Name: Une méthode pour la Transplantation d’îlots à l’épiploon dans la souris (Vidéo) | JoVE Journal
Uploaded: 2019-01-07T14:00:00.000+00:00
Duration: 6 min 25 s
Description: Découvrez la transplantation d'îlots pancréatiques à l'épiploon chez la souris diabétique en utilisant un hydrogel pour améliorer la viabilité des greffons. Cette méthode avance la recherche sur le diabète de type I.

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Certains des auteurs de ces travaux appuyés en partie par des subventions du National clé de R & D programme de la Chine (2017YFC1103704), Sanming projet de médecine à Shenzhen (SZSM201412020), fonds de haut niveau médical Discipline Construction de Shenzhen (2016031638), Shenzhen Foundation of Science and Technology (JCJY20160229204849975, GJHZ20170314171357556, JCYJ20160425110110658), fondation de Shenzhen de la santé et de la Commission de planification familiale (SZXJ2017021).

Toutes les souris utilisées dans cette étude proviennent de la Province médicale Animal Center du Guangdong. L’utilisation des animaux a été approuvée par hôpital l’éthique examen Comité de Shenzhen deuxième populaire, conformément aux principes du bien-être animal.
1. Transplantation d’îlots pancréatiques de l’épiploon
Remarque : Ce protocole nécessite 2 personnes à accomplir.
<ol><li>Assembler des matériaux chirurgicaux qui sont énumérés au tableau 1. Préparer le champ aseptique dans domaine chirurgical stérile matériaux tels que des rideaux et produits jetables et maintenir des conditions d’asepsie tout au long de la chirurgie. Stériliser tous les instruments chirurgicaux. Porter des robes de chambre stériles.</li>
	<li>Choisissez les îlots à l’aide d’une pointe de pipette 200 µL sous le stéréomicroscope. Chaque souris recevra 450 – 500 îlots équivalents (IEQ) par tansplant. Pour chaque animal, placer suffisamment îlots pour une greffe unique dans un tube stérile de 1,5 mL à casser-dessus avec 100 µL de milieu CMRL-1066. Remarque : Les îlots peuvent être isolés sur le jour de la transplantation, mais il est préférable d’isoler la veille pour permettre la récupération pour le processus d’isolement.</li>
	<li>Garder les lampes casser-dessus avec îlots sur la glace jusqu’au moment de la transplantation.</li>
	<li>Décongeler la membrane basale matrice hydrogel et gardez-le sur la glace après son retrait du congélateur-20 ° C. L’hydrogel est liquide à 4 ° C à 10 ° C et se solidifie à des températures plus élevées.</li>
	<li>Peser et marquer toutes les souris diabétiques de destinataire. Injecter le pentobarbital sodique de 60 mg/kg par voie intrapéritonéale. Test le la profondeur de l’anesthésie par l’administration d’un pincement de l’orteil. Donner un pentobarbital sodique de 10 mg/kg supplémentaires si l’animal réagit à la pincée. Si il n’y a aucun retrait réflexe, le niveau de l’anesthésie est correct pour la chirurgie.</li>
	<li>Tamponner le site chirurgical sur l’abdomen à l’aide d’éthanol à 70 %. Se raser les cheveux sur le site avec une lame de razer et désinfecter la zone avec iodophore. Administrer vétérinaire onguent pour les yeux à prévenir le dessèchement tandis que sous anesthésie.</li>
	<li>Utiliser les ciseaux ophtalmiques pour ouvrir l’abdomen le long de la médiane de l’abdomen par une incision de 4 à 5 cm. déplacer les intestins vers le côté gauche et couvrir avec une gaze imbibée saline pour prévenir la déshydratation excessive au cours de la procédure de chirurgie.</li>
	<li>Utiliser des cotons-tiges pour exposer le champ visuel de l’estomac puis Localisez l’épiploon (situé sous l’estomac). Utiliser deux paires de pinces fines à distendre l’épiploon. Prendre soin d’éviter d’endommager de déchirement.</li>
	<li>L’hydrogel est complètement décongelée à ce stade. Tourner le tube avec les îlots de 30 s à 200 x g et enlever le surnageant. Aspirer 50 µL d’hydrogel, ajoutez-le dans le tube contenant les îlots et remettre en suspension le mélange doucement en évitant la formation de bulles. Garder les tubes sur la glace lors de la procédure.</li>
	<li>Utiliser deux paires de pinces pour ramasser les bords de l’épiploon et soulevez doucement pour former un sillon entre la paroi gastrique et l’intestin qui peut accueillir un petit volume de liquide avec la greffe d’îlots pancréatiques.</li>
	<li>Laissez la seconde personne assister dans la procédure et aspirer le mélange resuspendues îlot-hydrogel (tout le contenu du tube) avec une pointe de pipette de 200 µL, délivrer le contenu dans la rainure.</li>
	<li>Veiller à ce que le mélange est bien positionné dans la rainure en élevant ou en abaissant les bords de l’épiploon doucement. Positionnement du mélange moins de 3 min avant l’hydrogel complète se solidifie sous l’effet de la température corporelle. Après que l’hydrogel définit, plier l’épiploon pour couvrir la prothèse. NOTE : l’épiploon va adhérer à la paroi gastrique environnante comme l’hydrogel se solidifie.</li>
	<li>Après que l’hydrogel est complètement solidifié, utiliser cotons-tiges pour repositionner les intestins dans la cavité abdominale, en prenant soin de ne pas pour toucher le site de la transplantation.</li>
	<li>Ajouter 20 µL de céphalosporine (5 ~ 10 mg) dans la cavité abdominale pour prévenir l’infection, puis utilisez la suture 4-0 pour fermer l’abdomen.</li>
	<li>Retourner la souris à sa cage et répétez toutes les étapes pour chaque destinataire de la souris. Réchauffer les souris et surveiller visuellement jusqu'à ce qu’ils reprennent pleinement conscience suffisante pour maintenir le décubitus sternal. Séparer les souris des autres animaux jusqu'à ce qu’ils ont pleinement récupéré.</li>
	<li>Injecter 50 µL de céfazoline sodique (0,05 mg/mL) chaque jour pendant une semaine en prophylaxie post-opératoire. Administrer Bupivicaine + buprénorphine, c'est-à-dire appliquer 1 à 3 gouttes de 0,25 % Bupivicaine sur le site de l’incision par voie topique avant la pose de clips de la plaie. Administrer Buprenorphine(0.03 mg/ml with sterile 0.9% saline, 0.05-0.10 mg/kg) par voie intrapéritonéale (IP).</li>
	<li>Mesurer le niveau de glucose de sang non-jeûne auprès d’un échantillon de sang de la veine caudale à l’aide d’un lecteur de glycémie une fois par jour après la transplantation. En transplantant à l’épiploon, la greffe d’îlots pancréatiques peut avoir une fonction de retardée et n’atteint pas un niveau de glycémie tout à fait normal pendant 2 – 3 semaines.</li>
	<li>Pour histologie, retirer la prothèse omentaux de la souris à la fin de l’expérience après la transplantation. Fixer le tissu selon les protocoles histologiques. La prothèse peut être analysée pour études immunostaining ou immunofluorescence.</li>
</ol>2. autre méthode destinés à la Transplantation de l’épiploon
Remarque : Un hydrogel de fibrine-thrombine alternatif qui est utilisé à la température ambiante peut se substituer à la membrane basale matrice hydrogel. Il se compose de 2 éléments, une solution de protéine de fibrine scellant (50 U/mL thrombine et le fibrinogène de 10 mg/mL). Lorsque les composants sont mélangés, ils forment un caillot qui maintient les îlots en place.
<ol><li>Utiliser la fibrine-thrombine hydrogel composé à température ambiante. Comme à l’étape 1.2, chaque souris recevra 450 – 500 îlots d’équivalents (IEQ) par greffe. Placer les îlots dans un tube stérile de 1,5 mL de casser-dessus avec 100 µL de milieu CMRL-1066. Immédiatement avant la transplantation, aspirer les îlots dans un tuyau PE50 stérile pour une longueur de 10 cm et centrifuger doucement (30 s à 200 x g) pour former une boulette de lâche.</li>
	<li>Préparer l’animal comme indiqué ci-dessus (étapes 1,5-1,8) avec l’épiploon étalé. Mélanger les composants hydrogel (10 µL/chacun) et le placer sur l’épiploon. (Figure 3D)</li>
	<li>Immédiatement expulser les îlots de la tubulure sur l’hydrogel. L’hydrogel forme un caillot autour des îlots. (Figure 3E)</li>
	<li>Repliez l’épiploon l’hydrogel et les îlots pour former une pochette. (Figure 3F) Suivez les étapes 1.13 à 1,18.</li>
</ol>

<ol><li>Guariguata, L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Global+estimates+of+diabetes+prevalence+for+2013+and+projections+for+2035%5BTitle%5D)+AND+%22Diabetes+research+and+clinical+practice%22%5BJournal%5D)">Global estimates of diabetes prevalence for 2013 and projections for 2035.</a> Diabetes research and clinical practice. 103 (2), 137-149 (2014).</li>
<li>Bellin, M. D., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Potent+Induction+Immunotherapy+Promotes+Long-Term+Insulin+Independence+After+Islet+Transplantation+in+Type+1+Diabetes%5BTitle%5D)+AND+%22American+Journal+of+Transplantation%22%5BJournal%5D)">Potent Induction Immunotherapy Promotes Long-Term Insulin Independence After Islet Transplantation in Type 1 Diabetes.</a> American Journal of Transplantation. 12 (6), 1576-1583 (2012).</li>
<li>Moberg, L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Production+of+tissue+factor+by+pancreatic+islet+cells+as+a+trigger+of+detrimental+thrombotic+reactions+in+clinical+islet+transplantation%5BTitle%5D)+AND+%22The+lancet%22%5BJournal%5D)">Production of tissue factor by pancreatic islet cells as a trigger of detrimental thrombotic reactions in clinical islet transplantation.</a> The lancet. 360 (9350), 2039-2045 (2002).</li>
<li>Nilsson, B., Ekdahl, K. N., Korsgren, O. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Control+of+instant+blood-mediated+inflammatory+reaction+to+improve+islets+of+Langerhans+engraftment%5BTitle%5D)+AND+%22Current+Opinion+in+Organ+Transplantation%22%5BJournal%5D)">Control of instant blood-mediated inflammatory reaction to improve islets of Langerhans engraftment.</a> Current Opinion in Organ Transplantation. 16 (6), 620-626 (2011).</li>
<li>Bellin, M. D., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Similar+islet+function+in+islet+allotransplant+and+autotransplant+recipients%2C+despite+lower+islet+mass+in+autotransplants%5BTitle%5D)+AND+%22Transplantation%22%5BJournal%5D)">Similar islet function in islet allotransplant and autotransplant recipients, despite lower islet mass in autotransplants.</a> Transplantation. 91 (3), 367-372 (2011).</li>
<li>Bruni, A., Gala-Lopez, B., Pepper, A. R., Abualhassan, N. S., Shapiro, A. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Islet+cell+transplantation+for+the+treatment+of+type+1+diabetes%3A+recent+advances+and+future+challenges%5BTitle%5D)+AND+%22Diabetes%2C+metabolic+syndrome+and+obesity%3A+targets+and+therapy%22%5BJournal%5D)">Islet cell transplantation for the treatment of type 1 diabetes: recent advances and future challenges.</a> Diabetes, metabolic syndrome and obesity: targets and therapy. 7, 211(2014).</li>
<li>Shapiro, A. J., Pokrywczynska, M., Ricordi, C. <a target="_blank" href="https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/27834384">Clinical pancreatic islet transplantation.</a> Nature reviews Endocrinology. 13 (5), 268-277 (2017).</li>
<li>Cantarelli, E., Piemonti, L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Alternative+transplantation+sites+for+pancreatic+islet+grafts%5BTitle%5D)+AND+%22Current+diabetes+reports%22%5BJournal%5D)">Alternative transplantation sites for pancreatic islet grafts.</a> Current diabetes reports. 11 (5), 364(2011).</li>
<li>Cantarelli, E., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Murine+animal+models+for+preclinical+islet+transplantation%3A+no+model+fits+all+%28research+purposes%29%5BTitle%5D)+AND+%22Islets%22%5BJournal%5D)">Murine animal models for preclinical islet transplantation: no model fits all (research purposes).</a> Islets. 5 (2), 79-86 (2013).</li>
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<li>Schmidt, C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Pancreatic+islets+find+a+new+transplant+home+in+the+omentum%5BTitle%5D)+AND+%22Nature+Biotechnology%22%5BJournal%5D)">Pancreatic islets find a new transplant home in the omentum.</a> Nature Biotechnology. 35 (1), 82017(2017).</li>
<li>Voigt, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Prevalence+and+Progression+Rate+of+Diabetic+Retinopathy+in+Type+2+Diabetes+Patients+in+Correlation+with+the+Duration+of+Diabetes%5BTitle%5D)+AND+%22Exp+Clin+Endocrinol+Diabetes%22%5BJournal%5D)">Prevalence and Progression Rate of Diabetic Retinopathy in Type 2 Diabetes Patients in Correlation with the Duration of Diabetes.</a> Exp Clin Endocrinol Diabetes. , (2017).</li>
<li>Baidal, D. A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Bioengineering+of+an+Intraabdominal+Endocrine+Pancreas%5BTitle%5D)+AND+%22New+England+Journal+of+Medicine%22%5BJournal%5D)">Bioengineering of an Intraabdominal Endocrine Pancreas.</a> New England Journal of Medicine. 376 (19), 1887-1889 (2017).</li>
<li>Espes, D., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Rapid+restoration+of+vascularity+and+oxygenation+in+mouse+and+human+islets+transplanted+to+omentum+may+contribute+to+their+superior+function+compared+to+intraportally+transplanted+islets%5BTitle%5D)+AND+%22American+Journal+of+Transplantation%22%5BJournal%5D)">Rapid restoration of vascularity and oxygenation in mouse and human islets transplanted to omentum may contribute to their superior function compared to intraportally transplanted islets.</a> American Journal of Transplantation. , (2016).</li>
<li>Berman, D. M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Bioengineering+the+endocrine+pancreas%3A+intraomental+islet+transplantation+within+a+biologic+resorbable+scaffold%5BTitle%5D)+AND+%22Diabetes%22%5BJournal%5D)">Bioengineering the endocrine pancreas: intraomental islet transplantation within a biologic resorbable scaffold.</a> Diabetes. 65 (5), 1350-1361 (2016).</li>
<li>Delaune, V., Berney, T., Lacotte, S., Toso, C. <a target="_blank" href="https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/28109023">Intraportal islet transplantation: the impact of the liver micro-environment.</a> Transplant International. 30 (3), 227-238 (2017).</li>
<li>Espes, D., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Rapid+restoration+of+vascularity+and+oxygenation+in+mouse+and+human+islets+transplanted+to+omentum+may+contribute+to+their+superior+function+compared+to+intraportally+transplanted+islets%5BTitle%5D)+AND+%22American+Journal+of+Transplantation%22%5BJournal%5D)">Rapid restoration of vascularity and oxygenation in mouse and human islets transplanted to omentum may contribute to their superior function compared to intraportally transplanted islets.</a> American Journal of Transplantation. 16 (11), 3246-3254 (2016).</li>
<li>Hajizadeh-Saffar, E., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Inducible+VEGF+expression+by+human+embryonic+stem+cell-derived+mesenchymal+stromal+cells+reduces+the+minimal+islet+mass+required+to+reverse+diabetes%5BTitle%5D)+AND+%22Scientific+Reports%22%5BJournal%5D)">Inducible VEGF expression by human embryonic stem cell-derived mesenchymal stromal cells reduces the minimal islet mass required to reverse diabetes.</a> Scientific Reports. 5, (2015).</li>
</ol>

Les auteurs ne rapportent aucun conflit d’intérêt.

Transplantation d’îlots pancréatiques pour le foie via la veine porte est la plus couramment utilisée méthode de transplantation d’îlots pancréatiques chez l’homme, mais il y a encore des préoccupations de l’efficacité et la sécurité comme veine thrombose et foie stéatose17. Des études récentes montrent que l’épiploon peut être une alternative appropriée pour le foie, mais des efforts supplémentaires de recherche à effectuer avant la traduction clinique12,<sup cl...

Selon la Fédération internationale du diabète (FID), mellitus de diabète touche actuellement 382 millions de personnes, avec une augmentation prévue à 592 millions de personnes par 20351. Dans les deux greffes d’îlots xénogéniques et allogéniques, traitement immunosuppresseur systémique est nécessaire. Sans immunosuppression, rejet immunitaire est une cause majeure de perte de greffon2. Il y a aussi un grave problème de perte des îlots transplantés en raison du sang immédiate médiée par réaction inflammatoire (IBMIR)3,4. Cependant, même en l’absence d’une réponse immunitaire comme syngéniques ou modèles auto-transplantation, des cellules des îlots transplantés dans le foie via la veine porte sont perdues en raison d’une inflammation et/ou à des conditions environnementales défavorables, tels que le mauvais sang d’alimentation avec oxygénation réduite et/ou nutriments5,6. Ainsi, afin d’assurer des fonctions métaboliques à long terme, îlot des nombres plus élevés sont nécessaires pour compenser la perte de la cellule initiale qui réduit la prise de greffe7.
Dans le but d’optimiser la greffe d’îlots pancréatiques, plusieurs sites anatomiques alternatifs ont été étudiées expérimentalement ainsi que sur le plan clinique, avec prometteur, encore non définitif résultats8. Considérant que certains des sites alternatifs offrent un accès facile et sûr (par exemple., la peau, capsule rénale, sous-muqueuse gastrique et la chambre antérieure de le œil) ou une surface plus large pour les plus grandes masses d’îlot (e.g., cavité péritonéale), survie et physiologiques rendement métabolique des îlots transplantés sont encore limitée et demeurent une préoccupation9. La recherche d’un site plus approprié pour la greffe d’îlots pancréatiques est en cours.
L’épiploon était parmi les nombreux sites anatomiques qui ont été étudiés dans le développement de la transplantation d’îlots et s’est avérés un environnement fructueux pour les îlots10,11,12,13, 14. Cependant, perfusion intraporte îlot est devenu la raison choice clinique en partie à la relative simplicité de la procédure, et le succès rapide des animaux modèles6. Aussi, en partie, les négatifs associés avec ce site, perte d’îlot précoce particulièrement massive, étaient moins connus et moins contraignante dans les premiers jours de la transplantation d’îlots expérimentale que le champ est arrivée à échéance. Avec les plus récentes preuves convaincantes indiquant que la perfusion intravasculaire îlot est loin d’être idéale, l’épiploon est ré-émergent comme un site potentiellement intéressants pour la transplantation de cellules.
L’épiploon (sous la forme d’une poche épiploïques) offre des avantages relatifs sur le foie15,16. Elle est très vascularisée et facilement accessible. Il permet la récupération de la prothèse (si nécessaire) et/ou une biopsie. La période ischémique vécue par les îlots est réduite par rapport au foie, et l’épiploon peut accepter relativement masses grand îlot qui n’est pas possible au, où une augmentation de la pression portale peuvent entraîner des complications.
Un modèle de souris syngénique des greffes a été utilisé dans le protocole testé dans l’étude, qui emploient les souris C57BL/6 mâles entre 6 à 8 semaines avec un poids de 20 – 25 bénéficiaires îlot g. ont été rendus diabétiques avec une seule injection de streptozotocine avec une dose de 250 mg/kg ip. L’induction du diabète peut être considéré comme réussie si le niveau de glucose sanguin de la souris est supérieur à 24 mmol/L 48 h après l’injection et se maintient au-dessus de ce niveau pendant au moins 5 jours.
Syngéniques îlots ont été isolés par le pancréas des donneurs appariés selon l’âge suivant des méthodes publiées antérieurement avec quelques modifications. En bref, la collagénase a été injecté dans la vésicule biliaire au lieu de la voie biliaire. Cela a été fait comme une amélioration pour faciliter l’injection. Infusion de collagénase a été suivie de l’incubation, perturbation du tissu, séparation gradient de densité et de cueillette à la main pour obtenir des îlots pures. Îlots ont été cultivées pendant la nuit dans un milieu CMRL-1066 additionné de 10 % inactivés par la chaleur bovine sérum fœtal (SVF) dans des flacons de T175 à 37 ° C, moins 95 % de l’air - 5 % CO2 avant la transplantation.

<table><tbody><tr><td><fort>Équipement</fort></td><td></td><td></td><td></td></tr>5 <tr><td>pouces (12-13 cm) Ciseaux</td><td>RWD Life Science&nbsp ;</td><td>S12030-11</td><td></td></tr><tr><td>Pince fine</td><td>RWD Life Science</td><td>F11010-13</td><td></td></tr><tr><td>Pinces pour petites plaies</td><td>RWD Life Science</td><td>R33003-01</td><td></td></tr><tr><td>Acutenaculum</td><td>RWD Life Science</td><td>F31044-13</td><td></td></tr><tr><td>Pince à tissus 2 paires</td><td>RWD Life Science</td><td>&nbsp ; F13023-10</td><td></td></tr><tr><td>4-0 Suture à l’aiguille</td><td>Chenghe, Chine</td><td>17094</td><td></td></tr><tr><td>200 &mu ; L Pipette et embouts</td><td>Gilson</td><td>PN11</td><td></td></tr><tr><td>One Touch ultraeasy Basic Système de surveillance de la glycémie &nbsp ;</td><td>Johnson & Lame</td><td>de</td> rasoir Johnson 33391713 <td></td></tr><tr><td></td><td>Philips</td><td>HC1099/15</td><td></td></tr><tr><td>Material and animals</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Pentobarbital Sodium Sigmaaldrich.com</td><td></td><td>P3761</td><td>Pour l’anesthésie&nbsp ;</td></tr><tr><td>Hydrogel&nbsp ;</td><td>bdbiosciences.com</td><td>356234</td><td>matrice de membrane basale</td></tr><tr><td>fibrine-thrombine hydrogel&nbsp ;</td><td>Baxter.com</td><td>1501250</td><td>Les composants coagulent lorsqu’ils sont mélangés 70</td></tr><tr><td> % d’éthanol</td><td>Yingniu medical, Anhui, Chine</td><td>23170608</td><td></td></tr><tr><td>Iodophor</td><td>Lierkang medical technology, Shangdong, Chine</td><td>170521</td><td></td></tr><tr><td>Saline normale</td><td>Baxter.com</td><td>2B1324</td><td></td></tr><tr><td>Cephalosporin</td><td>Lukang medical, Shangdong, Chine</td><td>150303</td><td></td></tr><tr><td>Cefazolin</td><td>Baxter.com</td><td>2G3508</td><td></td></tr><tr><td>pommade oculaire lubrifiante</td><td>Major Pharmaceuticals</td><td>203964</td><td></td></tr><tr><td>streptozotocin</td><td>Sigmaaldrich.com</td><td>S0130</td><td></td></tr><tr><td>collagénase Type V</td><td>Sigmaaldrich.com</td><td>C9262</td><td></td></tr><tr><td>CMRL-1066 media</td><td>celltrans, Wenzhou, Chine</td><td>X018D1</td><td></td></tr><tr><td>histopaque</td><td>Sigmaaldrich.com</td><td>10771</td><td>gradient de densité</td></tr><tr><td>Tube PE50</td><td>Braintreesci.com</td><td>PE50 100 FT</td><td>Polyéthylène .023" x .038</td></tr><tr><td>Calcein AM</td><td>Sigmaaldrich.com</td><td>C1359</td><td></td></tr><tr><td>Iodure de propidium</td><td>Sigmaaldrich.com</td><td>P4864</td><td></td></tr><tr><td>Composé à température de coupe optimale (OCT)</td><td>Tissue-Tek ; Miles, Naperville, IL</td><td>4583</td><td>milieu d’intégration</td></tr><tr><td>d’anticorps anti-insuline</td><td>Technologie de signalisation cellulaire, Danvers, MA 01923</td><td>8138S</td><td></td></tr><tr><td>média de coloration à l’hématoxyline</td><td>Technologie de signalisation cellulaire, Danvers, MA 01923</td><td>14166S</td><td></td></tr><tr><td>média de coloration à l’éosine</td><td>Beyotime Biotech, Chine</td><td>C0109</td><td></td></tr><tr><td>DAPI</td><td>Thermo Fisher Scientific Inc.</td><td>D1306</td><td></td></tr><tr><td>C57Bl/6 Souris</td><td>Centre médical pour animaux de la province du Guangdong</td><td>/</td><td></td></tr><tr><td>Sérum de veau fœtal</td><td>GE Healthcare Life Sciences</td><td>SH30084</td><td></td></tr><tr><td>T175 flacons</td><td>Falcon</td><td>353112</td><td></td></tr><tr><td>1,5 mL Tubes à bouchon amovible</td><td>Axygen</td><td>MCT-150-C</td><td></td></tr></tbody></table>

une méthode pour la transplantation d’îlots à l’épiploon dans la souris

A Method for Islet Transplantation to the Omentum in Mouse

La transplantation d’îlots a été proposée pour être un traitement potentiel pour le diabète de type 1. Des preuves convaincantes récente indiquent qu’îlot intravasculaire infusion est loin d’être idéale et par conséquent, l’épiploon est ré-émergent comme un site potentiellement intéressants pour la transplantation d’îlots. Cette expérience nécessite l’isolement des îlots de haute qualité et l’implantation des îlots aux personnes diabétiques. Transplantation à l’épiploon requiert des étapes chirurgicales qui peuvent mieux démontrer visuellement. Ici, les étapes détaillées pour cette procédure sont présentés. Deux méthodes de mélange des îlots isolés avec hydrogel avant de placer le mélange dans la poche épiploïques des souris diabétiques sont décrites ici. Hydrogels différents sont utilisés pour les différentes conditions. Le taux de glucose sanguin des récipiendaires de souris diabétiques des îlots syngéniques dans l’épiploon ont été suivi pendant 35 jours. Certains animaux ont été sacrifiés après 14 jours pour réaliser une analyse immunohistochimique. Cette approche de transplantation préclinique peut servir de données préliminaires menant à la traduction de transplantation clinique.

Post-digestive état du pancréas est montré dans la Figure 1 a. Îlots purifiées sont indiquées dans la Figure 1 b. Dithizone coloration et viabilité des îlots sont indiquées à la Figure 2. Les principales étapes de la transplantation d’îlots à l’épiploon sont indiquées à la Figure 3. Le taux de glucose sanguin des destinataires après transplantation épiploïques est indiqu...

On introduit une méthode pour l’épiploïques transplantation d’îlots dans une souris. Les îlots sont mélangés avec hydrogel et le mélange est placé dans la pochette omentaux de souris diabétique. Ensuite, la glycémie est contrôlée et l’analyse immuno-histochimique est réalisée.

Une méthode pour la Transplantation d’îlots à l’épiploon dans la souris

Islet transplantation has been proposed to be a potential treatment for type 1 diabetes. Recent compelling evidence indicates that intravascular islet ...

Cette méthode peut aider à répondre aux questions clés dans le domaine de la transplantation d’îlots tels que la transplantation d’îlots à l’omentum. Les implications de cette technique s’étendent vers la thérapie du diabète de type I parce que l’omentum est réapparaître comme site de valeur potentielle pour la transplantation d’îlots. Le principal avantage de cette technique est que les îlots isolés sont mélangés avec de l’hydrogel et le mélange est placé dans la poche d’omentum de souris diabétique.Commencez par préparer un champ aseptique dans la zone chirurgicale avec du matériel stérile comme des rideaux et des jetables. Placer les instruments chirurgicaux stérilisés dans le champ aseptique. Choisissez les îlots donneurs au microscope stéréo à l’aide d’une pointe de pipette de 200 microlitres.Pour chaque animal, recueillir 450 à 500 îlots et transférer dans un tube supérieur stérile de 1,5 millilitre avec 100 microlitres de CMRL 10 66 moyenne. Placer le tube sur la glace jusqu’à ce qu’il soit prêt à être transplanté. Une fois les îlots récoltés, décongeler l’hydrogel de la matrice membranaire du sous-sol sur la glace.Pesez et identifiez toutes les souris diabétiques bénéficiaires. Après avoir anesthésié la première souris selon un protocole approuvé par l’établissement, testez la profondeur de l’anesthésie en administrant une pincée d’ateil. S’il n’y a pas de réflexe de sevrage, le niveau d’anesthésie est correct pour la chirurgie.Administrer l’onguent vétérinaire aux yeux pour éviter la sécheresse pendant l’anesthésie. Écouvillonner l’abdomen avec 70% d’éthanol. Puis raser les cheveux du site de la chirurgie.Couvrir l’animal d’un drapé stérile et désinfecter la zone avec un gommage à l’iode. Après avoir utilisé des ciseaux ophtalmiques pour créer une incision de 4 à 5 centimètres le long de la ligne médiane de l’abdomen, déplacez les intestins vers le côté gauche et couvrez de gaze saline trempée pour prévenir la déshydratation pendant la procédure chirurgicale. Ensuite, utilisez des cotons-tiges pour exposer complètement l’estomac et localiser l’omentum sous l’estomac.À ce stade, l’hydrogel doit être complètement décongelé. Faites tourner le tube contenant les îlots à 200 fois g pendant 30 secondes. Après la rotation, retirer le surnatant.Ensuite, aspirez 50 microlitres de l’hydrogel l’ajouter au tube contenant les îlots et mélanger doucement en évitant la formation de bulles. Ensuite, utilisez deux paires de forceps pour ramasser les bords de l’omentum et le soulever doucement pour former une rainure entre la paroi gastrique et les intestins. À ce stade de la chirurgie, une deuxième personne est nécessaire pour aspirer le mélange d’hydrogel d’îlot résuspendé avec une pointe de pipette de 200 microlitres et le livrer dans la rainure.Assurez-vous que le mélange est bien positionné dans la rainure en soulevant ou en abaissant doucement les bords de l’omentum. Terminer le positionnement du mélange dans les trois minutes avant que l’hydrogel ne se solidifie. Après les ensembles d’hydrogel, pliez l’omentum pour couvrir la greffe.L’omentum adhérera à la paroi gastrique environnante à mesure que l’hydrogel se solidifiera. Lorsque l’hydrogel est complètement solidifié, utiliser des cotons-tiges pour repositionner les intestins dans la cavité abdominale en prenant soin de ne pas toucher le site de la transplantation. Distribuez ensuite 200 microlitres d’un antibiotique approprié dans la cavité abdominale pour prévenir l’infection.Ensuite, utilisez 4 O suture pour fermer l’abdomen. Généralement, les individus nouveaux à cette méthode auront du mal parce que les sites de l’omentum chez la souris est petit et fatigant à évaluer. Placez la souris dans une cage de récupération réchauffée jusqu’à ce qu’elle retrouve complètement la récumbence externe.Le lendemain et tous les jours par la suite pendant une semaine, injecter des antibiotiques comme prophylaxie post-chirurgicale. De plus, mesurez le taux de glucose sanguin non à jeun à partir d’un échantillon de sang de veine de queue à l’aide d’un lecteur de glycémie une fois par jour après la greffe. Lors de la transplantation à l’omentum, la greffe d’îlot peut avoir une fonction retardée et ne pas atteindre un niveau de glucose sanguin tout à fait normal pendant deux à trois semaines.Le tissu greffé a été récupéré de la souris euthanasiée 14 jours après transplantation. Ici, la greffe est visible comme un groupe de noyaux après la coloration DAPI. La fonctionnalité du tissu greffé est révélée par la coloration d’immunofluorescence avec des anticorps anti-insuline.La coloration H&E montre les tissus greffés entourés par les adipocytes de l’omentum. Une fois maîtrisée, cette technique peut être effectuée en une heure si elle est effectuée correctement. Tout en essayant cette procédure, il est important de se rappeler trop l’omentum de souris est fragile.Suite à cette procédure, d’autres méthodes comme utilisé dans différentes écoles secondaires, mb performance dans tout ce qui répondra à des questions particulières comme la propagation de l’îlot dans la vascuolisation et la performance. Après ce développement, cette technique a ouvert la voie aux chercheurs dans leur et transplantation d’explorer le traitement du diabète de type I dans plus d’un extrait. Après avoir regardé cette vidéo, vous devriez avoir une bonne compréhension de la façon de transplanter les îlots à l’omentum dans la souris.

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