers, is harvested and immunostained to determine implanted cell fate. This confirms the in vivo differentiative potential of cultured stem cells.
Q7: How do inducible genetic approaches enable fate mapping in mammalian embryos?
Scientists mark cells in specific regions of early mouse embryos using inducible genetic approaches by administering an inducing agent to pregnant mice carrying genetically modified offspring. Labeled cells are tracked throughout later developmental stages to determine their ultimate fate, providing detailed lineage information in mammalian development.
Chapitres dans cette vidéo
0:00
Overview
0:48
Principles of Fate Mapping
2:38
Fate Mapping in Zebrafish Using Photoactivation
4:29
Applications
6:31
Summary