Name: Procédé amélioré pour la création d’un In Vitro barrière hémato - encéphalique modèle basé sur les cellules endothéliales du cerveau porcin (Vidéo) | JoVE Journal
Uploaded: 2017-09-24T14:00:00.000+00:00
Duration: 9 min 23 s
Description: Découvrez un protocole optimisé pour établir un modèle in vitro de barrière hémato-encéphalique utilisant des cellules endothéliales cérébrales porcines primaires. Cette méthode offre une haute résistance électrique transendothéliale et une faible perméabilité pour les études de biodisponibilité.

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Les auteurs tient à remercier Elisabeth Helena Bruun, Sarah Christine Christensen et Niels M. Kristiansen, assistance technique, et la Fondation de Lundbeck octroyer le numéro R155-2013-14113.

Les auteurs ne rapportent aucun conflit d’intérêts.

Purification et prolifération des pBEC
Au cours de la procédure de purification, étapes critiques incluent une élimination rapide et efficace des méninges et la séparation de la matière blanche et grise, ce qui est important pour le rendement de la purification et la pureté et la mise en place correcte du modèle. Pour le BBB présenté en vitro modèle d’à l’aide de pBECs, nous avons amélioré et simplifié d’une procédure de purification basée sur l’homogénéisation mécanique de matière grise...

Structure cellulaire et le fonctionnement de la barrière hémato - encéphalique
À l’interface de l’appareil circulatoire et système nerveux central (SNC), la BHE agit comme un site réglementaire clé pour contrôle homéostatique du microenvironnement CNS, qui est indispensable à leur fonctionnement et de la protection du système nerveux. Le site de la BHE est les cellules endothéliales tapissant la lumière du vaisseau sanguin. Dans les capillaires du cerveau, les cellules endothéliales forment complexes jonctions intercellulaires et profils d’expression fortement polarisée de particuliers transporteurs influx et l’efflux de veiller très spécifique transport moléculaire entre le sang et le cerveau 1. Les composants structurels des complexes de jonction serrée incluent des protéines de la famille occludin et claudin, les protéines zonula occludens (ZO), les cingulin et associés des molécules d’adhésion jonctionnelles (confitures). Claudin 5 est particulièrement important dans la limitation jonctionnelle paracellulaire. L’induction et l’entretien de ce phénotype caractéristique d’endothéliales BBB impliquent des interactions dynamiques avec les cellules environnantes, y compris les péricytes et astrocytes, neurones, les membranes basales, qui, avec le cerveau endothéliale, forme des cellules le neurovasculaire unité (NVU)2,3. Les mécanismes impliqués dans ces interactions ne sont pas encore entièrement compris, mais incluent l’échange de signaux chimiques entre les cellules, ce qui permet la modulation de la perméabilité BBB à court terme et induit à long terme BBB fonctions4. Astrocytes en particulier sont connus pour contribuer au phénotype de cellules endothéliales du cerveau et sont une source de facteurs de régulation tels que gliales neurotrophiques facteur (affectant l’AMPc intracellulaire)5, facteur de croissance de fibroblaste base6, hydrocortisone,7et transformant le facteur de croissance β (TGF-β)8. L’effet du TGF-β, cependant, a été débattue9.
In Vivo pour In Vitro BBB
Des études in vivo continuent à fournir des informations précieuses sur la biologie BBB. Cependant, les modèles de culture de cellules peuvent apporter un éclairage supplémentaire et constituent des outils utiles à la compréhension détaillée des aspects moléculaires et fonctionnelles de la BHE dans santé et maladie. Bien que les interactions complexes entre les types de cellules et les constituants de la BHE sont difficiles à atteindre dans des modèles in vitro , il y a eu, depuis la première purification de cellules endothéliales du cerveau et l’application de celles-ci dans les mono-cultures 10 , 11 , 12, développé des procédures de purification et des conditions de croissance de la BHE cell cultures modèles, ce qui entraîne une plus grande ressemblance avec la barrière en vivo . Les modèles BBB couramment utilisés in vitro sont basés sur les cellules primaires d’origine bovine, porcine et rongeur ainsi que sur les lignées cellulaires immortalisées. Chaque modèle a des inconvénients et des avantages différents. Pour le choix de modèle et de la comparaison, marqueurs de validation comme l’expression des enzymes, transporteurs, récepteurs et protéines structurales BBB sont utilisés pour donner un aperçu de l’actuelle de modèles établis1.
Objectif du protocole
Une caractéristique importante de la BHE est étanchéité barrière et haute TEER, pourtant un grand nombre de modèles disponibles ne reflète pas bien les niveaux en vivo . Intégrant le développement et l’optimisation des contributions de plusieurs laboratoires, le but du présent protocole est de présenter une méthode pour établir un haut TEER in vitro BBB modèle basé sur pBECs primaire en MC avec ou sans l’ACM, ou dans le NCC avec primaire astrocytes de rat ou d’origine porcine. L’appliqué les procédures et la mise en place du modèle comprennent les efforts pour éliminer les cellules contaminantes et améliorer la différenciation des pBECs en un phénotype BBB. Ce travail a abouti à la création de modèles TEER fiables et de haute perméabilité paracellulaire faible et bonne expression fonctionnelle de récepteurs, transporteurs et principales protéines jonctionnelles serrés. Cependant, comme les astrocytes sont un facteur qui contribue au phénotype de cellules endothéliales du cerveau, les trois différentes conditions de culture représentent trois différents phénotypes de cellules endothéliales du cerveau. Le modèle de la NCC est particulièrement utile pour l’étude de certains mécanismes spécialisés participent à la découverte de médicaments, des études de transport et trafic intracellulaire, ainsi que pour l’étude des interactions cellule-cellule où est l’expression maximale des caractéristiques BBB avantageuse.
Origine et histoire du protocole
Le modèle pBEC décrit ici est largement basé sur le modèle porcin développé dans les laboratoires Eisai (Londres) par Dr Louise Morgan et collègues, whichis basée sur un succès antérieure du cerveau de boeuf cellules endothéliales modèle13. La méthode originale de préparation de cellules a été une filtration de deux étages à l’aide de nylon des maillages pour intercepter les microvaisseaux, suivis d’une subculture afin d’améliorer la pureté. Dans l’élaboration antérieure de la méthode, étanchéité optimale de BBB phénotype et barrière ont été atteints par la croissance dans un milieu supplémenté, y compris les ACM. Autres modifications à la méthode ont été faites par R. Skinner dans laboratoire du Prof N. Rothwell de Manchester UK14,15. La méthode a été adoptée par le laboratoire Abbott, KCL London, où Patabendige rend considérablement plus simple à préparer en évitant l’utilisation des astrocytes ou ACM et en éliminant les cellules contaminantes telles que les péricytes avec puromycine. Les premiers documents ont confirmé que le modèle MC conservé plusieurs caractéristiques importantes du in vivo BBB, y compris des jonctions serrées efficaces, les systèmes de transport membranaire et transcytose médiée par les récepteurs16,17 , 18 , 19 , 20. plus tard S. Yusof encore testé culture mixte d’astrocytes et trouvé il a nettement amélioré TEER, donc il s’agit de la variante préférée actuellement utilisée dans le laboratoire de Abbott21. Le modèle a été correctement transféré à la M. Nielsen lab à Aarhus, où des modifications ont été introduites (ce protocole), y compris les gris simplificatrice d’importance extraction, à l’aide de maillage qu’une étape de filtration et une étape de revêtement de filtre unique combinaison de collagène et la fibronectine. La procédure appliquée pour l’isolement des astrocytes porcins (ce protocole) reposait sur des protocoles mis au point par le laboratoire de T. Moos à Aalborg, décrite par Thomsen et al.22. La TEER et autres propriétés du modèle généré à Londres et Aarhus sont semblables, ce qui donne confiance à l’idée que le modèle est facilement transféré entre les laboratoires et réagit bien à une observation attentive et de la rationalisation des étapes de la méthode. En effet, S. Yusof a maintenant établi le modèle de MC dans un pays tropical (Malaisie)23, qui impliquait un ajustement supplémentaire pour des conditions locales et les sources de tissus.
Avantages par rapport aux méthodes alternatives et actuellement mis en place des modèles
Par rapport aux cellules endothéliales du cerveau d’origine bovine et rongeur, pBECs offrent l’avantage d’avoir un taux plus faible de la perte de la phénotype BBB in vivo après isolement24. En outre, les pBECs sont capables de former des barrières endothéliales relativement serrés, même lorsque cultivées en MC (Ω 800 cm2)16 par rapport aux niveaux communément déclarés pour les monocouches de lignées cellulaires tels que bEND.5 et bEND.3 (Ω 50 cm2) 25 , 26 , 27, cEND (300-800 Ω cm2)28,29,30et cerebEND (Ω 500 cm2)29,31,32et cerveau primitif cellules endothéliales de souris (100-300 Ω cm2)SS = « xref » > 33,34,35,36 et rat (100-300 Ω cm2)37,38. Cependant, la TEER a montré dépendance sur les procédures de purification et de la culture. Dans la plupart des cas, l’ajout de ACM ou de co-culture avec des astrocytes montre des effets divergents sur les cellules endothéliales et une augmentation dans l’étanchéité des couches endothéliales1. Néanmoins, avec les efforts visant à optimiser les conditions de culture, seulement les modèles axés sur les bovins ont montré des valeurs TEER comparables aux modèles axés sur les porcins (moyennes de 800 Ω cm2 dans MC, jusqu'à 2500 Ω cm2 en culture mixte d’astrocytes)13 ,39,40,41,42,43,44,45. Comme les modèles basés sur le cerveau de boeuf primaire les cellules endothéliales ont montré des variations importantes, entre et au sein de laboratoires14,45,46,47,48, reproductibilité pourrait être un problème. Dans le modèle pBEC rapporté ici, les laboratoires qui contribuent ont atteint TEER très similaire et les valeurs de perméabilité paracellulaire avec une faible variabilité, dans et entre les laboratoires. Par conséquent, il devrait être possible pour les autres laboratoires d’établir un modèle robuste avec une faible variabilité à l’aide de la méthode présentée ici. En formant des couches endothéliales serrés, plus de modèles avec pBECs ont déjà été validés par l’expression des protéines des jonctions serrées, fonctionnelle BBB transporteurs, récepteurs et enzymes et les qualités démontrées pour une série d’études de15 , 16 , 17 , 19 , 20 , 22 , 49 , 50 , 51 , 52 , 53 , 54 , 55 , 56 , 57 , 58 , 59. par ailleurs, transcriptome inédit des données sur les cultures co de pBECs montrent un profil attendu des transporteurs BBB et récepteurs (résultats non publiés, Nielsen et al.).
Le modèle porcin de BBB a un autre avantage que le génome, l’anatomie, la physiologie, et la progression de la maladie du porc reflètent la biologie humaine à un degré plus élevé que les autres modèles établis dispose de60, qui sont favorables pour le industrie pharmaceutique. Cervelle de porc est un sous-produit courant de la filière viande, elles constituent une source facilement accessible du cerveau des cellules endothéliales, réduisant au minimum le nombre d’animaux nécessaires pour les expériences et offrant un rendement élevé de purification d’un cerveau de porc. Bien que la purification et la culture de cellules primaires est un peu fastidieux et nécessite l’expertise de normalisation dans la mise en place du modèle, les cellules primaires génèrent les modèles plus fiables de la BBB. Lignées cellulaires immortalisées ne peuvent se substituer, en tant que propriétés importantes telles que l’étanchéité de la barrière, des profils d’expression transporteur et microenvironnement ne reflètent pas les résultats expérimentaux obtenus in vivo61, 62. in vitro modèles offrent l’avantage de vivre-cellule d’imagerie avec une résolution supérieure, permettant la visualisation de processus intracellulaires en permettant une approche de proximité aux cellules prélevés ou observées, à l’aide d’objectifs avec un grossissement supérieur et de la meilleure qualité optique63. Ce n’est pas le cas pour l’utilisation de la microscopie biphotonique chez les individus vivants. En outre, les modèles in vitro permettent de transfecter cellules, permettant la visualisation de protéines étiquetées et enquête de leur trafic.
Applications du modèle
La fonction de cette barrière n’est pas fixe et peut être modulée dynamiquement en physiologie et en pathologie. Dans de nombreuses maladies neurologiques, y compris neurodégénératives, maladies inflammatoires et infectieuses, perturbation et augmentation de la perméabilité de la BHE est observé64,65,66,67 . Afin de réduire et de prévenir la progression de la maladie et les dommages ultérieurs, identification et caractérisation des mécanismes moléculaires qui sous-tendent la modulation de la BHE sont d’une importance majeure. Dans ce contexte, fiable in vitro modèles sont très demandés par l’industrie pharmaceutique et en outre un rôle important dans la prédiction de perméabilité BBB de médicaments pour le système nerveux central. N’importe quel modèle in vitro agissant comme un écran de perméabilité doit afficher une voie paracellulaire restrictive, une architecture cellulaire physiologiquement réaliste et une expression fonctionnelle de transporteur mécanismes68. Démontré dans les précédentes études16,17,57et par la perméabilité paracellulaire et expression de protéines TJ et AJ ici, le modèle présenté répond à tous ces critères et convient à une gamme de BBB études dans les deux physiologie normale et en pathologie. Les points forts de la méthode de purification et de culture présentée comprennent une combinaison de simplicité et de la reproductibilité et la possibilité d’inclure astrocytaires influencent avec un robuste et fiable haute TEER in vitro BBB modèle résultant. Pour ce but, les astrocytes de porc et rat origine auraient dû être divulgués pour augmenter le phénotype BBB de pBECs dans une semblable manière22.

<table><tbody><tr><td>Fibronectine</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>F1141</td><td></td></tr><tr><td>Collagène IV</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>C5533</td><td></td></tr><tr><td>Poly-L-lysine</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>P1524</td><td></td></tr><tr><td>DMEM/F-12</td><td>Lonza</td><td>BE12-719F</td><td></td></tr><tr><td>DMEM/Low Glucose</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>D6046</td><td></td></tr><tr><td>Pénicilline/Streptomycine</td><td>Gibco Invitrogen</td><td>15140</td><td></td></tr><tr><td>Sérum dérivé du plasma (PDS)</td><td>First Link UK Ltd.</td><td>60-00-89</td><td></td></tr><tr><td>Sérum fœtal bovin (FBS)</td><td>Gibco Invitrogen</td><td>10-270-106</td><td></td></tr><tr><td>Trypsine/EDTA</td><td>Gibco Invitrogen</td><td>15090-046</td><td></td></tr><tr><td>Héparine</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>H3393</td><td></td></tr><tr><td>Puromycine</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>P8833</td><td></td></tr><tr><td>Hydrocortisone</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>H4001</td><td></td></tr><tr><td>8-CPT-cAMP</td><td>Biolog</td><td>C010</td><td></td></tr><tr><td>RO 20-1724</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>B8279</td><td></td></tr><tr><td>Sulfate de gentamicine</td><td>Lonza</td><td>17-518Z</td><td></td></tr><tr><td>DMSO</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>34896</td><td></td></tr><tr><td>PBS</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>D8537</td><td></td></tr><tr><td>EtOH</td><td>VWR</td><td>20,824,296</td><td>Mélanger la solution à 70 % de l’EtOH</td></tr><tr><td>DNAse à</td> 96 % <td>1 Sigma-Aldrich</td><td>D4513</td><td></td></tr><tr><td>Collagénase CLS2</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>C6885</td><td></td></tr><tr><td>ddH2O</td><td></td><td></td><td>Fabriqué avec</td></tr><tr><td>des flacons Elga System T75</td><td>Thermo Scientific</td><td>156499</td><td></td></tr><tr><td>inserts Costar Transwell (inserts à membrane perméable aux cellules)</td><td>Costar</td><td>CLS3401</td><td>Plaque à 12 puits, 12 mm de diamètre, 0,4 &mu ; Membrane en polycarbonate m</td></tr><tr><td>Tubes à centrifuger de 15 ml Tubes à centrifuger</td><td>Cellstar</td><td>188271</td><td></td></tr><tr><td>50 ml</td> Boîtes de Pétri <td></td><td>Cellstar 227261</td><td></td></tr><tr><td></td><td>Thermo Scientific</td><td>150350</td><td></td></tr><tr><td>Flacons cryogéniques</td><td>Thermo Scientific</td><td>377224 Flacon de</td><td></td></tr><tr><td>500 ml</td><td>Thermo Scientific</td><td>159910/159920</td><td></td></tr><tr><td>Scalpels</td><td>Swann-Morten</td><td>REF0211</td><td>Type 24</td></tr><tr><td>Homogénéisateur de tissus</td><td>Sigma</td><td>D9188</td><td></td></tr><tr><td>140 &mu ; filtres m</td><td>MERCK</td><td>NY4H04700</td><td></td></tr><tr><td>40 &mu ; m filters</td><td>Corning</td><td>431750</td><td></td></tr><tr><td>Système de chambre EndOhm</td><td>World Precision Instruments</td><td>ENDOHM-12</td><td>Chambre EndOhm pour coupelles de culture de 12 mm</td></tr><tr><td>Système d’électrodes EVOM2</td><td>World Precision Instruments</td><td>300523+STX100C</td><td>Système de mesure TEER avec paire d’électrodes rigide STX-100C</td></tr><tr><td>Aiguille longue</td><td>Sigma</td><td></td><td>Fixer à une seringue</td></tr><tr><td>Pince incurvée à pointe fine</td><td>KLS Martin</td><td>12-409-12-07</td><td></td></tr><tr><td>Pince à embout large</td><td>VWR</td><td>82027-390</td><td></td></tr><tr><td>Porte-filtre</td><td>MERCK Milipore</td><td>Swinnex-47</td><td></td></tr><tr><td>Seringue de 50 ml</td><td>Braun</td><td>4617509F</td><td></td></tr><tr><td>Seringue de 10 ml</td><td>Terumo</td><td>SSt20ESI</td><td></td></tr><tr><td>Anticorps anti-occludine</td><td>Abcam</td><td>ab31721</td><td>1:100</td></tr><tr><td>Anti-p120 Anticorps caténine</td><td>BD Laboratoires de transduction</td><td>610133</td><td>1:200</td></tr><tr><td>Anticorps anti-ZO-1</td><td>Invitrogen</td><td>61-7300</td><td>1:200</td></tr><tr><td>Anticorps anti-Claudin 5</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>SAB4502981</td><td>1:100</td></tr><tr><td>Donkey anti rabbit IgG conjugué à la farine Alexa 568</td><td>Thermo Scientific</td><td>A10042</td><td>1:500</td></tr><tr><td>Donkey anti souris IgG conjugué à la farine Alexa 488</td><td>Thermo Scientific</td><td>A21202</td><td>1:500</td></tr><tr><td>Saccharose</td><td>Perkin Elmer</td><td>NEC100X250UC</td><td>0,15&micro ; l/ml conc de travail final</td></tr><tr><td>Lucifer Yellow</td><td>Sigma</td><td>L0144</td><td>10 &micro ; g/ml conc de travail final</td></tr></tbody></table>

procédé amélioré pour la création d’un in vitro barrière hémato - encéphalique modèle basé sur les cellules endothéliales du cerveau porcin

Improved Method for the Establishment of an In Vitro Blood-Brain Barrier Model Based on Porcine Brain Endothelial Cells

Le but du présent protocole présente une procédure optimisée pour la purification et la culture du pBECs et à établir des modèles in vitro barrière hémato - encéphalique (BHE) basés sur pBECs en mono-culture (MC), MC avec milieu conditionné par l’astrocyte (ACM), et co-culture (NCC) avec les astrocytes de porc sans contact ou des rat origine. pBECs ont été isolées et cultivées à partir de fragments des capillaires du cortex du cerveau des porcs domestiques âgés de 5 à 6 mois. Ces fragments ont été purifiées par extraction soigneuse des méninges, l’isolement et l’homogénéisation de la matière grise, filtration, digestion enzymatique et centrifugation. Pour éliminer les autres cellules contaminantes, les fragments capillaires ont été cultivées avec contenant la puromycine moyen. Lorsque confluente de 60 à 95 %, pBECs de plus en plus des fragments capillaires ont été repiquées à filtre à membrane perméable insère et mis en place dans les modèles. Pour augmenter l’étanchéité de la barrière et le BBB phénotype caractéristique de pBECs, les cellules ont été traitées avec les facteurs de différenciation suivant : membrane perméable 8-CPT-cAMP (cAMP abrégé ici), hydrocortisone et un inhibiteur de la phosphodiestérase, RO-20-1724 (RO). La procédure a été réalisée sur une période de 9 à 11 jours, et en établissant le modèle du NCC, les astrocytes ont été cultivés 2 à 8 semaines à l’avance. Respect des procédures décrites dans le protocole a permis la mise en place de couches endothéliales avec perméabilité paracellulaire très restreint, avec la CCN modèle montrant une résistance électrique moyenne transendothéliale (TEER) de 1249 ± 80 cm Ω 2et la perméabilité paracellulaire (Papp) pour le jaune Lucifer de 0,90 10-6 ± 0,13 10-6 cm s-1 (moyenne ± SEM, n = 55). Une évaluation plus poussée de ce phénotype pBEC a montré la bonne expression de la protéines jonctionnelles serré claudin 5, ZO-1, occludin et adherens jonction protéine p120 caténine. Le modèle présenté peut être utilisé pour une série d’études de la BHE dans la santé et la maladie et la perméabilité paracellulaire très restrictives, ce modèle convient aux études de transport et trafic intracellulaire.

Mise en place des modèles In Vitro BBB
Dans la méthode présentée, optimisée, culture de pBECs et l’établissement du système insert membrane perméable avec MC ou sans ACM ou NCC avec les astrocytes (Figure 1) a été réalisées pour une période de 9 à 11 jours (Figure 2). Pour la sélection des cellules endothéliales, une culture initiale des fragments capillaires puri...

L’objectif du protocole est de présenter une procédure optimisée pour la création d’un modèle barrière hémato - encéphalique (BHE) in vitro basé sur les cellules endothéliales cérébrales porcines primaires (pBECs). Le modèle montre reproductibilité élevée, grande étanchéité et est adapté pour des études de transport et trafic intracellulaire en découverte de médicaments.

Procédé amélioré pour la création d’un In Vitro barrière hémato - encéphalique modèle basé sur les cellules endothéliales du cerveau porcin

The aim of this protocol presents an optimized procedure for the purification and cultivation of pBECs and to establish in vitro blood-brain barrier (BBB) ...

L’objectif global de ce protocole est de purifier et d’isoler les cellules endothéliales cérébrales porcines primaires afin de mettre en place un modèle étanche in vitro de barrière hémato-encéphalique. Cette méthode peut aider à répondre à des questions clés dans le domaine de la barrière hémato-encéphalique, telles que l’administration de médicaments, la perméabilité, le trafic des récepteurs, ainsi que l’étanchéité et la polarité du BB. Le principal avantage de ce modèle est le rendement élevé de cellules endothéliales cérébrales primaires qui peuvent être utilisées pour créer un modèle in vitro de barrière hémato-encéphalique qui a un TEER élevé et une faible perméabilité. Pour commencer cette procédure, placez les cerveaux dans un banc d’écoulement stérile et lavez-les doucement avec un litre de PBS dans un bécher posé sur de la glace.Ensuite, retirez soigneusement les méninges de chaque cerveau à l’aide d’une pince à pointe fine. À l’aide d’un scalpel, grattez la matière grise du cerveau un par un et transférez le matériel isolé dans des boîtes de Pétri contenant 20 millilitres de DMEM/F-12 placés sur de la glace. Pour une fragmentation initiale, faites passer la matière gris

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Cette méthode décrit comment isoler et d'immortaliser les cellules endothéliales microvasculaires du cerveau de souris. Nous décrivons un protocole étape par étape à partir de l'homogénéisation du tissu cérébral, phases de digestion, l'ensemencement et l'immortalisation des cellules. Habituellement, cela prend environ cinq semaines pour obtenir un ensemble homogène, immortalisé ligne de cellules endothéliales microvasculaires.

Génération d&#39;une ligne Immortalisé microvasculaire murin des cellules endothéliales du cerveau comme un<em&gt; In Vitro</em&gt; Modèle barrière hémato-encéphalique

Cette vidéo montre l’isolement des capillaires à partir de cerveaux porcins frais. Le processus consiste à éliminer les méninges, à isoler la matière grise du tissu cérébral, à homogénéiser et à filtrer la matière grise pour isoler les capillaires, et enfin à utiliser la digestion enzymatique pour purifier davantage les capillaires.

Purifier les capillaires d’un cerveau porcin

Création de modèles humains de la barrière hémato-encéphalique (BHE) peut bénéficier des recherches sur les conditions du cerveau associées à l'échec du Bureau. Nous décrivons ici une technique améliorée pour la préparation d'un modèle de BBB de contact, ce qui permet de co-culture d'astrocytes humains et les cellules endothéliales du cerveau sur les côtés opposés d'une membrane poreuse.

Amélioration de la méthode pour la préparation d&#39;une base de cellules humaines, Contactez modèle de la barrière hémato-encéphalique

Le but de la présente étude était de valider la reproductibilité d'un modèle in vitro du Bureau impliquant un rat syngénique de co-culture de cellules endotheliales et les astrocytes. La monocouche de cellules endothéliales présenté TEER haute et basse perméabilité LY. L'expression de protéines spécifiques TJ, les réponses fonctionnelles de l'inflammation et de la fonctionnalité des transporteurs et récepteurs ont été évalués.

Mise en place d&#39;un<em&gt; In Vitro</em&gt; Modèle de Rat barrière hémato-encéphalique (BHE): un regard sur le Bureau imperméabilité et de transport médié par le récepteur

Les cellules endothéliales microvasculaires cérébrales (BMEC) sont interconnectées par des protéines jonctionnelles spécifiques formant une barrière hautement régulée séparant le sang et le système nerveux central (SNC), ce que l’on appelle la barrière hémato-encéphalique (BHE). L’isolement des cellules endothéliales microvasculaires cérébrales primaires murines, comme nous l’avons vu dans ce protocole, permet des études in vitro détaillées de la BHE.

Isolement de cellules primaires murins cerveau endothéliales microvasculaires

Ici, nous décrivons un modèle murin in vitro de la barrière hémato-encéphalique qui utilise la spectroscopie cellulaire d’impédance, en mettant l’accent sur les conséquences sur l’intégrité et la perméabilité des cellules endothéliales lors de l’interaction avec les cellules T activées.

Un<em&gt; In vitro</em&gt; Modèle de la barrière hémato-encéphalique utilisant la spectroscopie d&#39;impédance: un regard sur T Cell-endothélial cellulaire Interaction

La barrière hémato-encéphalique humaine empêche sélectivement la pénétration des molécules hydrophiles et des agents pathogènes dans le cerveau. Plusieurs pathologies, y compris la méningite et le délire postopératoire, sont associées à une perméabilité accrue de la barrière hémato-encéphalique. Ici, nous décrivons un modèle de culture cellulaire endothéliale pour tester la perméabilité de barrière par traversal microbien.

Analyse de la perméabilité de la barrière hémato-encéphalique par traversale microbienne à travers les cellules endothéliales microvasculaires

La barrière hémato-encéphalique (BBB) est une unité neurovasculaire multicellulaire régulant étroitement l’homéostasie cérébrale. En combinant les iPSC humains et les technologies d’organes sur puce, nous avons généré une puce BBB personnalisée, adaptée à la modélisation des maladies et aux prédictions de pénétrabilité des médicaments du SNC. Un protocole détaillé est décrit pour la génération et l’exploitation de la puce BBB.

Génération d’une puce de barrière de sang-brain basée sur iPSC

Ce protocole décrit une méthode pour établir un modèle in vitro de barrière hémato-encéphalique humaine (BHE). Les cellules endothéliales et les péricytes sont ensemencés de chaque côté d’un filtre à insert (compartiment sanguin), et les astrocytes sont ensemencés dans le puits inférieur (compartiment cérébral). Le modèle caractérisé a été utilisé pour des expériences de transport de nanoparticules.

Un système cellulaire à triple culture modélisant la barrière hémato-encéphalique humaine

La barrière hémato-encéphalique joue un rôle crucial dans le maintien d’un environnement cérébral stable et sain. Le dysfonctionnement de la BHE est associé à de nombreuses maladies neurologiques. Nous avons développé un modèle 3D dérivé de cellules souches de la BHE pour étudier la pathologie cérébrovasculaire, l’intégrité de la BHE et la façon dont la BHE est modifiée par la génétique et la maladie.

Reconstruction de la barrière hémato-encéphalique in vitro pour modéliser et cibler thérapeutiquement les maladies neurologiques

Découvrez un protocole optimisé pour établir un modèle in vitro de barrière hémato-encéphalique utilisant des cellules endothéliales cérébrales porcines primaires. Cette méthode offre une haute résistance électrique transendothéliale et une faible perméabilité pour les études de biodisponibilité.

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