29 décembre 2017
Ce protocole décrit un système flexible et peu onéreuse pour mesurer ambulation de souris en un dosage de l’activité de plein champ. Nous montrons qu’un test de marche de 6 minutes basé sur ce système détecte une diminution des mouvements volontaires chez la souris mdx et distingue précisément amélioration à un sauvetage d’un muscle spécifique de ces animaux.
L’objectif global de ce test est de mesurer la déambulation volontaire dans des modèles murins de dystrophie musculaire. Cette méthode peut aider à répondre à des questions clés dans le domaine de la dystrophie musculaire sur la progression de la faiblesse musculaire dans des modèles murins de dystrophie musculaire et l’efficacité de traitements potentiels. Le principal avantage de cette technique est qu’elle fournit une mesure non invasive et reproductible de l’activité animale qui peut être facilement adaptée à de nombreux contextes de recherche différents.
Dans une pièce calme à température contrôlée à une heure constante de la journée, placez une caméra sur un treillis métallique au-dessus de la chambre d’activité pour permettre l’enregistrement dans toute l’arène et nettoyez la chambre avec un désinfectant. Immédiatement avant l’enregistrement de l’activité, laissez la souris saisir la barre polaire d’un dynamomètre numérique et tirez doucement vers l’arrière jusqu’à ce que la barre polaire soit relâchée. Enregistrez la tension maximale en Newtons pour chaque essai.
Avec une minute de repos entre les essais. Immédiatement après le test de la force de préhension, placez la souris dans la chambre et lancez l’enregistrement vidéo, permettant à la souris d’explorer librement. Après six minutes, arrêtez l’enregistrement et remettez la souris dans sa cage d’origine.
Pour l’analyse du suivi des données vidéo, ouvrez d’abord l’enregistrement dans le logiciel de montage vidéo approprié et réglez la vitesse sur deux fois. Exportez la vidéo décimée au format de fichier mp4 pour l’analyse de suivi et ouvrez la vidéo dans le programme d’analyse vidéo approprié. Pour régler l’étalonnage de l’enregistrement vidéo, utilisez l’outil Ligne pour tracer une ligne le long d’un côté de la chambre.
Faites un clic droit sur la ligne, sélectionnez calibrer la mesure et entrez la taille réelle du côté de la chambre en centimètres. Pour commencer le suivi semi-automatique de la position de la souris, cliquez sur le curseur de déplacement. En commençant par l’image initiale de la vidéo, faites un clic droit sur le point à suivre.
Le point de suivi sera marqué d’un cercle bleu. Utilisez la flèche droite du clavier pour faire avancer le cadre. Le point de suivi doit se déplacer automatiquement en fonction de la position de la base arrière.
Si la position de suivi n’est pas alignée avec le point d’intérêt dans une image donnée, alignez manuellement le cercle bleu sur la position de suivi. Une fois que la vidéo entière a été suivie, enregistrez la vidéo et la superposition de traçage, puis sélectionnez Exporter vers une feuille de calcul pour exporter les données de position du traçage. Conformément aux résultats rapportés par des tests similaires, les souris mdx sans dystrophine soumises à un protocole d’exercice immédiatement avant le test démontrent significativement moins de mouvements volontaires dans un test de champ ouvert de six minutes, que les animaux de type sauvage.
En effet, après l’effort léger d’un défi de force de préhension, les souris mdx sont généralement restées immobiles pendant les premières minutes du protocole de déambulation, avec une augmentation modeste du mouvement de quatre à cinq minutes. Cependant, en comparant des animaux de type sauvage et mdx sans défi d’exercice, aucune différence dans la distance parcourue n’est détectée. Les souris Mdx transgéniques pour l’expression de l’utrophine sont indiscernables des animaux de type sauvage, sans différences significatives dans la distance totale parcourue, ou à l’un des points de commutation observés dans le temps.
Pour déterminer l’effet de la diminution de la fréquence d’échantillonnage, la distance totale parcourue à partir d’une minute de vidéo à fréquence d’images complète a été mesurée et comparée aux mesures de distance dérivées des versions sous-échantillonnées de l’ensemble de données. La réduction de moitié de la fréquence d’images a permis de réduire la distance mesurée de 5 % de la distance calculée à l’origine. La précision de la distance mesurée diminue brusquement après ce point, bien que même les ensembles de données fortement décimés se rapprochent encore étroitement de la trajectoire de l’animal, ce qui souligne l’importance de prendre en compte la fréquence d’images et le traitement du signal dans l’évaluation de l’activité animale, et démontre qu’une résolution spatiale élevée peut être conservée dans les données vidéo échantillonnées.
Après avoir regardé cette vidéo, vous devriez avoir une bonne compréhension de la façon d’enregistrer et d’analyser la déambulation de la souris dans un environnement ouvert. Une fois maîtrisée, cette analyse peut être réalisée en 15 à 30 minutes si elle est effectuée correctement. Ce test peu coûteux et non invasif permet aux chercheurs d’examiner l’activité motrice dans des modèles murins de dystrophie musculaire, et peut servir de première étape informative pour d’autres mesures fonctionnelles.
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Ce protocole décrit un système souple et peu coûteux permettant de mesurer la locomotion de la souris dans un test d'activité en champ ouvert. La méthode fournit une mesure non invasive et reproductible de l'activité animale, qui peut être adaptée à divers contextes de recherche.
La mesure de l'ambulation volontaire chez les modèles murins fournit une lecture translationnelle de la fonction motrice dans la dystrophie musculaire, directement comparable à des critères d'évaluation cliniques tels que le test de marche de 6 minutes. Cet essai peu coûteux, basé sur la vidéo, permet une évaluation reproductible et non invasive de l'évolution de la maladie et de la réponse thérapeutique dans les études précliniques. En détectant les déficits d'activité chez les souris mdx dépourvues de dystrophine et leur correction par l'expression de l'utrophine, cette méthode soutient la validation des cibles et la réduction des risques mécanistiques dans la découverte de médicaments neuromusculaires.
Le test s'inscrit dans le continuum de découverte allant de la validation de la cible à l'identification de composés candidats, offrant un lien fonctionnel entre les mécanismes moléculaires et les résultats phénotypiques dans les modèles de dystrophie musculaire.