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Mesure de la signalisation des récepteurs couplés à la protéine G via liaison GTP radiomarquée
Mesure de la signalisation des récepteurs couplés à la protéine G via liaison GTP radiomarquée
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Biochemistry
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JoVE Journal Biochemistry
Measuring G-protein-coupled Receptor Signaling via Radio-labeled GTP Binding

Mesure de la signalisation des récepteurs couplés à la protéine G via liaison GTP radiomarquée

Full Text
17,288 Views
10:13 min
June 9, 2017

DOI: 10.3791/55561-v

Chirag Vasavda*1, Nicholas W. Zaccor*1, Paul C. Scherer1, Charlotte J. Sumner1,2, Solomon H. Snyder1,3,4

1The Solomon H. Snyder Department of Neuroscience,Johns Hopkins University School of Medicine, 2Department of Neurology and neurosurgery,Johns Hopkins University School of Medicine, 3Departments of Pharmacology and Molecular Sciences,Johns Hopkins University School of Medicine, 4Department of Psychiatry and Behavioral Sciences,Johns Hopkins University School of Medicine

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Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.

La liaison à la guanosine triphosphate (GTP) est l'un des premiers événements dans l'activation du récepteur couplé aux protéines G (GPCR). Ce protocole décrit comment caractériser pharmacologiquement des interactions spécifiques de GPCR-ligand en surveillant la liaison de l'analogue GTP radio-marqué, [ 35 S] guanosine-5'-O- (3-thio) triphosphate ([ 35 S] GTPγS), en Réponse à un ligand d'intérêt.

L’objectif global de cette procédure est d’isoler les membranes cellulaires qui contiennent des récepteurs couplés aux protéines G ou RCPG et d’étudier la pharmacologie des RCPG à l’aide d’un essai de liaison fonctionnelle au GTP. Cette méthode peut aider à répondre à des questions clés dans le domaine de la biochimie concernant les propriétés pharmacologiques des récepteurs couplés aux protéines G établis ou orphelins. Les principaux avantages sont qu’il est simple, rapide et mesure l’événement le plus proximal dans la signalisation des récepteurs couplés aux protéines G.

Tout d’abord, placez des cellules rénales embryonnaires humaines sur une plaque de culture tissulaire de 10 centimètres dans 10 millilitres de DMEM complet. Incuber les cellules à 37 degrés Celsius et 5 % de dioxyde de carbone, jusqu’à ce que 70 à 80 % de confluence soient atteintes. Après l’incubation, transfecter les cellules avec HAMOR1 à l’aide d’un réactif de transfection approprié conformément aux directives du fabricant.

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