Name: Wet Chemistry and Peptide Immobilisation sur polytétrafluoroéthylène pour lamélioration de ladhérence cellulaire (Vidéo) | JoVE Journal
Uploaded: 2016-08-15T14:00:00.000+00:00
Duration: 6 min 15 s
Description: Découvrez un traitement de surface par chimie humide du PTFE pour améliorer la biocompatibilité des polymères médicaux. Cette méthode simple permet d'immobiliser des peptides et favorise l'adhérence cellulaire.

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Les auteurs tiennent à remercier Walter Scholdei (Institut Max-Planck pour la recherche sur les polymères, Mayence, Allemagne.

1. Préparation de sodium naphtalénure Activation Solution et activation de surface Remarque: Effectuer des réactions dans une hotte bien ventilée. Suivez les règles générales pour la manipulation des solvants très inflammables et les métaux corrosifs comme le sodium métallique. Le naphtalène a une odeur très désagréable (de naphtaline), même en très petites quantités! Sauf indication contraire les réactions sont effectuées à température ambiante. L&#39;azoture de sodium est très toxique! THF (99,9%, voir la liste des matériaux) a été stocké sur environ 20% (en volume) tamis moléculaire. Distiller THF avec une teneur notable en eau sur sodium. La formation de naphtalénure de sodium ne se produit pas si des traces d&#39;eau sont présentes. <ol><li> A une solution de 1,4 g (10,9 mmol) de naphtalène dans 20 ml de tétrahydrofuranne (THF, séché sur tamis moléculaire 3 Å), ajouter 0,25 g (10,9 mmol) de sodium métallique dans un flacon de 100 ml en verre à bouchon à vis équipé d&#39;un PTFE- revêtu barreau d&#39;agitation magnétique. Note: Dissolution peut être grandement améliorée en coupant le sodium en petits morceaux et le chauffage modeste (35 - 40 ° C). La solution finale a une couleur légèrement verdâtre foncé et peut être stocké dans des conditions strictement sèches. </li><li> Poinçonner des disques en PTFE d&#39;un diamètre de 12 mm à partir de matériau en feuille d&#39;épaisseur 0,5 mm. Mark un côté (par exemple, en utilisant une lettre tampon poinçon) et nettoyer avec de l&#39; isopropanol. </li><li> Incuber PTFE échantillons individuellement dans la solution d&#39;activation (étape 1.1) pendant 1 - 2 min à l&#39;aide de forceps. Remarque: Le changement de couleur du blanc au brun foncé indique la réussite du traitement. </li><li> Ensuite rincer deux fois avec du THF, puis avec de l&#39;isopropanol. Remarque: La solution de naphtalénure est épuisé lorsque sa couleur change pour un brun clair aqueux. solution naphtalénure Inutilisé (éventuellement contenant du sodium métallique) doit être décomposé en ajoutant lentement l&#39;isopropanol avant élimination. </li><li> Oxyder les échantillons traités au peroxyde d&#39;hydrogène (30%) contenant 20% (p / v) d&#39;acide trichloroacétique pendant 3 h. lavageavec de l&#39;eau et sèche. La surface a maintenant une légère apparence brunâtre. Remarque: L&#39;activation et le résultat de l&#39;oxydation dans une mouillabilité accrue de façon drastique la surface. Cette constatation a été examinée en détail précédemment 14. </li><li> Traiter les disques oxydées avec 50% (v / v) hexaméthylènediisocyanate (HMDI) dans du THF sec pendant 2 heures, rincer avec du THF et laisser sécher. </li><li> Hydrolyser échantillons porteurs isocyanate dans l&#39;eau pendant 2 - 3 h et sec. Remarque: La surface finale amino fonctionnalisée PTFE est beaucoup plus stable que les échantillons d&#39;isocyanates porteurs et est compatible avec de nombreux agents de réticulation standard pour couplage supplémentaire. </li></ol> 2. Peptide Immobilisation <ol><li> Préparer une solution de 20% (v / v) d&#39;éther diglycidylique de diéthylène (diépoxyde) dans 50 mM de tampon carbonate, pH 9. </li><li> Placez les disques aminées avec le côté marqué individuellement dans une plaque 24 puits et ajouter 1,5 ml de la solution d&#39;époxyde. Assurer une couverture complète des échantillons. Incuber pendant 2 heures et laver deuxfois avec de l&#39;eau et une fois avec du tampon de carbonate. </li><li> Ajouter 50 ul d&#39;une solution à 0,5 mg / ml de peptide (par exemple, REDV) dans 50 mM de tampon carbonate, pH 9 , contenant 0,01% de NaN3, au fond des puits individuels d&#39;une plaque à puits fraîche 24 et placer délicatement le disque à l&#39; envers époxyfonctionnalisé -down ( par exemple, marquée vers le bas) sur la goutte de la solution de peptide. Assurez-vous que l&#39;espace entre le fond du puits et le disque en PTFE est complètement mouillée en raison de l&#39;action capillaire. </li><li> Incuber dans une chambre humide (par exemple, toute boîte en plastique refermable avec un couvercle de fermeture étanche) avec atmosphère humidifiée (en plaçant du papier de soie humide sur le fond) pendant au moins 3 heures ou toute la nuit. Note: Quoique le motif REDV peut être considéré comme bien caractérisé, d&#39;une séquence d&#39;acides aminés brouillés ou inverse peut être inclus comme témoin négatif supplémentaire. </li><li> Laver trois fois avec de l&#39;eau et stériliser dans 50% d&#39;isopropanol / eau pendant au moins 30 min. Avant cellule ensemencement, rinse les échantillons dans une solution saline stérile tamponnée au phosphate (PBS). </li></ol> 3. Cellule Semis <ol><li> Cultivez HUVEC en utilisant des procédures de culture de cellules standards 17,18. </li><li> Placer les échantillons peptidiques conjugués avec la partie modifiée dans un 24 puits. Utilisez des disques de PTFE non traités comme témoin. </li><li> Semences 5 x 10 4 cellules HUVEC dans 2 ml de milieu par puits et incuber pendant 4 heures à 37 ° C et 5% de CO2 dans un incubateur. </li><li> Retirez les disques, rincer soigneusement pour éliminer les cellules seules et transférer dans une assiette bien fraîche 24. Ajouter 2 ml de milieu frais et on incube pendant la durée souhaitée (par exemple 24 h, w 1, etc.). Changer le milieu tous les deux jours. </li><li> Préparer une solution mère de 1 mg / ml de calcéine-AM dans le diméthylsulfoxyde (DMSO). </li><li> Après la croissance des cellules supprimer le milieu, laver avec du PBS et ajouter PBS contenant 1 pl / ml de calcéine-AM tache (par exemple, 1 pi d&#39;une solution mère par ml PBS). agiter et Incubat doucemente à 37 ° C pendant 45 min dans l&#39;obscurité. </li><li> Laver avec du PBS et prendre immédiatement micrographies sur un microscope à fluorescence équipé de filtres FITC standards (Ex 488 nm, Em 515 nm). Utilisez grossissement de 100 fois. Effectuer triplicats de non modifiée ainsi que des échantillons traités. </li><li> En utilisant le logiciel ImageJ déterminer la zone colonisée par les cellules. Vous pouvez également compter les cellules manuellement ou utiliser ImageJ. Les deux méthodes donnent des informations similaires au sujet de la fixation et la croissance des cellules sur les surfaces respectives. </li></ol>

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<li>Gabriel, M., Nazmi, K., Veerman, E. C., Nieuw Amerongen, A. V., Zentner, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Preparation+of+LL-37-grafted+titanium+surfaces+with+bactericidal+activity%5BTitle%5D)+AND+%22Bioconjugate+Chem%22%5BJournal%5D)">Preparation of LL-37-grafted titanium surfaces with bactericidal activity.</a> Bioconjugate Chem. 17, 548-550 (2006).</li>
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</ol>

Les auteurs n’ont rien à divulguer.

La description détaillée du protocole de modification de la surface du PTFE se compose d&#39;étapes successives en commençant par l&#39;élimination du fluor à partir du squelette polymère tel que représenté sur la figure 6. Par conséquent, une couche est formée qui contient une quantité abondante de carbone-carbone conjuguées doubles liaisons conformément à la couleur brun foncé qui se sont développées lors du traitement naphtalénure. oxydation standard avec acide peroxyde d&#39;hydrogène donne une surf...

Divers polymères utilisés en médecine qui ont été approuvés pour un certain temps ne présentent pas la biocompatibilité améliorée, à savoir, le manque de cellules-adhésivité, l&#39; induction de l&#39; encapsulation fibrotique et thrombogénicité, pour ne citer que quelques - uns. Les interactions entre le biomatériau et le système biologique a lieu principalement à la surface de l&#39;implant. En conséquence, les recherches ont porté sur la modification de surface afin de créer des propriétés appropriées pour une application désirée, tout en laissant les propriétés de la matière en vrac non affecté. Polytétrafluoroéthylène (PTFE) en tant que polymère physiologiquement inerte est utilisé dans de nombreux domaines médicaux tels que hernie treillis chirurgical 1, ports médicaux 2 et, surtout, des greffes vasculaires 3. Notamment en cas de contact avec le sang de la nature hydrophobe de PTFE provoque une adsorption non spécifique des composants du plasma, et en conséquence l&#39;adhérence des plaquettes, ce qui entraîne souvent thrombotic événements et de l&#39; occlusion du greffon 4. En outre, le PTFE, comme la plupart des polymères, ne supporte pas l&#39; adhésion cellulaire et la couverture qui serait une caractéristique souhaitable d&#39;induire la formation d&#39;une couche bénéfique des cellules endothéliales (EC) sur le (luminale) surface interne du greffon vasculaire 5. Un endothélium biomimétique devrait remplir plusieurs des fonctions de son équivalent naturel, notamment ses propriétés antithrombotiques 6. Une stratégie générale de modification biomimétique est basée sur le concept de doter le matériau exclusivement avec des cellules adhésivité tout en laissant les propriétés des matériaux en vrac non affecté. En outre, l&#39; adhésion des plaquettes peut être réduite en incorporant l&#39; anti-adhésif (anti-fouling) attribue 7. - Divers peptides principalement dérivés de protéines de la matrice extracellulaire - ont été décrits qui améliorent fortement l&#39; adhésion cellulaire en se liant à des récepteurs cellulaires, appartenant à la classe des intégrines 8. L&#39;êtrest exemple connu à cet égard est le peptide Arg-Gly-Asp (RGD) qui interagit avec la plupart des types de cellules. D&#39;autres séquences d&#39;acides aminés sont reconnus par les intégrines exclusivement exprimés sur des cellules spécifiques. Par exemple, Arg-Glu-Asp-Val (REDV) et Tyr-Ile-Gly-Ser-Arg (YIGSR) ont été trouvés à se lier à CEs d&#39;une manière spécifique 9. L&#39; immobilisation covalente de ces peptides a été effectuée sur une grande variété de matériaux intrinsèquement non adhésives , y compris les métaux et les polymères 10,11. PTFE poreux, plus précisément en PTFE expansé (ePTFE) - ainsi que le polyéthylène téréphtalate (PET) - est le matériau le plus important pour la production de greffes vasculaires 12. Techniques physiques établies pour les traitements appropriés, tels que la modification de plasma 13 ou par des méthodes photochimiques 14, sont entravés par le fait que les structures poreuses et / ou tubulaires ne sont pas faciles à traiter à l&#39; intérieur des pores ou la lumière respectivement. La chimie humidele PTFE est une tâche difficile en raison de la nature hautement inerte du polymère contenant fluorin qui résiste à la plupart des attaques chimiques 15. Dans cet article, nous décrivons une méthode relativement facile pour une stratégie de modification covalente. Adapté d&#39;une procédure pour rendre le PTFE liable, les groupes fonctionnels ont été créés à la surface des matériaux qui servent de points d&#39;ancrage pour la conjugaison en outre des molécules biologiquement actives.

<table><tbody><tr><td>Feuille PTFE 0,5 mm</td><td>Cadillac Plastic&nbsp ;</td><td>n/a</td><td></td></tr><tr><td>Peptide REDV</td><td>Genecust</td><td>n/a</td><td>synthèse personnalisée >pureté de 95</td></tr> % <tr><td>iso-propanol</td><td>Sigma Aldrich</td><td>34965</td><td></td></tr><tr><td>tétrahydrofurane (THF)</td><td>Sigma Aldrich</td><td>401757</td><td></td></tr><tr><td>diméthylsulfoxyde</td><td>Sigma Aldrich</td><td>D8418</td><td></td></tr><tr><td>tamis moléculaire 3 & Aring ;</td><td>Sigma Aldrich</td><td>208574</td><td></td></tr><tr><td>sodium métallique</td><td>Sigma Aldrich</td><td>483745</td><td></td></tr><tr><td>solution saline tamponnée au phosphate (PBS)</td><td>Sigma Aldrich</td><td>D8537</td><td></td></tr><tr><td>naphtalène</td><td>Sigma Aldrich</td><td>147141</td><td></td></tr><tr><td>peroxyde d’hydrogène 30 %</td><td>Sigma Aldrich</td><td>95321</td><td></td></tr><tr><td>acide trichloracétique</td><td>Sigma Aldrich</td><td>T6399&nbsp ;</td><td></td></tr><tr><td>diéthylène glycol diglycidyléther</td><td>Sigma Aldrich</td><td>17741</td><td></td></tr><tr><td>diisocyanate d’hexaméthylène (HMDI)</td><td>Sigma Aldrich</td><td>52650</td><td></td></tr><tr><td>Calcein-AM</td><td>Sigma Aldrich</td><td>56496</td><td></td></tr><tr><td>bicarbonate de sodium</td><td>Sigma Aldrich</td><td>S6014&nbsp ;</td><td></td></tr><tr><td>azoture de sodium</td><td>Sigma Aldrich</td><td>71290</td><td></td></tr><tr><td>24 plaques</td><td>de puits Greiner-Bio-One</td><td>662 160</td><td></td></tr><tr><td>ATR-FTIR spectrophotomètre Nicolet Magna-IR 850</td><td>&nbsp ; Nicolet</td><td>n/a</td><td></td></tr><tr><td>microscope à fluorescence Olympus X-70</td><td>Olympus</td><td>n/a</td><td></td></tr><tr><td>cellules endothéliales de la veine humbilicale (HUVECs)</td><td>Lonza</td><td>n/a</td><td></td></tr><tr><td>ePTFE greffe vasculaire</td><td>Gore</td><td>n/a</td><td></td></tr></tbody></table>

wet chemistry and peptide immobilisation sur polytétrafluoroéthylène pour l&#39;amélioration de l&#39;adhérence cellulaire

Wet Chemistry and Peptide Immobilization on Polytetrafluoroethylene for Improved Cell-adhesion

Doter matériaux de surface avec des propriétés de cellules-adhésif est une stratégie commune dans la recherche biomatériau et l&#39;ingénierie tissulaire. Ceci est particulièrement intéressant pour les polymères déjà approuvés qui ont une utilisation de longue date en médecine parce que ces matériaux sont bien caractérisées et les questions juridiques liées à l&#39;introduction de polymères nouvellement synthétisés peuvent être évités. Polytétrafluoroéthylène (PTFE) est l&#39;un des matériaux les plus fréquemment employés pour la fabrication de greffes vasculaires, mais le polymère manque d&#39;adhérence cellulaire favorisant fonctions. Endothélialisation, soit une couverture complète de la greffe de surface interne avec une couche confluente de cellules endothéliales est considérée clé pour une performance optimale, notamment en réduisant la thrombogénicité de l&#39;interface artificielle. Cette étude porte sur la croissance des cellules endothéliales de PTFE peptidique modifié et compare ces résultats à ceux obtenus sur un substrat non modifié. Couplage avec leendothélial peptide adhésif de cellule Arg-Glu-Asp-Val (REDV) est réalisée via l&#39;activation du polymère contenant fluorin utilisant le réactif naphtalénure de sodium, suivie par des étapes ultérieures de conjugaison. La culture cellulaire est réalisée en utilisant des cellules humaines endotheliales de veine ombilicale (HUVEC) et une excellente croissance cellulaire sur la matière peptidique immobilisé est démontrée sur une période de deux semaines.

Les résultats des étapes cruciales de réaction chimique ont été contrôlées par spectroscopie infrarouge (Figure 1). L&#39;activation initiale avec naphtalénure de sodium génère des doubles liaisons - et, dans une moindre mesure - OH fonctionnalités. Le signal indiquant liaisons C = C disparaissent lors de l&#39;oxydation, ce qui donne une surface portant presque exclusivement groupes hydroxyle. Analyse des autres étapes de conjugaison standards ne sont pas représentés ic...

L’adhérence cellulaire est essentielle à de nombreuses approches dans la recherche sur les biomatériaux et l’ingénierie tissulaire. Une technique étape par étape est présentée à l’aide de la chimie humide pour la modification de surface de l’important polymère PTFE avec des peptides.

Wet Chemistry and Peptide Immobilisation sur polytétrafluoroéthylène pour l&#39;amélioration de l&#39;adhérence cellulaire

Endowing materials surface with cell-adhesive properties is a common strategy in biomaterial research and tissue engineering. This is particularly ...

L'objectif général de cette procédure est de fournir un traitement de surface basé sur la chimie humide pour le polymère carboné fluoré appelé polytétrafluoroéthylène, ou PTFE. Cette méthode peut aider à répondre à des questions clés dans le domaine des biomatériaux, notamment sur la façon d'améliorer la biocompatibilité des polymères médicaux. Le principal avantage de cette technique est qu'elle nécessite un équipement minimal et qu'elle est plus largement applicable par rapport à d'autres méthodes.La préparation de la solution de naphtalénure de sodium nécessite des conditions strictement anhydres. Couper 0,25 gramme de sodium métallique en petits morceaux afin d'améliorer la dissolution. Ajouter le sodium métallique à une solution contenant 1,4 gramme de naphtalène dans 20 millilitres de tétrahydrofuranne, placée dans un flacon en verre de 100 millilitres muni d'un bouchon à vis et d'un barreau aimanté recouvert de PTFE.Chauffer légèrement la solution pour favoriser davantage la dissolution. La solution finale présente une couleur foncée, légèrement verdâtre, et peut être conservée dans des conditions strictement sèches. Découper des disques en PTFE de 12 millimètres de diamètre dans une feuille d'une épaisseur de 0,5 millimètre.Marquez un côté et nettoyez avec de l'isopropanol. Incubez individuellement les échantillons de PTFE dans la solution d'activation pendant une à deux minutes, à l'aide de pinces. Le changement de couleur, du blanc au brun foncé, indique un traitement réussi.Rincer ensuite deux fois avec du THF, puis avec de l'isopropanol. Oxyder les échantillons traités dans du peroxyde d'hydrogène à 30 %, contenant 20 % d'acide trichloroacétique, pendant trois heures. Laver à l'eau et sécher.La surface présente désormais une légère teinte brunâtre. Traiter les disques oxydés avec du HMDI à 50 % dans du THF anhydre pendant deux heures. Rincer ensuite avec du THF et laisser sécher.Enfin, hydrolyser les échantillons porteurs d'isocyanate dans l'eau pendant deux à trois heures, puis sécher. Placer chaque disque aminé, côté marqué vers le haut, dans les puits individuels d'une plaque de 24 puits. Ajouter 1,5 millilitre de la solution d'époxyde, en veillant à ce que les échantillons soient entièrement recouverts.Après une incubation de deux heures, laver deux fois à l'eau et une fois au tampon de carbonate. Au fond de chaque puits d'une nouvelle plaque de 24 puits, ajouter 50 microlitres de peptide à 0,5 milligramme par millilitre et 50 millimolaire de tampon de carbonate, pH 9, contenant 0,1 % d'azoture de sodium. Placer délicatement les disques fonctionnalisés à l'époxyde, à l'envers, sur les gouttes de solution de peptide.Veillez à ce que l'espace entre le fond d'un puits et le disque en PTFE soit complètement mouillé par action capillaire. Incubez la plaque pendant au moins trois heures, ou toute la nuit, dans une chambre humide à atmosphère humidifiée, obtenue en plaçant du papier essuie-tout humide sur le fond de la chambre. Après l'incubation, rincez trois fois à l'eau et stérilisez dans de l'eau contenant 50 % d'isopropanol pendant au moins 30 minutes.Avant la mise en culture des cellules, comme décrit dans le protocole textuel, rincez les échantillons dans du chlorure de sodium tamponné au phosphate stérile. Les résultats des étapes cruciales de la réaction chimique ont été suivis par spectroscopie infrarouge. L'activation initiale avec du naphtalamide de sodium génère des doubles liaisons, et dans une moindre mesure, des fonctions hydroxyles.Le signal indiquant les doubles liaisons carbone disparaît lors de l'oxydation, conduisant à une surface portant presque exclusivement des groupes hydroxyles. Les changements de couleur dus à l'activation et à l'oxydation sont conformes à la chimie attendue. On s'attend à ce que les systèmes de doubles liaisons conjuguées soient brunâtres, et la perte de ces systèmes de doubles liaisons entraîne une clarification.En outre, le résultat possible de l'activation et de l'oxydation sur la morphologie de surface a été étudié par microscopie électronique à balayage. Pratiquement aucun effet néfaste du traitement n'a été observé. L'immobilisation du peptide adhésif pour les cellules endothéliales, arginine, glutamine, acide aspartique valine, sur la surface du polymère favorise la croissance des cellules endothéliales.Alors qu'aucune adhésion ni prolifération cellulaire ne se produit pratiquement sur le matériau non traité, la modification favorise fortement la colonisation sur une période de deux semaines. Appliquée comme exemple à une utilisation clinique, la modification a été réalisée de manière identique sur le matériau d'origine d'un greffon disponible commercialement, constitué de PTFE expansé, avec des résultats similaires sur une période d'une semaine. Une fois maîtrisée, cette technique prend environ 12 heures.Il convient de garder à l'esprit que cette procédure est spécifique au PTFE. Après avoir visionné cette vidéo, vous devriez bien comprendre comment activer la surface du PTFE et comment immobiliser des peptides lors des étapes suivantes. En suivant cette procédure, d'autres molécules, telles que des polysaccharides ou des facteurs de cordes, peuvent être immobilisées de manière similaire.Gardez à l'esprit que le travail avec des produits chimiques hautement toxiques et corrosifs est dangereux, et que des précautions standard doivent être prises.

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Cette vidéo d'illustration, un procédé rapide et efficace de méthacrylate de poly (éthylène glycol), permettant à des polymérisations en chaîne et la synthèse de l'hydrogel. Il démontrera comment introduire similaire fonctionnalités de méthacrylamide en peptides, les méthodes d'analyse communs de détail pour évaluer l'efficacité de la fonctionnalisation, des suggestions pour le dépannage et les modifications avancées, et la démonstration de techniques typiques hydrogel de caractérisation.

La fonctionnalisation assistée par micro-ondes de poly (éthylène glycol) et peptides sur-résine pour l&#39;utilisation dans la polymérisation en chaîne et de la Formation hydrogel

Des surfaces d’îles marines à l’échelle nanométrique composées de copolymères séquencés thermosensibles ont été fabriquées par la méthode Langmuir-Schaefer pour contrôler l’adhésion et le détachement cellulaires spontanés. La préparation de la surface ainsi que l’adhésion et le détachement des cellules à la surface ont été visualisés.

Préparation de thermosensible surfaces nanostructurées pour l&#39;ingénierie tissulaire

L’électrophorèse capillaire en solution libre est une méthode analytique rapide, peu coûteuse et robuste qui permet le suivi quantitatif des réactions chimiques en temps réel. Son utilité pour une analyse rapide, pratique et précise est démontrée ici par l’analyse de la greffe de peptides covalents sur des films de chitosane pour une meilleure adhérence cellulaire.

Electrophorèse Capillaire pour surveiller Peptide greffant sur chitosan Films en temps réel

Différentes méthodes pour manipuler l’architecture tridimensionnelle en hydrogels à base de protéines sont évaluées ici en ce qui concerne les propriétés du matériau. Les réseaux macroporeux sont fonctionnalisés avec un peptide de la cellule-adhésif et leur faisabilité en culture cellulaire est évaluée à l’aide de deux lignées de cellules de modèle différent.

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Dans cette méthode, nous utilisons la photopolymérisation et techniques chimie clic pour créer des motifs protéique ou peptidique sur la surface des hydrogels de polyéthylène glycol (PEG), fournissant immobilisée bioactifs signaux pour l’étude des réponses cellulaires in vitro .

Structuration des protéines bioactives ou Peptides sur Hydrogel utilisant photochimie pour Applications biologiques

Présenté ici est un protocole pour l’appending peptide CD47 (pepCD47) aux endonts métalliques utilisant la chimie de polybisphosphonate. La fonctionnalisation des enprothents métalliques à l’aide de pepCD47 empêche l’attachement et l’activation des cellules inflammatoires améliorant ainsi leur biocompatibilité.

Atténuation de l’attachement cellulaire transmissible par le sang aux implants métalliques grâce à l’immobilisation du peptide dérivé du CD47

Ce protocole présente les procédures expérimentales pour effectuer le test d’empreinte d’adhérence afin d’imager les événements d’adhérence pendant l’adhésion rapide des cellules.

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Contrôle de l’adhérence des cellules à l’aide de techniques de modelage d’hydrogel pour des applications en microscopie à force de traction

Ce protocole décrit la synthèse de peptides cycliques pénétrant dans les cellules avec des réticulations aromatiques et l’évaluation de leur perméabilité à travers les barrières biologiques.

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Ce protocole vise à évaluer les peptides biofonctionnels auto-assemblés pour l’adhésion cellulaire, la morphologie des organoïdes et l’expression génique par immunomarquage. Nous utiliserons une lignée cellulaire de cancer colorectal pour fournir un moyen rentable d’obtenir des organoïdes pour des tests intensifs.

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Ce protocole présente trois méthodes de préparation simples et rapides qui utilisent les conditions environnementales pour déclencher l’auto-assemblage des peptides en hydrogels. De plus, la caractérisation des hydrogels peptidiques est décrite, démontrant que des hydrogels peptidiques mécaniquement stables peuvent être formés dans ces conditions simples.

Préparation d’hydrogels de peptides auto-assemblés mécaniquement stables

Découvrez un traitement de surface par chimie humide du PTFE pour améliorer la biocompatibilité des polymères médicaux. Cette méthode simple permet d'immobiliser des peptides et favorise l'adhérence cellulaire.

Wet Chemistry and Peptide Immobilisation sur polytétrafluoroéthylène pour l'amélioration de l'adhérence cellulaire

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