Name: Composition et caractéristiques des Aquafaba : l’eau extraite des pois chiches commercialement en conserve (Vidéo) | JoVE Journal
Uploaded: 2018-02-10T14:00:00.000+00:00
Duration: 10 min 35 s
Description: Découvrez la composition et les propriétés fonctionnelles de l'aquafaba, liquide visqueux des pois chiches en conserve, pour remplacer les œufs et le lait. Cette méthode utilise la RMN et l'électrophorèse.

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Cette recherche a été financée par l’Institute of International Education de Scholar Rescue Fund (IIE-SRF).

Séparation de Aquafaba de pois chiches
<ol><li>Obtenir des boîtes de conserve de pois chiches de magasin d’alimentation local et ouvert avec un manuel d’ouvre-boîtes.</li>
	<li>Boîtes d’étiquette de A à J.</li>
	<li>Chiches séparés d’aquafaba à l’aide d’un acier inoxydable mailles des tamis de cuisine et pesant les pois chiches séparés et aquafaba.</li>
</ol>Obtenir un échantillon représentatif de pois chiches et Aquafaba pour l’analyse chimique.
<ol start="4"><li>Choisir au hasard les pois dix chiches après la vidange de l’aquafaba pour déterminer la teneur en humidité.</li>
	<li>Placer les pois chiches sélectionnés dans un séchage d’étain et de la chaleur à 100 ± 2 ° C pendant 16 à 18 heures dans une étuve.</li>
	<li>Après séchage, moudre les pois chiches en poudre pour une utilisation ultérieure (p. ex. analyse de teneur en carbone et de protéines).</li>
	<li>Aquafaba gel et mousse d’aquafaba de chaque source à-20 ° C et puis sécher dans un séchoir de gel. L’aquafaba séchée sera utilisé pour la détermination de contenu d’azote et de carbone.</li>
</ol>Aquafaba propriétés fonctionnelles
<ol start="8"><li>Déterminer aquafaba viscosité à 25 ° C à l’aide d’une tasse de coquille de N2.<ol>
<li>Plonger la tasse de shell dans l’aquafaba.</li>
		<li>Enregistrer le temps nécessaire pour vider la tasse11. Une minuterie est démarrée lorsque la coupe a été levée par l’aquafaba et s’est arrêtée lorsque le flux de la coupe s’arrête.</li>
		<li>La viscosité d’aquafaba peut être déterminée par un graphique fourni avec la coupe qui porte sur la viscosité et le temps de drainage.</li>
	</ol>
</li>
	<li>Capacité moussante<ol>
<li>Mélanger la solution d’aquafaba (100 mL) dans un bol en acier inoxydable avec un batteur à main à réglage de vitesse de 10 pendant 2 min.</li>
		<li>Noter le volume de mousse immédiatement après mélanger 100 mL de la solution aquafaba comme Vf100 en plaçant la mousse dans une tasse à mesurer graduée.</li>
		<li>Laissez la mousse pour reposer et sécher au fil du temps à observer la stabilité de la mousse et prélever un échantillon de mousse séchée.</li>
	</ol>
</li>
</ol>Paramètres de la couleur des graines de pois chiche
<ol start="10"><li>Choisir au hasard les pois chiches de chaque boîte pour la détermination de la couleur.</li>
	<li>Calibrer le colorimètre de laboratoire de chasseur en utilisant les normes de référence, noir et blanc avant les mesures.</li>
	<li>Valeurs de coordonnées de couleur sont déterminés par la CIE Lab système12, y compris le L (positive représente blanc et 0 représente sombre), un (positive est rouge et négatif est vert) et b (positive est jaune et négatif est bleue) dans triple avec lumière du jour 65°.</li>
</ol>Protéine et teneur en carbone
<ol start="13"><li>Déterminer les teneurs en protéines et en carbone par combustion à l’aide d’un analyseur élémentaire13. Teneur en protéines est estimée à teneur en azote multiplié par 6,2514.</li>
</ol>Teneur en humidité
<ol start="14"><li>Déterminer les graines et aquafaba teneur en humidité par chauffage des échantillons à 100 ± 2 ° C pendant 16 à 18 h dans un four de séchage15.</li>
</ol>Spectrométrie RMN
<ol start="15"><li>Préparation des échantillons<ol>
<li>Avant, la spectrométrie de centrifuger les échantillons aquafaba à 9200 × g pendant 10 min. Après centrifugation, passer le liquide surnageant à travers un filtre de seringue de 0,45 µm (filtre de seringue 25 mm avec membrane en polytétrafluoroéthylène (PTFE)). Transférer l’échantillon aquafaba (0,4 mL) dans un NMR tube wuth 50 mg ajouté l’oxyde de deutérium à l’intérieur et le sujet de l’échantillon pour analyse par RMN.</li>
		<li>Pour l’exemple de la mousse séchée décrit précédemment, l’échantillon (25 mg) est dans l’oxyde de deutérium (500 mg) et la solution est soumise à l’analyse par RMN.</li>
		<li>Placez tous les échantillons pour 13C-RMN et 1H-RMN en tubes plafonnés mm 5 NMR. Ajouter de l’oxyde de deutérium et de 3-(triméthylsilyl) sel de sodium acide propionique-2,2,3,3-d4 (troisième) dans chaque tube de NMR de fournir un signal de verrouillage de solvant et d’agir comme étalon interne, respectivement.</li>
	</ol>
</li>
	<li>Conditions de NMR<ol>
<li>Acquérir des spectres de RMN du proton avec une RMN à 500 MHz ou un champ élevé semblable Spectromètre RMN) avec au moins 16 scans par spectre en utilisant une eau suppression programme tels que le spin gradient du champ double pulse echo proton (DPFGSE-RMN) impulsion séquence16.</li>
		<li>Ajuster le décalage spectral pour placer le sommet prenne à 0 ppm puis utilisez le logiciel d’intégration pour déterminer les quantités relatives des composés présents.</li>
	</ol>
</li>
</ol>Électrophorèse
Remarque : Pour cette étape, aquafaba qui a abouti à la mousse plus stable (marque H) a été choisi. Cette marque ne contenait pas de sel.
<ol start="17"><li>Préparation des échantillons<ol>
<li>Introduire aquafaba dans le réservoir supérieur de trois centrifuge régénéré cellulose ultrafiltration dispositifs chaque avec différents poids moléculaire coupe offs (MWCO) de 3, 10 ou 50 kDa.</li>
		<li>Placer les unités de filtration centrifuge dans une centrifugeuse appropriée à 4 ° C et centrifuger à 3900 × g pendant 2 h pour obtenir des fractions surnageant et rétentat. Les fractions surnageantes servaient à 1H-RMN analyse de molécules plus petites, en l’absence d’espèces de haute masse moléculaire (mm). La fraction de rétentat 3 kDa membrane fut utilisée pour la séparation par électrophorèse comme on croyait que cette membrane conserverait la plupart des protéines.</li>
		<li>Estimer le contenu en protéine deux surnageant et retenate à l’aide d’une méthode de Bradford modifiée à l’aide de l’albumine sérique bovine comme une norme17.</li>
		<li>Placer les échantillons de liquide surnageant et rétentat fractions dans des tubes Eppendorf et soumettre ces fractions à trembler à une fréquence de 25 s (10 min) dans un shaker adapté18. Observer la solution secouée pour déterminer si une mousse a formé de trembler.</li>
		<li>Dissoudre le rétentat en ajoutant 2,0 mL d’eau distillée à l’appareil d’ultrafiltration pour un deuxième traitement de centrifugation atteindre diafilteration. Soumettre l’appareil d’ultrafiltration à une seconde centrifugation à 4 ° C et 3900 × g pendant 2 h.</li>
		<li>Mélanger le rétentat (0,025 g) avec 1 mL de 0,02 M Tris-HCl pH 7,4 ou le tampon phosphate salin (PBS) pH 7,4 pour dissoudre les protéines.</li>
		<li>Centrifuger le mélange à 21000 x g pendant 1 min.</li>
		<li>Utilisez le surnageant pour déterminer la teneur en protéines à l’aide de la Bradford modifié tel que mentionné précédemment.</li>
	</ol>
</li>
	<li>Séparation par électrophorèse Remarque : Le 3 kDa MWCO membrane rétentat (décrit ci-dessus) est soumise à la séparation par électrophorèse à l’aide de sodium dodecyl sulfate polyacrylamide gel électrophorèse (SDS-PAGE).<ol>
<li>Préparer des gels de polyacrylamide utilisant un gel résolution de polyacrylamide de 15 % et un gel de concentration 5 % polyacrylamide.</li>
		<li>Appliquer un échantillon de 20 µg protéine à une voie du gel et PageRuler marqueur protéique échelle avec une gamme de 10-170 kDa à une voie distincte sur gel de polyacrylamide.</li>
		<li>Sous réserve les gels à un courant électrique dans un système cellulaire de Tetra mini-protéine modifiée de Laemmli (1970)19. Pour conditions d’utilisation de l’électrophorèse, gel, coloration et décoloration suivre Ratanapariyanuch et al. (2012) 20.</li>
	</ol>
</li>
</ol>Peptide masse empreintes
Remarque : Couper les bandes du gel SDS-PAGE de 3 rétentat kDa (MWs d’environ 8, 10, 13, 14, 15, 20, 22, 31, 37, 55 et 100 kDa) pour la digestion trypsique selon Ratanapariyanuch et al. (2012) 20 et effectuer une analyse de spectrométrie de masse.
<ol start="19"><li>Digestion en gel<ol>
<li>Se détachant les bandes deux fois en l’immergeant dans 100 µL de 200 mM de bicarbonate d’ammonium (NH4HCO3) à 50 % d’acétonitrile (ACN) et incuber à 30 ° C pendant 20 min.</li>
		<li>Après l’achèvement de la coloration, traiter les échantillons de gel avec ACN (100µl) pendant 10 min et puis sécher sous vide, en utilisant un évaporateur sous vide centrifuge, à température ambiante pendant 15 minutes.</li>
		<li>Plonger les échantillons de gel séchée dans 100 µL de 10 mM dithiothréitol (DTT) en solution de3 100 mM NH4HCO et incuber à 56 ° C pendant 1 h.</li>
		<li>Retirer réduire les excès de la mémoire tampon et le remplacer par 100 µL alkylants tampon [iodoacétamide 100 mM dans l’eau de la spectrométrie de masse (MS) qualité].</li>
		<li>Incuber les échantillons de gel dans l’obscurité pendant 30 min à température ambiante.</li>
		<li>Échantillons de gel de laver deux fois avec 200 mM NH4HCO3 (100 µL), réduire les gels en immergeant dans ACN (100 µL), re-gonfler les gels avec 200 mM NH4HCO3 (100 µL) et réduire à nouveau en traitant avec ACN (100 µL).</li>
		<li>Égoutter l’ACN et sécher les échantillons de gel sous vide dans un évaporateur sous vide centrifuge pendant 15 min.</li>
		<li>Re-gonfler les échantillons de gel séchée à l’aide de 20 µL de tampon de la trypsine (la trypsine ng/µL 50 mm 1:1,200 NH4HCO3: solution mère de trypsine) suivi par l’addition de 30 µL de 200 mM NH4HCO3 à chaque échantillon.</li>
		<li>Incuber les échantillons sur un Thermomixer nuit à 30 ° C sous agitation à 300 tr/min.</li>
		<li>Arrêter la réaction de digestion de la trypsine en ajoutant 1/10 de l’acide composé de 1 % de volume final (volume de mélange après l’étape 8) et extraire les peptides tryptiques d’échantillons de gel à l’aide de 100 µL de 0,1 % d’acide composé à 60 % ACN et sécher sous vide en utilisant un centrifuge évaporateur sous vide.</li>
		<li>Stocker les peptides tryptiques à-80 ° C avant l’analyse par spectrométrie de masse.</li>
	</ol>
</li>
	<li>Spectrométrie de masse<ol>
<li>Reconstituer les peptides tryptiques en ajoutant 12 µL d’eau de qualité MS : ACN : l’acide formique (97:3:0.1, v/v), puis vortexer pendant 1 à 2 min de dissoudre des peptides.</li>
		<li>Centrifuger la solution obtenue à 18 000 g pendant 10 min à 4 ° C.</li>
		<li>Transfert en aliquotes (10 µL) de la solution à flacons MS pour l’analyse de spectrométrie de masse en tandem par chromatographie liquide (LC-MS/MS) sur un spectromètre de masse de temps de vol (QTOF) quadrupôle équipé d’un appareil de chromatographie en phase liquide et une interface de LC-MS.</li>
		<li>Effectuer la séparation chromatographique de peptide à l’aide d’une puce haute capacité HPLC : composé d’une colonne d’enrichissement nL 360 et une colonne analytique de 75 µm × 150 mm, les deux emballé avec 180 C18-A, Å, 3 µm de phase stationnaire.</li>
		<li>Charger des échantillons sur la colonne de l’enrichissement à l’acide formique 0,1 % dans l’eau à un débit de 2,0 µL/min.</li>
		<li>Transférer les échantillons de la colonne d’enrichissement dans la colonne analytique.</li>
		<li>Conditions de séparation de peptide sont : un système de solvants dégradé linéaire consistant en un (acide formique 0,1 % dans l’eau) de solvant et solvant B (0,1 % de l’acide formique chez ACN). Le dégradé linéaire commence avec 3 % de solvant B qui augmente de 25 % de solvant B pendant 50 min. Par la suite, solvant B augmente de 25 à 90 % pendant 10 min à un débit de 0,3 µL/min.</li>
		<li>Acquérir des données de spectrométrie de masse electrospray ions positifs en utilisant une tension capillaire fixé à 1900 V, l’ion fragment fixé à 360 V et le séchage gaz (azote) fixé à 225 ° C avec un débit de 12,0 L/min.</li>
		<li>Recueillir des résultats spectrales sur une gamme de masses de 250-1700 (masse/charge ; m/z) à une vitesse de balayage de 8 MS/MS de recueillir de données de spectres/s. sur une gamme de 50-1700 m/z et une largeur d’isolation set de 1,3 unités de masse atomique. Sélectionnez les ions précurseurs plus intenses de top 20 pour chaque analyse MS pour tandem MS avec une exclusion active min 0,25.</li>
	</ol>
</li>
	<li>Identification des protéines<ol>
<li>Convertir un format de données de masse/charge à l’aide du logiciel d’analyse Qualitative Agilent MassHunter données spectrales.</li>
		<li>Traiter les données par rapport à la base de données UniProt Cicer arietinum (pois chiche), à l’aide de SpectrumMill comme le moteur de recherche de base de données.</li>
		<li>Inclure les paramètres de recherche comme une erreur massive de fragment de 50 ppm, une erreur massive de parent de 20 ppm, spécificité de clivage de la trypsine et carbamidomethyl comme une modification fixe de cystéine.</li>
	</ol>
</li>
</ol>

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</ol>

Les auteurs n’ont rien à divulguer.

Dans cette recherche, nous avons trouvé ce aquafaba de pois chiche provenant de différentes sources commerciales produit mousses qui varient en composition chimique et propriétés (volume et la stabilité de la mousse). Il y avait une corrélation positive entre la viscosité d’aquafaba et d’humidité. Augmentation de volume de mousse (Vf100) n’était pas reliée à ces paramètres. Les additifs tels que sel et disodium EDTA pourrait supprimer viscosité et stabilité de la mousse comme aquafaba de pois chiches en conser...

Plus en plus produits végétariens sont créés qui imitent les propriétés de la viande, le lait et les œufs. Les propriétés fonctionnelles des impulsions sont importantes dans leurs utilisations actuelles dans les applications alimentaires et leurs propriétés sont explorées dans le développement de remplacement des protéines animales. Par exemple, les ventes de produits laitiers alternatives étaient $ 8,8 milliards USD en 2015 et ce marché est en plein essor. Ce marché devrait pour augmenter à $ 35,06 milliards d’ici 2024. En outre, la tendance à la hausse de la demande de substituts du lait à base de plantes résulte, en partie, des préoccupations de santé des consommateurs au sujet de cholestérol, des antibiotiques et des hormones de croissance souvent utilisés dans la production de lait1. De même, les protéines végétales et des hydrocolloïdes œuf aliment d’allaitement marchés connaissent une expansion rapide et un taux de croissance annuel composé de 5,8 % est attendu pour ces matériaux au cours des 8 prochaines années, avec des ventes de $ 1,5 milliards USD en 20262. Un nombre croissant de consommateurs préfère les sources de protéines végétaliennes, allergène réduit les régimes alimentaires et réduit l’empreinte carbone des produits alimentaires. Demande de produits axée sur l’impulsion, en particulier de lentilles, pois chiches et fèves augmentent régulièrement en raison de la forte teneur en protéines, de fibres alimentaires et de teneur en gras saturés d’impulsions3. Légumineuses contiennent également des composés phytochimiques avec activité biologique potentiellement bénéfiques4.
Les entités commerciales, des scientifiques et des particuliers ont adopté des approches différentes pour communiquer que les propriétés de qualité du pois chiche basées remplacements d’oeuf et de lait. Gugger et al. 5 produit un lait-comme des grains d’amidon haute dont le haricot adzuki et pois chiche. Dans leurs méthodes décrites les promoteurs ont tenté de montrer que leur produit est unique et différent de « aquafaba »6. Dans une autre approche commerciale élucidée par Tetrick et al. succédané de œuf 7 a base de plantes a été développé. Leur demande de brevet décrit des méthodes de combiner la farine de légumineuses avec des épaississants connus qui émulent la fonction du blanc de œuf dans les matériaux au four. Formules typiques incluent 80-90 % farine de légumineuses et additifs épaississement de 10 à 20 %.
Peer-revu littérature aussi indique les fonctionnalités possibles avec pois chiche et a démontré que les fractions de protéine albumine obtenues à partir de farine de pois chiche kabuli et desi ont des propriétés de bonne émulsification. Ils ont également constaté un effet significatif de la source de pois chiche sur le rendement et la performance de l’albumine8.
Après le rapport initial d’internet décrivant « aquafaba » par le chef Français Joël Roessel, un mouvement de l’open source est montrant l’utilité d’aquafaba en remplacement du blanc d’oeuf et protéines laitières dans de nombreuses applications alimentaires. Il y a beaucoup de pages Web très consultés et des vidéos sur YouTube montrant l’intégration d’aquafaba dans les aliments qui émulent les qualités de la glace, crème, meringue, mayonnaise, fromage, oeufs brouillés et crème fouettée. La plupart des pionniers fournissant des applications open source d’aquafaba (recettes) obtenir leur matériel de pois chiches en conserve à rude épreuve et en utilisant le liquide dans leurs recettes. Ces personnes sont pour la plupart des scientifiques non qualifiés. Commentaires vidéo sections indiquent que les intimés ont copié les recettes et certains n’ont pas réussi à reproduire les succès des partisans aquafaba.
Les trois approches (corporative, scientifique et open source) au développement d’oeuf et lait de remplacement ont du mérite mais manquent une dimension importante. Scientifiques appliquées, les spécialistes des sciences fondamentales et les particuliers promulguant des produits à base de légumineuses ont incomplètement caractérisée et normalisé leurs matières entrantes. Normalisation d’un produit pour un usage spécifique est une pratique industrielle courante. Cultivars de pois chiche ne sont pas normalisées pour la qualité de l’aquafaba et les pratiques industrielles de mise en conserve sont normalisés pour produire des pois chiches conformes pas aquafaba.
Selon les études d’autres produits, il est prévisible que le génotype et l’environnement contribuera à impulsion aquafaba qualité. On sait que le génotype et l’environnement affectent pois chiche kabuli, mise en conserve des propriétés9. En règle générale, les effets génotypiques sont grandes entre espèces apparentées et plus petites au sein des membres d’une espèce. Variation des propriétés physiques et chimiques peut être réduite par le biais de préservation de l’identité qui permet la sélection de cultivars avec les propriétés désirées. Effets sur l’environnement peuvent également être volumineux et sont gérés par l’évaluation de la qualité et mélange de performances standard dans certains essais de10.
Il existe de nombreux cultivars génétiquement distinctes de pois chiche en production commerciale. Pour obtenir des exemples, l’Université de la Saskatchewan Crop Development Centre, une source majeure de germoplasme commercial de pois chiche, a libéré 23 cultivars de pois chiche depuis 1980, dont 6 sont actuellement recommandés pour la culture au Canada. Alors que les manuscrits scientifiques décrivent souvent le cultivar utilisé dans une étude, les brevets et les pages internet interrogés n’indiquaient pas le cultivar utilisé ou la provenance des pois chiches. La normalisation des cultivars et manipulation pourrait aider les utilisateurs à augmenter leur succès en utilisant des pois chiche, mais cette information n’est pas disponible sur les produits de pois chiches en conserve.
L’objectif de cette recherche est de déterminer les composants aquafaba qui contribuent des propriétés moussantes. Ici, on a comparé les propriétés rhéologiques du aquafaba des marques commerciales de pois chiche et les propriétés chimiques ont été étudiées par RMN, électrophorèse et peptide masse prise d’empreintes. À notre connaissance, c’est la première recherche qui décrit la composition chimique et les propriétés fonctionnelles des composants améliorant de viscosité aquafaba.

<table><tbody><tr><td><fort>Lyophilisateur</fort></td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Sèche-linge</td><td>Labconco Inc.</td><td>7948040</td><td></td></tr><tr><td><fort>Mélangeur&nbsp ; </td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Batteur à main en acier inoxydable&nbsp ;</td><td>Mesure</td><td></td> de la viscosité PC2200MR<td></td></tr><tr><td><forte>forteLoblaws </fort></td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Coupe en coque n° 2&nbsp ;</td><td>Norcross Corp.</td><td></td><td></td></tr><tr><td><forte>mesure des couleurs&nbsp ; </td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Spectrophotomètre Colorflex HunterLab&nbsp ;</td><td>Laboratoire Hunter Associates Inc.</td><td></td><td></td></tr><tr><td><Fortes>Teneur en Protéines et en Carbone" nbsp ; </td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Analyseur élémentaire&nbsp ; &nbsp ;</td><td>LECO Corp.</td><td>CN628</td><td></td></tr><tr><td>Spectrométrie RMN</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Spectrafuge 24D&nbsp ; &nbsp ;</td><td>Labnet International Inc.</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Filtres à seringues&nbsp ;</td><td>VWR International</td><td>CA28145-497</td><td>25 mm, avec 0,45 & micro ; m Membrane PTFE</td></tr><tr><td>Oxyde de deutérium&nbsp ;</td><td>Laboratoires d’isotopes de Cambridge Inc.</td><td>7789-20-0</td><td></td></tr><tr><td>3-(triméthylsilyl)propionique-2,2,3,3-d4</td><td>sel sodique acide Sigma-Aldrich</td><td>169913-1G</td><td></td></tr><tr><td>Bruker Avance 500 MHz spectromètre RMN&nbsp ;</td><td>Bruker BioSpin</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Logiciel TopSpin 3.2&nbsp ;</td><td>Bruker BioSpin GmbH</td><td></td><td></td></tr><tr><td><forte>électrophorèse&nbsp ; </td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Membrane cellulosique régénérée&nbsp ;</td><td>Millipore Corp.</td><td></td><td>3, 10, 50 kDa (MWCO)</td></tr><tr><td>Unité de filtration centrifuge&nbsp ;</td><td>Millipore Corp.</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Centrifugeuse de paillasse&nbsp ;</td><td>Allegra X-22R, Beckman Coulter Canada Inc.</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Broyeur mélangeur MM 300</td><td>F. Kurt Retsch GmbH & Co. KG</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Centrifugeuse Eppendorf 5417C</td><td>Eppendorf</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Saline tamponnée au phosphate, pH 7,4</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>P3813-10PAK</td><td></td></tr><tr><td>Tampon Tris-HCl pH 7,4&nbsp ;</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>T6789-10PAK</td><td></td></tr><tr><td>PageRuler Échelle de protéines pré-colorées&nbsp ;</td><td>Fisher Scientific</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Mini-Protein Tetra Cell system</td><td>BioRad</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Peptide Mass Fingerprinting</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Thermo-Savant SpeedVac</td><td>BioSurplus</td><td></td><td>Centrifuge evaporator&nbsp ;</td></tr><tr><td>Tampon de trypsine&nbsp ;</td><td></td><td></td><td>20 et micro ; L trypsine dans 1 mM d’acide chlorhydrique et 200 mM de NH4HCO3</td></tr><tr><td>Iodoacétamide</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>I1149-5 g</td><td></td></tr><tr><td>Acide trifluoroacétique&nbsp ;</td><td>Fluka</td><td>BB360P050</td><td></td></tr><tr><td>Acetonitrile</td><td>Fisher Scientific&nbsp ;</td><td>L14734</td><td></td></tr><tr><td>Acide formique&nbsp ;</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>33015-500mL</td><td></td></tr><tr><td>Flacon de spectrométrie de masse&nbsp ;</td><td>Agilent Technologies Canada Ltée</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Agilent 6550 iFunnel spectromètre de masse quadripolaire à temps de vol&nbsp ;</td><td>Agilent Technologies Canada Ltée</td><td></td><td>Instrument LC Agilent série 1260 et interface LC-MS Agilent Chip Cube</td></tr><tr><td>HPLC-Chip II : G4240-62030 Polaris-HR-Chip_3C18&nbsp ;</td><td></td><td></td><td>Colonne d’enrichissement 360 nL et 75 &micro ; m & fois ; Colonne analytique de 150 mm, toutes deux remplies de Polaris C18-A, 180&Aring ;, 3 & micro ; phase stationnaire.&nbsp ;</td></tr><tr><td>Agilent MassHunter Logiciel d’analyse qualitative</td><td>Agilent Technologies Canada Ltd.</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Extracteurs de données SpectrumMill</td><td>Agilent Technologies Canada Ltd.</td><td></td><td></td></tr></tbody></table>

composition et caractéristiques des aquafaba : l’eau extraite des pois chiches commercialement en conserve

Composition and Properties of Aquafaba: Water Recovered from Commercially Canned Chickpeas

Pois chiches et autres légumineuses sont généralement vendus comme des produits en conserve, emballés dans une solution épaisse ou une saumure. Cette solution a été récemment montrée pour produire des mousses stables et émulsions et peut agir comme épaississant. Récemment, intérêt dans ce produit a été amélioré par le biais de l’internet où il est proposé que cette solution, maintenant appelée aquafaba par une communauté grandissante, peut être utilisé un remplacement pour la protéine d’oeuf et de lait. Comme aquafaba est à la fois nouveau et développé par une communauté sur internet peu est connu de sa composition ou les propriétés. Aquafaba a été retrouvée dans 10 produits commerciaux de pois chiche en conserve et ont étudié les corrélations entre les aquafaba composition, densité, viscosité et des propriétés moussantes. RMN du proton a été utilisée pour caractériser la composition aquafaba avant et après l’ultrafiltration à travers des membranes avec différents poids moléculaire coupe offs (MWCO de 3, 10 ou 50 kDa). Un protocole pour l’électrophorèse et peptide massive prise d’empreintes digitales est également présentée. Ces méthodes a fourni des renseignements utiles concernant les composants responsables de l’aquafaba des propriétés fonctionnelles. Cette information permettra l’élaboration de pratiques de fabriquer des produits standard d’aquafaba commerciaux et peut aider les consommateurs à choisir des produits d’utilité supérieure ou compatible.

Chaque boîte de pois chiches est étiqueté pour indiquer les ingrédients ajoutés au cours de la mise en conserve. Ingrédients inclus eau, pois chiches, le sel et acide de disodium éthylènediamine tétraacétique (EDTA). En outre, deux boîtes ont été étiquetés comme « peut contenir du chlorure de calcium ». Trois couleurs de doublure distinctes ont été observées ; blanc, transparent jaune et métallisé (tableau 1).
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Aquafaba est un jus visqueux de pois chiche en conserve qui, lorsque agité vigoureusement, produit une mousse blanche relativement stable ou en mousse. L’objectif principal de recherche est d’identifier les composantes d’aquafaba qui contribuent viscosifying/épaississement propriétés à l’aide de la résonance magnétique nucléaire (RMN), ultrafiltration, électrophorèse et peptide masse prise d’empreintes.

Composition et caractéristiques des Aquafaba : l’eau extraite des pois chiches commercialement en conserve

Chickpea and other pulses are commonly sold as canned products packed in a thick solution or a brine. This solution has recently been shown to produce ...

Je m’appelle Martin Reaney. Je suis titulaire de la chaire de recherche sur la qualité et l’utilisation des lipides au ministère de l’Agriculture et des Bioressources de l’Université de la Saskatchewan. Les légumineuses et les fractions de légumineuses ont récemment été utilisées comme substituts du lait et des œufs.À cette fin, nous avons étudié l’utilisation de l’aquafaba pour le remplacement du lait et des œufs. L’aquafaba est l’eau restante des pois chiches en conserve. Cette eau contient des composants qui peuvent épaissir les produits alimentaires et stabiliser les mousses et émulsions alimentaires.Il existe de nombreuses recettes sur Internet qui décrivent l’utilisation de l’aquafaba dans les produits alimentaires. Cependant, les gens rapportent souvent qu’ils ne pouvaient pas répéter les recettes qu’ils ont trouvées sur Internet et obtenir les mêmes propriétés de l’aquafaba que d’autres utilisateurs. L’objectif global de notre étude était d’étudier la corrélation entre la composition, la densité, la viscosité et les propriétés moussantes de l’aquafaba.La RMN et l’électrophorèse ont été utilisées pour étudier la composition de l’aquafaba. Il existe une procédure utilisée par

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Environment

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Une méthode bidimensionnelle de chromatographie en phase gazeuse couplée à la spectrométrie de masse en temps de vol est décrite pour la caractérisation de la fraction aqueuse du bio-brut produite à partir de la liquéfaction hydrothermale des algues. Ce protocole peut également être utilisé pour analyser la fraction aqueuse des produits liquides issus de la pyrolyse rapide, de la pyrolyse catalytique, de la désoxygénation catalytique et de l’hydro-traitement.

Caractérisation qualitative de la fraction aqueuse de hydrothermale Liquéfaction d&#39;algues Utilisation 2D chromatographie en phase gazeuse avec le temps de vol Spectrométrie de masse

Les protocoles décrits dans le présent document facilitent l’étude pratique des réponses bactériennes de l’éthylène en utilisant l’acide 2-chloroéthylphosphonique (CEPA).  L’éthylène est produit in situ par la décomposition de CEPA dans un milieu de croissance bactérienne aqueux, ce qui permet de contourner l’exigence d’éthylène gazeux pur.

En utilisant le composé d&#39;éthylène de libération, l&#39;acide 2-chloroéthylphosphonique, comme un outil pour étudier la réponse de l&#39;éthylène chez les bactéries

Le courant latéral de la production d'huile végétale de Crambe abyssinica a une valeur limitée. Le but de cette étude était de trouver des méthodes pour les matériaux à base de ce courant latéral d'extrusion, ce qui démontre que les produits avec une valeur plus élevée peuvent être produits. Les extrudés se sont avérés avoir des propriétés prometteuses.

Film Extrusion de Crambe abyssinica / Gluten de blé Blends

Nutriments présents sous forme particulaire peuvent beaucoup contribuer aux charges globales dans les eaux de drainage agricole. Cette étude décrit une nouvelle méthode pour capturer pondérée en fonction du débit de l’eau et les particules en suspension de drainage canal ferme pendant toute la durée de l’événement de drainage.

Capturant pondérée en fonction du débit de l’eau et les particules en suspension de canaux agricole pendant les événements de Drainage

L’objectif du protocole est de préparer les hydrolysat de kératine des plumes de poulet par hydrolyse alcaline enzymatique et pour tester si l’ajout d’hydrolysat de kératine dans une base de pommade cosmétique améliore la fonction barrière de la peau (hydratation de rehauts et réduisant ainsi la perte insensible en eau). Essais sont réalisés sur des hommes et femme bénévoles.

Préparation d’hydrolysat de kératine des plumes de poulet et son Application dans les produits cosmétiques

Cette étude présente des méthodologies pour étudier les mécanismes pathomorphologiques et moléculaires sous-jacents à l’interaction entre le pois chiches etla rhizoctonia bataticola. La méthode du papier buvard est utile pour étudier rapidement les réponses du génotype de pois chiches, tandis que la méthode à base de pot malade peut être utilisée pour imposer simultanément la sécheresse et l’infection à R. bataticola et dépister les génotypes tolérants.

Analyses de la maladie de la pourriture des racines sèches chez les pois chiches : une méthodologie détaillée

Le bioessai sur cellules Caco-2 pour la biodisponibilité du fer (Fe) représente une approche rentable et polyvalente pour évaluer la biodisponibilité du Fe dans les aliments, les produits alimentaires, les suppléments, les repas et même les régimes alimentaires. Rigoureusement validé par les études humaines, il représente l’état de l’art pour les études de biodisponibilité du Fe.

Le bioessai sur cellules Caco-2 pour la mesure de la biodisponibilité du fer alimentaire

Nous présentons un protocole pour un système expérimental semi-hydroponique à base de verre supportant la croissance d’une variété de plantes phylogénétiquement distinctes avec ou sans microbes. Le système est compatible avec différents milieux de culture et permet un échantillonnage non destructif de l’exsudat racinaire pour une analyse en aval.

Un système de bocal en verre polyvalent pour le profilage de l’exsudat racinaire semi-hydroponique

Ce protocole présente une méthode évolutive de conversion des déchets alimentaires en bioplastiques biodégradables en polyhydroxyalcanoates (PHA) biodégradables. Il utilise la digestion anaérobie arrêtée pour le prétraitement des déchets alimentaires, la fermentation microbienne halophile pour la biosynthèse des PHA et un processus en aval sans produits chimiques pour la récupération des PHA.

Approche évolutive étape par étape de la production durable de bioplastique à partir de déchets alimentaires

Procédé pour la détermination de la teneur en acides gras et de la composition en micro-algues sur la base de la rupture mécanique des cellules, le solvant d'extraction à base de lipide, de transestérification, et la quantification et l'identification des acides gras par chromatographie en phase gazeuse est décrit. Un étalon interne tripentadecanoin est utilisé pour compenser les pertes possibles lors de l'extraction et de transestérification incomplète.

Analyse de la teneur en acide gras et de la composition en microalgues

Découvrez la composition et les propriétés fonctionnelles de l'aquafaba, liquide visqueux des pois chiches en conserve, pour remplacer les œufs et le lait. Cette méthode utilise la RMN et l'électrophorèse.

Composition et caractéristiques des Aquafaba : l’eau extraite des pois chiches commercialement en conserve

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