Name: Implantation des sondes de silicium chronique et enregistrement des cellules hippocampiques Place dans un appareil de tapis roulant enrichi (Vidéo) | JoVE Journal
Uploaded: 2017-10-11T13:00:00.000+00:00
Duration: 9 min 59 s
Description: Découvrez l'implantation de sondes de silicium chroniques dans l'hippocampe de souris pour enregistrer l'activité des cellules de lieu sur tapis roulant. Cette méthode permet d'étudier les mécanismes neuronaux de la navigation spatiale avec une résolution temporelle élevée.

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Ce travail a été soutenu par l’Institut coréen des sciences et technologie programme institutionnel (projets n° 2E26190 et 2E26170) et le Human Frontier Science Program (RGY0089/2012).

toutes les méthodes décrites ont été approuvées par le Comité de l’urbanisme de l’Institut coréen des sciences et de la technologie et d’animalier.
 1. préparation du Micro-drive et l’électrode <ol><li>montage du micro-lecteur.
	<ol><li>Imprimer les pièces de la micro-drive (curseur, le corps et coquille) 14 à l’aide d’une imprimante 3D haute résolution. Veillez à ce que les parties n’ont aucun défaut.</li>
		<li>Fixer le curseur dans le corps du micro-lecteur avec une vis (taille 000-120 x 1/4).</li>
		<li>Souder un écrou (au format hexadécimal 000-120 000-120/64) sur le bout de la vis.</li>
		<li>Tournez la vis vers la droite pour déplacer le curseur en haut ou dans le sens antihoraire pour le déplacer vers le bas.</li>
		<li>Fixer la coque sur le corps avec une vis (taille 000-120 x 1/4).</li>
	</ol></li> <li>Montage de la sonde sur le micro-lecteur.
	<ol><li>Difficulté le micro-lecteur en position horizontale sous un microscope binoculaire.</li>
		<li>Utiliser une agrafe plate avec un rembourrage en caoutchouc pour saisir le câble flex de la sonde de silicium tout en détachant soigneusement la sonde de l’enveloppe d’expédition avec une pince. Difficulté la pince crocodile à un manipulateur.</li>
		<li>à l’aide de celui qui les manipule, poser la sonde de silicium sur le curseur micro-lecteur, parallèle à la direction du mouvement.</li>
		<li>Avec une goûte de ciment dentaire (température ambiante polymérisation acrylique dentaire matériel de réparation) pour fixer la sonde sur le slider. Corriger la position de la sonde si il s’est déplacé. La colle n’est pas recommandée car elle durcit très vite et il est difficile de régler la position de l’électrode à.</li>
		<li>Fixer le connecteur de la sonde au titulaire du C (socle de connecteur) avec ciment dentaire.</li>
	</ol></li> <li>Nettoyage et en mettant le colorant sur la sonde.
	<ol><li>Fixer la sonde/Microdrive assemblage sur le dispositif de nettoyage sonde. L’appareil est équipé de 2 rotation petit mousse, éponges (écouvillons non stérile). Régler l’écart par le manipulateur.</li>
		<li>Faire tremper l’éponge avec un détergent.</li>
		<li>Bouger lentement la sonde de haut en bas entre les éponges, permettant une légère pression. Surveiller le processus de nettoyage sous un microscope.</li>
		<li>Rincer la sonde avec de l’eau distillée. Plonger la sonde dans l’alcool pour la stérilisation.</li>
		<li>Appliquer Dil (lipophile colorant fluorescent) à l’arrière de la queue de la sonde, à l’aide d’un tampon de mousse. Cela permettra à un stade ultérieur de la visualisation des lieux de la tige dans le cerveau.</li>
	</ol></li> <li>Assembler le chapeau <ol><li>imprimer les pièces du chapeau (tête-plaque, socle de connecteur et cap) 14 à l’aide d’une imprimante 3D. Les 3 parties s’assemblent pour former un boîtier scellé.</li>
		<li>Insérer les écrous (au format M2 et 00-90 00-90/4) dans les fentes de la plaque de tête et la fixer avec la colle et ciment dentaire.</li>
		<li>Insérer une rondelle dans la fente de la PAC et le fixer avec du ciment dentaire.</li>
	</ol></li></ol> 2. Chirurgie pour la Fixation du chapeau sur le crâne tous les outils utilisés pour la chirurgie sont préalablement stérilisés à l’autoclave. Un dispositif de perles de chaleur sèche forto stériliser les outils qui sont contaminés et doivent être stérilisés pendant la chirurgie.
<ol><li>Réglez le niveau d’isoflurane à 4 % pour l’ouverture de l’anesthésie. Placez la souris dans la chambre de l’anesthésie pendant 5 min.</li>
	<li>Installer la souris dans un appareil stéréotaxique.</li>
	<li>Réduire le niveau de l’isoflurane à 1,5 à 2 %. Ajuster le niveau au cours de la chirurgie selon état animal, rythme de la respiration et le corps de température 20.</li>
	<li>Pommade oculaire sur les yeux.</li>
	<li>Raser le cuir chevelu et nettoyez la tête de l’animal avec un antiseptique (iodopovidone). Maintenir des conditions d’asepsie durant toutes les étapes de la chirurgie.</li>
	<li>Inject bupivacaïne (1 mg/kg), sous le cuir chevelu. Coupez et enlevez la partie de la peau pariétale de la tête de la souris à l’aide des ciseaux pour exposer le crâne sur ses bords. Utiliser une éponge hémostatique et sérum physiologique pour nettoyer et contrôler le saignement pendant la chirurgie.</li>
	<li>Supprimer le périoste en utilisant un outil racleur.</li>
	<li>Trouver les points de référence dans le crâne 21 : bregma, lambda, coronale et la suture sagittale. Ajuster la tête &#39; s angle le long de l’axe sagittal, telle que le Bregma et points lambda sont à la même hauteur.</li>
	<li>Percer deux trous (~0.5 mm de diamètre) dans le crâne pour les électrodes de référence et de la terre. Les trous devraient être d’approximativement 1 mm caudal et latéral de 1 mm de la Lambda.</li>
	<li>Insérer des électrodes de référence et au sol (vis taille 000-120 000-120/16 miniature en acier inoxydable fils couplés aux connecteurs à broches).</li>
	<li>Appliquer la lumière ultraviolette (UV) collage activateur de dentine sur le crâne et appliquez ensuite la lumière UV pour les 45-60 s.</li>
	<li>Appliquer une couche de ciment dentaire sur les bords du crâne. Éviter la propagation de ciment sur la peau et les cheveux des souris.</li>
	<li>Fixer la plaque de tête à un manipulateur stéréotaxique et positionnez-le au-dessus du crâne. Lentement la tête-plaque inférieure jusqu'à ce qu’il touche légèrement le crâne et appliquer un ciment dentaire à la jonction avec le crâne. Laissez la cure de ciment dentaire pendant 15 min.</li>
	<li>Enlever l’anesthésie. Fixer un socle de connecteur et un capuchon sur la plaque de tête. Placez la souris dans sa cage après avoir donné une injection sous-cutanée de kétaprophène 5 mg/kg</li>
	<li>Donner des injections sous-cutanée de kétaprophène 5 mg/kg pour les deux prochains jours et surveiller attentivement pour tout signe de douleur. Souris en général réveillent de l’anesthésie dans 20-40 min. L’implant de chapeau est relativement léger (3,34 g), tels que les souris n’ont aucune difficulté à lever la tête, courir dans des labyrinthes et grimper sur les bords de leur cage maison.</li>
</ol> 3. Formation comportementale <ol><li>après une période de récupération après la chirurgie de 7 jours, commencez la restriction de l’eau à 1 mL par jour.</li>
	<li>Faire le tapis, couper un morceau de tissu de velours (5 cm par 1-2 m) et fixer des petits objets sur elle à l’aide de colle chaude. Attachez des objets érigées sur les bords de la ceinture pour ne pas gêner le mouvement de la souris.</li>
	<li>Fixer la ceinture sur les roues du tapis roulant en suturant ensemble les deux extrémités.</li>
	<li>Installer la souris tête fixe dans le tapis roulant en insérant et en serrant les deux vis de la plaque de tête dans les fentes de la plaque de fixation tête.</li>
	<li>Début de formation de la souris pour exécuter tête-retenu sur le tapis roulant pour la récompense de l’eau. Remettre la récompense de l’eau via un port de lécher. Au départ, placez la souris sur le tapis roulant pendant 10 min, 3 fois par jour.</li>
	<li>Que la souris s’habitue à la tête-fixation et commence à actionner la courroie (typiquement après environ 3 jours), augmenter la session de formation Durée 30 min. Après 2-3 semaines, certaines souris courir plus de 100 essais en 30 min (un procès soit une rotation complète de la ceinture).</li>
	<li>Choisir les souris montrant les meilleurs performances comportementales pour les expériences d’enregistrement.</li>
</ol> 4. Implantation de la sonde de silicium <ol><li>Mettez la souris sous anesthésie.</li>
	<li>Installer la souris dans l’appareil stéréotaxique en fixant la plaque de tête. Nettoyer la surface du crâne avec une solution saline.</li>
	<li>Trouver des marqueurs stéréotaxiques : bregma, lambda, coronale et la suture sagittale. Mesurer la distance et le point d’insertion et marquer it.</li>
	<li>Percer l’OS soigneusement jusqu'à ce qu’il devienne fine et transparente. Humidifier et nettoyer avec du sérum physiologique pendant le forage.</li>
	<li>Retirer délicatement l’OS éclaircis et l’affaire Dura utilisant la force de précisionPS. Garder la surface de cerveau mouillé avec du sérum physiologique tout le temps.</li>
	<li>Fixer l’assemblage de sonde Microdrive/silicium à un manipulateur stéréotaxique. Mettre la sonde de silicium juste au-dessus de la craniotomie. Vissez le socle de connecteur de sonde de silicium à la plaque de tête-.</li>
	<li>Connecter les électrodes d’amplificateur et de repérage au sol/enregistrement. Bouclier de la souris avec du papier d’aluminium pour protéger du bruit électromagnétique. Démarrer le système d’enregistrement pour surveiller l’activité électrique du cerveau.</li>
	<li>Introduire doucement la sonde de silicium dans le cerveau utilisant le micromanipulateur. Vérifier en permanence les signaux électriques, la distance parcourue de manipulateur et les jarrets de la sonde (Assurez-vous qu’ils pénètrent dans le cerveau). Activité de l’unité est visible dans le cortex, tandis que la substance blanche sous est relativement silencieuse. Activité de l’unité réapparaît quand les queues touchent la couche pyramidale de l’hippocampe. De ce point, rétracter le silicium sonde 200 µm (utiliser le micro-drive le lendemain pour ramener la tige dans la couche pyramidale).</li>
	<li>Couvrir la surface du cerveau avec un mélange de cire d’os et de l’huile minérale.</li>
	<li>Fixer le micro-drive à la plaque de tête à l’aide de ciment dentaire. Laissez la cure de ciment dentaire pendant 15 min. Puis détacher la micro-en voiture depuis le manipulateur stéréotaxique et remettre le chapeau bonnet sur.</li>
	<li>Remettre la souris dans sa cage et donner une injection sous-cutanée de kétaprophène 5 mg/kg. Recherchez tout signe de douleur. Cette chirurgie est beaucoup moins invasive que la première et la souris sont généralement actifs au sein de 45 min après qu’ils réveil de l’anesthésie. Cependant, laisser la souris récupérer une journée entière que la sonde de silicium a besoin de se stabiliser dans le cerveau.</li>
</ol> 5. Enregistrement <ol><li>installer la souris tête-fixe sur le tapis roulant. Retirer le chapeau chap.</li>
	<li>Connectez l’amplificateur d’enregistrement et de lancer l’enregistrement.</li>
	<li>Le premier jour, utiliser le micro-drive pour déplacer la sonde de silicium dans la couche pyramidale de l’hippocampe. Chaque tour dans le sens inverse de la vis déplace les jarrets 200 µm plus profond. Ajustez la position de la tige lentement (environ 20-50 µm à la fois) jusqu'à apparition des ondulation oscillations 13 et unité activité.</li>
	<li>Sur les prochains jours, régler la position de la queue et attendre environ 1 h avant d’enregistrer l’activité de l’hippocampe, tandis que la souris fonctionne sur la ceinture. Pour maintenir la qualité du signal bon enregistrement pendant plusieurs jours, supprimer des objets durs et plafond de la souris bas &#39; cage de s pour minimiser le risque que le chapeau bosses dans des surfaces dures.</li>
</ol> 6. Récupération de la sonde <ol><li>Mettez la souris sous anesthésie.</li>
	<li>Installer la souris dans l’appareil stéréotaxique en fixant la plaque de tête. Retirer le chapeau chap.</li>
	<li>Amener le manipulateur stéréotaxique juste au dessus du micro-drive. Fixer le micro-lecteur pour le manipulateur. Dévissez le support de connecteur de la plaque de tête. Enlever la vis de connexion de la coquille et le corps du micro-lecteur.</li>
	<li>Sous la supervision de microscope binoculaire, tirez lentement vers le haut de l’assemblage de la sonde micro drive/silicium avec le manipulateur stéréotaxique, abandonnant la partie coque.</li>
	<li>Nettoyer la sonde de silicium avec le dispositif de nettoyage.</li>
</ol>

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</ol>

Les auteurs n’ont rien à divulguer.

Enregistrement chronique de l’activité neuronale est essentiel pour la compréhension des processus neuronaux comme les champs de lieu hippocampe. Notre approche pour effectuer des implantantation de sonde de silicium chronique se distingue d’autres méthodes7,18,19,20 par le fait qu’il est relativement simple de récupérer le paquet de l’électrode à la fin de l’expérience. Alors que les cellules ...

Silicium sondes présentent plusieurs avantages pour les enregistrements électrophysiologiques, y compris le fait qu’ils sont conçus avec des profils pointus, réduisant au minimum les lésions tissulaires et qu’ils présentent une disposition précise de dense enregistrement sites1, 2,3,4. Ils sont utilisés pour étudier les différents systèmes chez différentes espèces, dont5,3,les humains6, avec des approches diverses1,7. Pourtant, leur utilisation récurrente est encore relativement limitée en raison de leur coût, fragilité et le fait que des méthodes pratiques pour expériences chroniques font défaut8. Les progrès récents dans la technologie d’impression 3D ont rendu possible la conception personnalisée de dispositifs tels que micro-disques et plaques de tête pour permettre une manipulation plus facile de ces électrodes délicats. Dans un premier temps, nous décrirons comment construire et utiliser un ensemble d’outils que nous avons élaborée pour l’implantation de la chronique de silicium sondes14.
Tandis que les cellules de lieu sont généralement étudiés en utilisant des animaux se déplaçant librement en cours d’exécution dans des labyrinthes, récemment ils ont été également étudiés dans des environnements virtuels15 et tapis roulant apparatii9 (Figure 1 a). Ces méthodes expérimentales présentent l’avantage que les animaux peuvent être tête-immobilisés, rendant l’utilisation du microscope 2 photons15, patch clamp16et optrode9,10,11 plus faciles, en plus de fournir le renforcement du contrôle sur le comportement animal et signaux environnementaux12techniques. Dans un second temps, nous présenterons les modalités de formation souris et place l’activité des cellules d’enregistrement dans un appareil de tapis roulant.

<table><tbody><tr><td>Sonde en silicium</td><td>Neuronexus</td><td>Buzsabi32</td><td>Électrode d’enregistrement</td></tr><tr><td>Système d’enregistrement</td> Imprimante 3D <td>Intantech</td><td>RHD2132/RHD2000</td><td></td></tr><tr><td>Asiga</td><td></td><td>Pico Plus 27</td><td>Imprimante haute résolution pour micro-entraînement</td></tr><tr><td>Imprimante 3D</td><td>Stratasys</td><td>Mojo</td><td>Imprimante basse résolution pour composants de chapeau</td></tr><tr><td>Appareil stéréotaxique</td><td>Kopf</td><td>Modèle 963</td><td></td></tr><tr><td>Microscope binoculaire</td><td>Leica</td><td>M60</td><td></td></tr><tr>Appareil <td></td><td></td><td>de tapis roulant</td><td>Nous les construisons</td></tr></tbody></table>

implantation des sondes de silicium chronique et enregistrement des cellules hippocampiques place dans un appareil de tapis roulant enrichi

Implantation of Chronic Silicon Probes and Recording of Hippocampal Place Cells in an Enriched Treadmill Apparatus

Un critère important pour comprendre le fonctionnement du cerveau est l’identification du comportement et de l’activité des cellules en corrélation. Sondes de silicium sont avancés électrodes d’enregistrement électrophysiologique à grande échelle de l’activité neuronale, mais les modalités de leur implantation chronique sont encore peu développées. L’activité des cellules de l’hippocampe lieu est connue pour mettre en corrélation avec la position de l’animal dans l’environnement, mais les mécanismes sous-jacents sont encore peu clairs. Pour étudier les cellules de lieu, nous décrivons ici un ensemble de techniques qui vont de la fabrication de dispositifs pour sonde de silicium chronique les implants à la surveillance de l’activité de champ de place dans un appareil de cue-enrichi le tapis de course. Un micro et un chapeau sont construits par montage et fixation ensemble 3D-imprimé des pièces en plastique. Une sonde de silicium est montée sur le micro-lecteur, nettoyée et recouvert de colorant. Une première intervention chirurgicale est réalisée pour fixer le chapeau sur le crâne d’une souris. Petits points de repère sont fabriqués et attachés à la ceinture d’un tapis roulant. La souris est formée pour exécuter tête-fixé sur le tapis roulant. Une deuxième chirurgie est réalisée pour implanter la sonde de silicium dans l’hippocampe, suivant Quels signaux électrophysiologiques à large bande sont enregistrées. Enfin, la sonde de silicium est récupérée et nettoyée pour être réutilisés. L’analyse du lieu l’activité des cellules dans le tapis roulant révèle une diversité des mécanismes de champ, soulignant l’avantage de l’approche.

Tout d’abord, une souris a été formée pour fonctionner sur une courroie longue de deux mètres dépourvu de repères (Figure 1). Après l’implantation de l’électrode, une nouvelle courroie de même longueur mais présentant 3 paires d’indices a été installé sur le tapis roulant, afin de générer des représentations spatiales d’allocentrique12,14. Signaux à large bande ont été enregistrées à une fréquence d’é...

Les auteurs décrivent les diverses étapes d’implant chronique silicium sondes et d’enregistrer des cellules de lieu chez les souris qui sont la tête de la course-fixé sur un appareil de cue-enrichi le tapis de course.

Implantation des sondes de silicium chronique et enregistrement des cellules hippocampiques Place dans un appareil de tapis roulant enrichi

An important requisite for understanding brain function is the identification of behavior and cell activity correlates. Silicon probes are advanced ...

L’objectif global de cette procédure est d’implanter des sondes chroniques en silicium dans l’hippocampe de la souris et d’enregistrer l’activité cellulaire de position chez des souris qui courent la tête fixe dans un tapis roulant enrichi en indices. Cette méthode peut aider à répondre à des questions clés sur les mécanismes sous-jacents de l’activité des cellules de lieu. Cependant, il pourrait être appliqué à un large éventail d’autres systèmes.Le principal avantage des sondes en silicium est que des centaines de cellules de lieu peuvent être surveillées simultanément avec une résolution temporelle d’un seul potentiel d’action et des informations sur la configuration particulière des cellules. La démonstration visuelle est essentielle, car elle implique une série d’étapes manuelles qui sont délicates et doivent être pratiquées. Commencez la préparation de la sonde en la détachant soigneusement du boîtier d’expédition.Lorsque vous travaillez sous un microscope binoculaire, utilisez une pince crocodile plate avec un rembourrage en caoutchouc pour saisir le câble flexible de la sonde en silicone et le soulever du boîtier tout en tenant le boîtier avec une pince. Fixez la pince croc

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Enregistrements extracellulaires de l'activité neuronale en utilisant des sondes de silicium chez le rat anesthésié seront décrites. Cette technique permet d'obtenir des informations à travers de multiples zones du cerveau de plus de 100 neurones simultanément. Il fournit des informations avec une résolution cellule unique sur la dynamique des ensembles neuronaux dans de multiples circuits locaux.

Enregistrement à grande échelle ensembles neuronaux avec des sondes en silicone chez le rat anesthésié

Nous décrivons les méthodes à grande échelle d'enregistrement de plusieurs unités simples et le potentiel de champ local à se comporter les rongeurs avec des sondes de silicium. Disque de fabrication, de fixation de sonde sur le disque et les processus d'implantation de la sonde sont illustrés dans des détails suffisants pour faciliter la reproduction.

À grande échelle d&#39;enregistrement des neurones par des sondes de silicium mobiles à se comporter Rongeurs

Cette vidéo décrit un protocole d’implantation d’une sonde linéaire en silicium à plusieurs tiges dans le cerveau de la souris pour mesurer les potentiels de champ local. La procédure consiste à fixer la sonde à une unité stéréotaxique, à la positionner avec précision sur la région cérébrale cible, à l’insérer dans le cerveau et à la fixer avec du ciment dentaire. Après l’implantation, l’ensemble est protégé par un boîtier. Après la récupération, la configuration permet d’enregistrer les...

Enregistrement de l’activité électrique cérébrale chez des souris se comportant à l’aide de sondes linéaires en silicium à plusieurs dents

Cette vidéo démontre l’implantation stéréotaxique d’un réseau d’électrodes et d’une fibre optique dans l’hippocampe d’un modèle murin.

Implantation d’un réseau d’électrodes et d’une fibre optique dans l’hippocampe de la souris

Source : Slezia, A. et al. L’administration électrophorétique d’acide γ-aminobutyrique (GABA) dans un foyer épileptique prévient les convulsions chez la souris. J. Vis. Exp. (2019)Cette vidéo démontre l’administration électrophorétique d’acide gamma-aminobutyrique (GABA) pour inhiber l’activité convulsive chez une souris anesthésiée. Il décrit les étapes impliquées dans l’implantation de la sonde, l’enregistrement de l’activité neuronale, l’induction des crises et l’administration contrôlée de...

Administration électrophorétique de GABA dans le foyer épileptique d’une souris anesthésiée

Ce protocole décrit l’enregistrement des potentiels de champ local multi queue linéaire silicium sondes. Conversion des signaux en utilisant l’analyse de la densité actuelle source permet la reconstruction de l’activité électrique locale dans l’hippocampe de souris. Avec cette technique, les oscillations dans l’espace restreint de cerveau peuvent être étudiées en se déplaçant librement souris.

Enregistrement dans l’espace restreint des Oscillations dans l’hippocampe de se comporter de souris

Ce protocole décrit la construction d'un réseau hybride de micropropulsion qui permet l'implantation de neuf tétrodes réglables indépendamment et d'une sonde opto-silicium réglable dans deux régions du cerveau chez des souris en mouvement libre. Une méthode de récupération et de réutilisation sécuritaire de la sonde opto-silicium à des fins multiples est également démontrée.

Système hybride de micropropulsion avec sonde opto-Silicon récupérable et tetrode pour l'enregistrement à haute densité de dual-Site dans les souris en mouvement libre

Le protocole présenté ici fournit des informations sur l’électroencéphalographie (EEG) simultanée et l’évaluation comportementale en temps réel. Nous avons discuté de toutes les étapes impliquées dans ce protocole comme une solution attrayante pour les chercheurs dans de nombreux domaines des neurosciences, en particulier dans les domaines de l’apprentissage et de la mémoire.

Surveillance simultanée de l’électrophysiologie sans fil et du test comportemental de la mémoire comme outil pour étudier la neurogenèse de l’hippocampe

Ici, nous décrivons une conception de micro-entraînement, une procédure d’implantation chirurgicale et une stratégie de récupération post-chirurgicale qui permettent des enregistrements chroniques sur le terrain et à une seule unité de plusieurs régions du cerveau simultanément chez des souris juvéniles et adolescentes à travers une fenêtre de développement critique du jour postnatal 20 (p20) au jour postnatal 60 (p60) et au-delà.

Implant d’entraînement léger pour enregistrements de tétrodes chroniques chez des souris juvéniles

Des micro-variateurs sur mesure permettent de cibler des sites d’enregistrement corticaux submillimétriques avec des réseaux linéaires de silicium.

Électrophysiologie de l’activité corticale laminaire chez le ouistiti commun

Ici, nous présentons un système d’implant de sonde léger et rentable pour l’électrophysiologie chronique chez les rongeurs, optimisé pour la facilité d’utilisation, la récupération de la sonde, la polyvalence expérimentale et la compatibilité avec le comportement.

L’implant DREAM : un système d’implant léger, modulaire et économique pour l’électrophysiologie chronique chez les souris fixées à la tête et au comportement libre

Découvrez l'implantation de sondes de silicium chroniques dans l'hippocampe de souris pour enregistrer l'activité des cellules de lieu sur tapis roulant. Cette méthode permet d'étudier les mécanismes neuronaux de la navigation spatiale avec une résolution temporelle élevée.

Implantation des sondes de silicium chronique et enregistrement des cellules hippocampiques Place dans un appareil de tapis roulant enrichi (Vidéo) | JoVE Journal

Implantation des sondes de silicium chronique et enregistrement des cellules hippocampiques Place dans un appareil de tapis roulant enrichi

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