-1::1
Simple Hit Counter
Skip to content

Products

Solutions

×
×
Sign In

FR

EN - EnglishCN - 简体中文DE - DeutschES - EspañolKR - 한국어IT - ItalianoFR - FrançaisPT - Português do BrasilPL - PolskiHE - עִבְרִיתRU - РусскийJA - 日本語TR - TürkçeAR - العربية
Sign In Start Free Trial

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

Behavior
Biochemistry
Bioengineering
Biology
Cancer Research
Chemistry
Developmental Biology
View All
JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

Biological Techniques
Biology
Cancer Research
Immunology
Neuroscience
Microbiology
JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduate courses

Analytical Chemistry
Anatomy and Physiology
Biology
Calculus
Cell Biology
Chemistry
Civil Engineering
Electrical Engineering
View All
JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

Advanced Biology
Basic Biology
Chemistry
View All
JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

Biology
Chemistry

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

Accounting
Finance
Macroeconomics
Marketing
Microeconomics

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Authors

Teaching Faculty

Librarians

K12 Schools

Biopharma

Products

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduates

JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Solutions

Authors
Teaching Faculty
Librarians
K12 Schools
Biopharma

Language

French

EN

English

CN

简体中文

DE

Deutsch

ES

Español

KR

한국어

IT

Italiano

FR

Français

PT

Português do Brasil

PL

Polski

HE

עִבְרִית

RU

Русский

JA

日本語

TR

Türkçe

AR

العربية

    Menu

    JoVE Journal

    Behavior

    Biochemistry

    Bioengineering

    Biology

    Cancer Research

    Chemistry

    Developmental Biology

    Engineering

    Environment

    Genetics

    Immunology and Infection

    Medicine

    Neuroscience

    Menu

    JoVE Encyclopedia of Experiments

    Biological Techniques

    Biology

    Cancer Research

    Immunology

    Neuroscience

    Microbiology

    Menu

    JoVE Core

    Analytical Chemistry

    Anatomy and Physiology

    Biology

    Calculus

    Cell Biology

    Chemistry

    Civil Engineering

    Electrical Engineering

    Introduction to Psychology

    Mechanical Engineering

    Medical-Surgical Nursing

    View All

    Menu

    JoVE Science Education

    Advanced Biology

    Basic Biology

    Chemistry

    Clinical Skills

    Engineering

    Environmental Sciences

    Physics

    Psychology

    View All

    Menu

    JoVE Lab Manual

    Biology

    Chemistry

    Menu

    JoVE Business

    Accounting

    Finance

    Macroeconomics

    Marketing

    Microeconomics

Start Free Trial
Loading...
Home
JoVE Journal
Medicine
Implantation cochléaire chez le cobaye
Implantation cochléaire chez le cobaye
JoVE Journal
Medicine
This content is Free Access.
JoVE Journal Medicine
Cochlear Implantation in the Guinea Pig

Implantation cochléaire chez le cobaye

Full Text
11,881 Views
09:56 min
June 15, 2018

DOI: 10.3791/56829-v

Clemens Honeder*1, Navid Ahmadi*1, Anne-Margarethe Kramer2, Chengjing Zhu1, Nodir Saidov1, Christoph Arnoldner1

1Department of Otorhinolaryngology, Head and Neck Surgery,Medical University of Vienna, 2Department of Biomedical Research,Medical University of Vienna

AI Banner

Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.

Overview

This protocol outlines a surgical procedure to create a reliable animal model of cochlear implantation using guinea pigs. It aims to facilitate research on pharmaceutical interventions and electrode performance in preserving hearing thresholds.

Key Study Components

Area of Science

  • Neuroscience
  • Otolaryngology
  • Biomedical Engineering

Background

  • Cochlear implants are critical for restoring hearing in individuals with hearing loss.
  • Animal models are essential for testing new interventions and devices.
  • Guinea pigs provide a suitable model due to their anatomical similarities to humans.
  • Understanding electrode performance is vital for improving cochlear implant technology.

Purpose of Study

  • To establish a guinea pig model for cochlear implantation.
  • To evaluate the effects of pharmaceutical interventions on hearing preservation.
  • To assess the performance of newly developed electrodes.

Methods Used

  • Preparation of surgical tools and sterilization of materials.
  • Administration of anesthesia and preparation of the guinea pig.
  • Execution of the cochlear implantation procedure.
  • Monitoring of physiological parameters throughout the surgery.

Main Results

  • Successful implantation of electrodes in the cochlea.
  • Establishment of a stable model for future research.
  • Baseline measurements of electrode performance recorded.
  • Potential for further studies on hearing preservation techniques.

Conclusions

  • The guinea pig model is effective for cochlear implantation studies.
  • This method allows for the exploration of new therapeutic approaches.
  • Future research can build on this model to enhance cochlear implant technology.

Frequently Asked Questions

What is the main goal of this protocol?
The main goal is to provide a reliable animal model for cochlear implantation research.
Why use guinea pigs for cochlear implantation studies?
Guinea pigs have a similar inner ear structure to humans, making them ideal for such studies.
What are the key components needed for the surgery?
Essential components include a surgical microscope, drill, heating plate, and pulse oximeter.
How is anesthesia administered to the guinea pig?
Anesthesia is administered using a specific anesthetic cocktail as outlined in the protocol.
What are the expected outcomes of the implantation?
The expected outcomes include successful electrode placement and baseline measurements for further research.
How can this model contribute to future research?
This model allows researchers to test new interventions and improve cochlear implant technology.

Le but du présent protocole est de fournir un modèle animal d’implantation cochléaire, qui peut être utilisé pour traiter une multitude de questions de recherche. Les applications potentielles incluent l’évaluation des interventions pharmaceutiques ou stimulation électrique pour des effets bénéfiques sur les seuils d’audition ou d’impédance de l’électrode.

L’objectif global de cette intervention chirurgicale est de fournir un modèle animal fiable et polyvalent d’implantation cochléaire à l’aide du cobaye. Cette méthode peut aider à répondre à des questions clés dans le domaine des implantations cochléaires, par exemple si les interventions pharmaceutiques ou les électrodes nouvellement développées ont des effets bénéfiques sur la préservation résiduelle de l’audition ou l’impédance des électrodes. Le principal avantage du cochon d’Inde est l’accès rapide à l’oreille interne relativement grande, ce qui permet d’obtenir un modèle animal d’implantation cochléaire sûr, fiable et polyvalent.

Pour cette procédure, il est important d’avoir un microscope chirurgical, une perceuse, une plaque chauffante et un oxymètre de pouls positionnés autour de l’expérimentateur pour une manipulation facile pendant l’opération. Réglez le coussin chauffant à 38 degrés Celsius. Suivez la technique stérile.

Enfilez un chapeau, un masque et des gants. Disposez ensuite les outils chirurgicaux stérilisés pour l’implantation cochléaire. Ensuite, préparez un morceau de fil d’or isolé au téflon de 3,5 centimètres de long en retirant soigneusement trois millimètres d’isolant d’une extrémité et cinq millimètres d’isolant de l’autre extrémité.

Ensuite, coupez une deuxième longueur de fil d’or de 2,5 centimètres de long et retirez cinq millimètres d’isolant aux deux extrémités. Stérilisez ensuite les deux fils avec de l’alcool. Ensuite, anesthésie un cobaye à l’aide d’un cocktail anesthésique comme indiqué dans le protocole textuel.

Rasez-lui ensuite la tête et placez-le sur le ventre sur la plaque chauffante. Ensuite, ouvrez soigneusement la bouche du cochon d’Inde avec un petit laryngoscope et retirez tous les débris alimentaires de la cavité buccale par aspiration. Ensuite, insérez soigneusement un tube gastrique dans l’œsophage en poussant lentement vers l’estomac jusqu’à ce qu’une résistance se fasse sentir.

Vérifiez les niveaux de saturation en oxygène pour vous assurer que le tube n’est pas dans la trachée. Ensuite, injectez un mélange de solution saline physiologique, de glucose à 5 % et d’enrofloxacine dans le coussinet adipeux du cou à l’aide d’une aiguille de calibre 23. Préparez le champ opératoire en utilisant une alternance de gommages de povidone iodé et d’éthanol à 70 %, puis drapez l’animal.

Pour une utilisation analgésique, la lidocaïne redose également l’animal avec un anesthésique si nécessaire. Commencez la chirurgie par une incision cutanée de deux à trois centimètres, de trois à cinq millimètres en arrière du pavillon de l’oreille à l’aide d’un scalpel. Pour faire face aux saignements, utilisez la cautérisation bipolaire.

Ensuite, palpez la proéminence de la bulle auditive et utilisez un scalpel chirurgical numéro 15 ou des ciseaux chirurgicaux pour couper soigneusement les muscles de la région rétro-auriculaire. Pour disséquer les muscles de la bulle, écartez doucement les muscles et utilisez un écarteur pour exposer toute la longueur de l’incision afin d’accéder sans entrave à la bulle. Utilisez maintenant la pointe du scalpel numéro 15 pour faire un trou dans la bulle.

Lorsque l’os est perforé, agrandissez le trou au besoin pour inspecter les structures de l’oreille moyenne. Mettez l’animal en position fléchie et inspectez l’ouverture. La rotation basale de la cochlée et la niche ronde de la fenêtre doivent être visibles.

Gardez un œil sur les niveaux d’oxygène de l’animal lorsqu’il est en position fléchie. Pour continuer, repositionnez l’animal sur le ventre et exposez le vertex à l’aide d’une incision rectangulaire. Ensuite, retirez la peau d’accise, disséquez le périoste et nettoyez le périoste à l’aide d’un scalpel.

Ensuite, faites un petit crochet sur l’extrémité exposée de trois millimètres du fil de 3,5 centimètres. Guidez ensuite l’autre extrémité du fil d’or par voie sous-cutanée jusqu’au sommet. À l’aide d’un cathéter veineux périphérique de calibre 18 à l’aide d’une micro-pince.

À l’aide d’une deuxième paire de micro-pinces, positionnez soigneusement l’extrémité crochue du fil dans l’oreille moyenne. Ensuite, infléchissez la tête de l’animal pour visualiser la zone de la niche de la fenêtre ronde à travers la bullostomie et accrochez le fil d’or à la proéminence osseuse à l’aide d’une micro-pince. Maintenant, tout en maintenant une légère tension sur le fil d’or, fixez-le au bord crânien de la bullostomie à l’aide de 10 à 15 microlitres de cyanoacrylate délivrés à partir d’une aiguille de calibre 27.

Les mesures de base peuvent maintenant être prises à partir du fil d’or. Ensuite, pour monter l’électrode, mettez l’animal en position couchée. Et à l’aide d’une fraise d’un millimètre, faites deux trous d’un millimètre en avant de la suture lambda.

N’endommagez pas la dure-mère. Ensuite, implantez des vis dans les trous pour exploiter le connecteur de l’électrode. Utilisez maintenant un cathéter veineux périphérique de calibre 18 pour guider l’électrode du connecteur à la bulle dans une couche de tissu aussi près que possible du crâne.

Ensuite, placez 0,5 à 0,7 millilitre de ciment dentaire semi-fluide entre les vis à l’aide d’une spatule et positionnez le connecteur d’électrode entre les vis. Gardez le connecteur stable en position pendant que le ciment dentaire durcit. Avec le repositionnement latéral de l’animal, procédez en perçant soigneusement la cochléostomie à un millimètre de la fenêtre ronde.

Percez à l’aide d’une meule diamantée de 0,5 millimètre à 5000 tr/min. Ensuite, insérez soigneusement l’électrode de quatre millimètres dans la rampe tympanique. Retirez ensuite l’électrode et répétez l’insertion.

Appliquez ensuite du cyanoacrylate pour fixer l’électrode. Une implantation stable permettra un plus grand décalage du seuil auditif. Il est donc important de stabiliser le bras utilisé pour insérer l’électrode contre la table afin de minimiser la probabilité de mouvements saccadés indésirables.

Ensuite, la bullostomie est fermée avec environ 0,3 millilitre de ciment dentaire. Et le déplacement du ciment dentaire dans la bulle doit être évité. Ensuite, fermez l’incision rétroauriculaire à l’aide de sutures résorbables 5-0.

Tournez ensuite l’animal en position couchée. Ensuite, utilisez une pince pour saisir le bord postérieur de l’incision rectangulaire au niveau du sommet. Et avec des ciseaux, faites un tunnel sous-cutané de deux centimètres dans le cou de l’animal.

À travers le tunnel, implantez le fil d’or de 2,5 centimètres à l’aide d’une pince. Positionnez l’extrémité avec le fil le moins exposé sur la broche désignée du connecteur, puis soudez la connexion. Ensuite, soudez l’électrode de la niche de fenêtre ronde à la broche appropriée du connecteur.

Après avoir terminé les soudures, appliquez plus de ciment dentaire pour couvrir entièrement les broches isolées et l’électrode. L’implantation est terminée. Les seuils de CAP spécifiques à la fréquence pré et postopératoire chez l’animal présenté étaient presque inchangés dans les basses fréquences.

Alors qu’un décalage de seuil d’environ 25 à 30 décibels a été atteint dans la zone des hautes fréquences à partir de huit kilohertz. La réaction d’un corps étranger à l’électrode implantée peut varier considérablement. Il ne peut y avoir de réaction visible ou une grande partie de la rampe tympanique peut être remplie de tissu fibreux.

Il est même possible de fracturer la lame spirale osseuse lors de l’insertion de l’électrode CI. Dans ce cas, la fracture a provoqué une perte de cellules ganglionnaires spirales, une fibrose et une ostéogenèse dans le canal vestibulaire et une perte de l’organe de Corti. De telles fractures peuvent expliquer des dépassements de seuil plus élevés que prévu chez certains animaux.

Une fois maîtrisée, cette technique peut être réalisée en deux heures et demie si elle est bien exécutée. Si des mesures auditives peropératoires sont effectuées, le temps nécessaire à l’ensemble de la procédure peut augmenter considérablement. Après avoir regardé cette vidéo, vous devriez avoir une bonne compréhension de la façon de réaliser l’implantation cochléaire chez le cobaye.

À l’aide de ce modèle animal, vous pouvez aborder diverses questions de recherche dans ce domaine.

Explore More Videos

Médecine numéro 136 cobaye Implantation cochléaire modèle Animal préservation de perte électrophysiologie audience de plaidoirie

Related Videos

Induction chirurgicale d'hydrops endolymphatique par oblitération du canal endolymphatique

11:49

Induction chirurgicale d'hydrops endolymphatique par oblitération du canal endolymphatique

Related Videos

12K Views

Implantation sous-durale d’un réseau d’électrocorticographie douce pour l’enregistrement de l’électrophysiologie corticale chez les miniporcs

04:00

Implantation sous-durale d’un réseau d’électrocorticographie douce pour l’enregistrement de l’électrophysiologie corticale chez les miniporcs

Related Videos

640 Views

Implant cochléaire et les enregistrements de réponse électriquement évoqué auditif du tronc cérébral chez les souris C57BL/6

09:06

Implant cochléaire et les enregistrements de réponse électriquement évoqué auditif du tronc cérébral chez les souris C57BL/6

Related Videos

14.9K Views

Implantation des dérivés hiPSC myocarde patchs après lésion myocardique dans un modèle de cochon d’Inde

07:03

Implantation des dérivés hiPSC myocarde patchs après lésion myocardique dans un modèle de cochon d’Inde

Related Videos

7.8K Views

Une approche chirurgicale révisée pour induire des hydrops endolymphatiques dans le cochon de Guinée

06:05

Une approche chirurgicale révisée pour induire des hydrops endolymphatiques dans le cochon de Guinée

Related Videos

6.6K Views

Le cochon miniature : un grand modèle animal pour la recherche sur les implants cochléaires

06:16

Le cochon miniature : un grand modèle animal pour la recherche sur les implants cochléaires

Related Videos

3.7K Views

Pupillométrie pour évaluer la sensation auditive chez les cobayes

09:25

Pupillométrie pour évaluer la sensation auditive chez les cobayes

Related Videos

2.4K Views

Implantation d’un réseau d’électrocorticographie molle sous-durale (ECoG) et enregistrement cortical à long terme chez les miniporcs

08:30

Implantation d’un réseau d’électrocorticographie molle sous-durale (ECoG) et enregistrement cortical à long terme chez les miniporcs

Related Videos

4K Views

Explantation de membrane de fenêtre ronde de cobaye pour études ex vivo

05:14

Explantation de membrane de fenêtre ronde de cobaye pour études ex vivo

Related Videos

1.2K Views

Technique de la fenêtre crânienne chronique pour les enregistrements corticaux répétés pendant l’anesthésie chez le porc

07:19

Technique de la fenêtre crânienne chronique pour les enregistrements corticaux répétés pendant l’anesthésie chez le porc

Related Videos

582 Views

JoVE logo
Contact Us Recommend to Library
Research
  • JoVE Journal
  • JoVE Encyclopedia of Experiments
  • JoVE Visualize
Business
  • JoVE Business
Education
  • JoVE Core
  • JoVE Science Education
  • JoVE Lab Manual
  • JoVE Quizzes
Solutions
  • Authors
  • Teaching Faculty
  • Librarians
  • K12 Schools
  • Biopharma
About JoVE
  • Overview
  • Leadership
Others
  • JoVE Newsletters
  • JoVE Help Center
  • Blogs
  • JoVE Newsroom
  • Site Maps
Contact Us Recommend to Library
JoVE logo

Copyright © 2026 MyJoVE Corporation. All rights reserved

Privacy Terms of Use Policies
WeChat QR code