Name: Manipulation de microparticules par permanent des ondes acoustiques de Surface avec bi-fréquence Excitations (Vidéo) | JoVE Journal
Uploaded: 2018-08-21T14:30:00.000+00:00
Duration: 6 min 51 s
Description: Découvrez la manipulation de microparticules par ondes acoustiques de surface à excitation bi-fréquence dans des microcanaux. Cette méthode améliore le tri et la flexibilité des laboratoires sur puce pour applications biomédicales.

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Ce travail a été parrainé par le Fonds de la recherche universitaire (AcRF) niveau 1 (RG171/15), ministère de l’éducation, Singapour.

1. préparation du canal microfluidique
<ol><li>Poly-diméthylsiloxane (PDMS) se mêlent un élastomère de base dans un rapport de 10:1.</li>
	<li>Dégazer le mélange dans une étuve à vide et versez-la sur une plaquette de silicium avec un motif de photorésine ton négatif sur le dessus.</li>
	<li>Dégazer la plaquette de silicium à motifs à nouveau et chauffer à 70 ° C pendant 3 h dans un incubateur pendant la solidification.</li>
</ol>2. fabrication des transducteurs interdigitaux
<ol><li>Dépôt de 20 nm de Cr et 400 nm de Al sur une tranche de3 LiNbO ; modèle de 20 bandes d’une largeur de 150 µm et une ouverture de 2 cm sur un masque en plastique pour photolithographie en déposant la résine photosensible positive sur le substrat.</li>
	<li>Retirer la couche de Cr-Al sur la zone non exposée à l’acétone.</li>
	<li>Traiter la surface d’eux avec le plasma d’oxygène (avec un taux d’azote et d’oxygène de 2:1) à la puissance de 30 W pour 60 s.</li>
	<li>Aligner le microcanaux PDMS et il lient au substrat LiNbO3 en appuyant dessus avec un pouce pendant quelques secondes.</li>
	<li>Placez le périphérique intégré dans la chambre de chauffage à 60 ° C pendant 3 h.</li>
</ol>3. double-fréquence Excitation
<ol><li>Appliquer simultanément les deux composantes de fréquence (f1 et f3, la fréquence fondamentale et sa troisième harmonique de l’IDT préfabriqué, respectivement) avec la différence de phase φ entre eux à la paire d’OID, afin que la scie produite peut être exprimée comme suit. <img alt="Equation 1" src="/files/ftp_upload/58085/58085eq1.jpg"> Ici, <img alt="Equation 2" src="/files/ftp_upload/58085/58085eq2.jpg">et <img alt="Equation 3" src="/files/ftp_upload/58085/58085eq3.jpg"> = les pressions acoustiques.</li>
	<li>Synthétiser la forme d’onde double-fréquence à l’aide de l' éditeur d’équations du logiciel ArbExpress demande à la fréquence d’échantillonnage de 100 MÉCH. / s et le stocker ensuite dans le générateur de fonctions comme entrée arbitraire pour l’excitation de la scie dans l’expérience via un câble USB.</li>
	<li>Varier la puissance de la fréquence fondamentale de la puissance totale émise <img alt="Equation 4" src="/files/ftp_upload/58085/58085eq4.jpg"> de 100 % (excitation à la fréquence fondamentale purement) à 0 % (excitation à la purement troisième harmonique) ; pour une bonne comparaison, changer mais conserver la puissance totale même.</li>
	<li>Varier la différence de phase de l’excitation double fréquence de 0° à 360°.</li>
</ol>4. numerical Simulation
<ol><li>Décrire le mouvement de l’écoulement laminaire incompressible avec faibles Reynolds (c.-à-d., Re = 0,55) et Mach nombres comme suit35. <img alt="Equation 5" src="/files/ftp_upload/58085/58085eq5.jpg"> <img alt="Equation 6" src="/files/ftp_upload/58085/58085eq6.jpg"> Ici, <img alt="Equation 7" src="/files/ftp_upload/58085/58085eq7.jpg">= la vitesse du fluide, <img alt="Equation 8" src="/files/ftp_upload/58085/58085eq8.jpg">= la viscosité dynamique, <img alt="Equation 9" src="/files/ftp_upload/58085/58085eq9.jpg">= la densité du fluide, <img alt="Equation 10" src="/files/ftp_upload/58085/58085eq10.jpg">= la pression sur le fluide, <img alt="Equation 11" src="/files/ftp_upload/58085/58085eq11.jpg">= la matrice d’identité, et <img alt="Equation 12" src="/files/ftp_upload/58085/58085eq12.jpg">= une force extérieure.</li>
	<li>Décrire la force de traînée de Stoke produite sur l’objet comme suit36. <img alt="Equation 13" src="/files/ftp_upload/58085/58085eq13.jpg"> Ici, <img alt="Equation 14" src="/files/ftp_upload/58085/58085eq14.jpg">= le rayon de la MICROPARTICULE, <img alt="Equation 15" src="/files/ftp_upload/58085/58085eq15.jpg">= la vitesse du fluide, et <img alt="Equation 16" src="/files/ftp_upload/58085/58085eq16.jpg">= la vitesse de la MICROPARTICULE.</li>
	<li>Calculer la force de rayonnement acoustique appliquée sur les microparticules dans le microcanaux le long du x-axe (sur la largeur de microcanaux) à une seule fréquence comme suit16 . <img alt="Equation 17" src="/files/ftp_upload/58085/58085eq17.jpg"> Ici, <img alt="Equation 18" src="/files/ftp_upload/58085/58085eq18.jpg">= le volume de la MICROPARTICULE, <img alt="Equation 19" src="/files/ftp_upload/58085/58085eq19.jpg">= la masse volumique de la MICROPARTICULE, <img alt="Equation 20" src="/files/ftp_upload/58085/58085eq20.jpg">= la densité du milieu, <img alt="Equation 21" src="/files/ftp_upload/58085/58085eq21.jpg">= la compressibilité de la MICROPARTICULE, et <img alt="Equation 22" src="/files/ftp_upload/58085/58085eq22.jpg">= la compressibilité du milieu.</li>
	<li>Calculer la force de rayonnement acoustique qui en résulte de l’excitation de la double-fréquence comme suit. <img alt="Equation 23" src="/files/ftp_upload/58085/58085eq23.jpg">
</li>
	<li>Exprimer le mouvement transversal sur toute la largeur du canal (le long de y-axe) sous la force de rayonnement acoustique et Stokes faites glisser vigueur régie par la seconde loi de Newton comme suit. <img alt="Equation 24" src="/files/ftp_upload/58085/58085eq24.jpg">
</li>
	<li>Résoudre les équations différentielles ordinaires (ODEs) ci-dessus à l’aide de la méthode de Runge-Kutta de quatrième ordre sur un ordinateur personnel. Régler le pas de temps et durée totale comme 1 µs et 20 s, respectivement.</li>
</ol>5. expérimentale Observation
<ol><li>Faites tourner la solution dans la concentration de 5,9 x 107 4 µm vert fluorescents billes de polystyrène pour 1 mL de vortex pendant environ 2-3 min et puis plongez-le dans un sonicateur échographie pendant 10 min pour perturber toute agglomération avant chaque test.</li>
	<li>Verser le mélange dans une seringue de 3 mL et continuez avec un pousse-seringue à un débit de 3 à 5 µL/min.</li>
	<li>Conduire l’IDT avec le double-fréquence signal provenant d’un générateur de fonction suivi d’un amplificateur de puissance.</li>
	<li>Observez les microparticules stabilisées dans le microcanaux en aval sous un microscope optique avec un grossissement X 40 et l’image avec un appareil photo numérique.</li>
	<li>Mesurer l’emplacement des microparticules accumulés dans les images numériques capturées à l’aide de ImageJ et l’échelle établie et ensuite déterminer quantitativement la concentration de la MICROPARTICULE accumulé avec la luminosité de fluorescence normalisée à chaque nœud de pression.</li>
</ol>

<ol><li>Chin, C. D., Linder, V., Sia, S. K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Commercialization+of+microfluidic+point-of-care+diagnostic+devices%5BTitle%5D)+AND+%22Lab+on+a+Chip%22%5BJournal%5D)">Commercialization of microfluidic point-of-care diagnostic devices.</a> Lab on a Chip. 12 (12), 2118-2134 (2012).</li>
<li>Figeys, D., Pinto, D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Lab-on-a-chip%3A+a+revolution+in+biological+and+medical+sciences%5BTitle%5D)+AND+%22Analytical+Chemistry%22%5BJournal%5D)">Lab-on-a-chip: a revolution in biological and medical sciences.</a> Analytical Chemistry. 72 (9), 330 A-335 A (2000).</li>
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<li>Yu, L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Advances+of+lab-on-a-chip+in+isolation%2C+detection+and+post-processing+of+circulating+tumour+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Lab+on+a+Chip%22%5BJournal%5D)">Advances of lab-on-a-chip in isolation, detection and post-processing of circulating tumour cells.</a> Lab on a Chip. 13 (16), 3163-3182 (2013).</li>
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<li>Burguillos, M. A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Microchannel+acoustophoresis+does+not+impact+survival+or+function+of+microglia%2C+leukocytes+or+tumor+cells%5BTitle%5D)+AND+%22PLoS+One%22%5BJournal%5D)">Microchannel acoustophoresis does not impact survival or function of microglia, leukocytes or tumor cells.</a> PLoS One. 8 (5), e64233(2013).</li>
<li>Lin, S. -C. S., Mao, X., Huang, T. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Surface+acoustic+wave+%28SAW%29+acoustophoresis%3A+now+and+beyond%5BTitle%5D)+AND+%22Lab+on+a+Chip%22%5BJournal%5D)">Surface acoustic wave (SAW) acoustophoresis: now and beyond.</a> Lab on a Chip. 12 (16), 2766-2770 (2012).</li>
<li>Petersson, F., Åberg, L., Swärd-Nilsson, A. -M., Laurell, T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Free+flow+acoustophoresis%3A+microfluidic-based+mode+of+particle+and+cell+separation%5BTitle%5D)+AND+%22Analytical+Chemistry%22%5BJournal%5D)">Free flow acoustophoresis: microfluidic-based mode of particle and cell separation.</a> Analytical Chemistry. 79 (14), 5117-5123 (2007).</li>
<li>Ding, X., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((On-chip+manipulation+of+single+microparticles%2C+cells%2C+and+organisms+using+surface+acoustic+waves%5BTitle%5D)+AND+%22Proceedings+of+the+National+Academy+of+Sciences%22%5BJournal%5D)">On-chip manipulation of single microparticles, cells, and organisms using surface acoustic waves.</a> Proceedings of the National Academy of Sciences. 109 (28), 11105-11109 (2012).</li>
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<li>Destgeer, G., Lee, K. H., Jung, J. H., Alazzam, A., Sung, H. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Continuous+separation+of+particles+in+a+PDMS+microfluidic+channel+via+travelling+surface+acoustic+waves+%28TSAW%29%5BTitle%5D)+AND+%22Lab+on+a+Chip%22%5BJournal%5D)">Continuous separation of particles in a PDMS microfluidic channel via travelling surface acoustic waves (TSAW).</a> Lab on a Chip. 13 (21), 4210-4216 (2013).</li>
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<li>Ding, X., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cell+separation+using+tilted-angle+standing+surface+acoustic+waves%5BTitle%5D)+AND+%22Proceedings+of+the+National+Academy+of+Sciences%22%5BJournal%5D)">Cell separation using tilted-angle standing surface acoustic waves.</a> Proceedings of the National Academy of Sciences. 111 (36), 12992-12997 (2014).</li>
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<li>Chen, Y., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Continuous+enrichment+of+low-abundance+cell+samples+using+standing+surface+acoustic+waves+%28SSAW%29%5BTitle%5D)+AND+%22Lab+on+a+Chip%22%5BJournal%5D)">Continuous enrichment of low-abundance cell samples using standing surface acoustic waves (SSAW).</a> Lab on a Chip. 14, 924-930 (2014).</li>
</ol>

Les auteurs n’ont rien à divulguer.

La motion de microparticules dans le microcanaux par un SSAW à l’excitation de la double-fréquence a été étudiée dans cette étude, et une technique effectivement syntonisable patterning en faisant varier les signaux de l’excitation de la double-fréquence a été développée et testée. La production d’une telle forme d’onde est facilement réalisée par la plupart des générateurs de fonctions, et l’approche de réglage est très pratique. S12- tant S11-réponses en fréquence de l’OID fabriqué illustrent plus...

LOC technologie intègre une ou plusieurs fonctions sur une puce pour la biologie, la chimie, biophysique et processus biomédicaux. LOC permet une mise en place de laboratoire sur une échelle plus petite que les vitesses de réaction rapide, un temps de réponse court, un contrôle de processus élevée, une consommation de faible volume (moins frais de déchets, moins réactifs et moins des volume d’échantillon requis), Sub millimètres, un débit élevé dû à parallélisation, un faible coût à l’avenir la production de masse et jetables rentables, une grande sécurité pour les études biologiques, chimiques ou radioactifs et les avantages d’un appareil compact et portable1,2. Manipulation de cellules précises (p. ex., accumulation et séparation) est essentielle dans une base LOC analyse et diagnostic3,4. Cependant, la précision et la reproductibilité de manipulation au moyen de microparticules ont une variété de défis. Beaucoup de techniques, telles que l’électro-osmose5, diélectrophorèse (DEP)6, magnetophoresis7, thermophorèse8,9, une approche optique10, un optoélectroniques approche11 , une approche hydrodynamique12et Acoustophoromètre13,14,15, ont été développés. En comparaison, les approches acoustiques sont appropriées pour une application de LOC parce que, théoriquement, une multitude de microparticules/cellules peut être manipulée de manière efficace et non invasive avec un contraste assez élevé (densité et la compressibilité) par rapport avec le liquide environnant. Par conséquent, par rapport à leurs homologues, approches acoustiques sont intrinsèquement admissibles pour la plupart des microparticules et des objets biologiques, peu importe leurs propriétés optiques, électriques et magnétiques16.
Ondes acoustiques de surface (SAWs) de l’OID propagent surtout sur la surface d’un substrat piézoélectrique à l’épaisseur de plusieurs longueurs d’onde, puis fuite à l’angle de Rayleigh dans le liquide dans le MICROCANAL, selon Loi17, de la Snell 18,19,20,21,22. Ils ont les avantages techniques d’une efficacité énergétique élevée le long de la surface en raison de leur localisation, de l’énergie, une flexibilité de conception à haute fréquence, un bon système d’intégration avec le canal microfluidique et miniaturisation en utilisant technologie de système de micro-électronique-mécaniques (MEMS) et un potentiel élevé de production de masse23. Dans ce protocole, scies sont générés à partir d’une paire d’OID identiques et propagées dans la direction opposée pour générer une onde stationnaire, ou SSAW, dans le microcanaux, où les microparticules en suspension sont poussés aux nœuds de pression, pour la plupart par l’acoustique appliquée radiation force24. L’amplitude de cette force résultante est déterminée par la fréquence d’excitation, la taille au moyen de microparticules et son contraste acoustique facteur22,25.
Ce Acoustophoromètre a la limitation des patrons de manipulation prédéterminés qui ne sont pas réglables. La fréquence d’excitation de l’OID est déterminée par leur distance périodique, donc la bande passante est très limitée. Plusieurs stratégies ont été développés pour renforcer les capacités d’accordabilité et manipulation. Les modes de premières et deuxième d’acoustique des ondes stationnaires appliqués dans différentes parties de la microchannel pourraient séparer les microparticules plus efficacement selon les vitesses de mouvement différents vers les lignes nodales26. Ces deux modes pourraient également être appliquées à la partie entière de la microchannel et commuté par ailleurs27,28,29. Toutefois, pour ce faire, un grand nombre d’équipement (p. ex., trois générateurs de fonctions, deux unités d’adaptation d’impédance et un relais électromagnétique) est nécessaire, avec la complexité accrue de coûts et contrôle de l’installation expérimentale en raison des différentes impédance électrique à la fréquence fondamentale et la troisième harmonique de la piézo plaque30. En outre, transducteurs interdigitaux incliné-doigt (SFITs) pourraient être appliquées pour ajuster les cellules et les microparticules patterning en excitant une période des doigts inclinés pour une certaine résonance20,31. Toutefois, alors, la bande passante est inversement proportionnelle au nombre de doigts inclinés. Plusieurs lignes nodales de pression ont une plus grande efficacité de séparation et sensibilité par rapport à la ligne nodale dans le séparateur conventionnel basé sur SSAW microparticules. Par ailleurs, l’emplacement des nœuds pression pourrait également être changé simplement en ajustant la différence de phase appliquée à le deux OID dans la conception32,33.
La fréquence fondamentale et la troisième harmonique d’OID ont des réponses similaires de fréquence afin qu’ils peuvent être excitées en même temps, qui fournit plus d’accordabilité pour la manipulation de microparticules34. Par rapport à l’excitation de IDT classique à une seule fréquence, réglage de la pression acoustique de l’excitation de la double-fréquence et la phase entre eux fournit unicité technique, tels que le jusqu'à ~ 2 fois réduit le temps de mouvement à la pression nodale ligne ou au centre du MICROCANAL, le nombre varié et l’emplacement des lignes nodales pression et les concentrations de microparticules.

<table><tbody><tr><td>poly-diméthylsiloxane</td><td>Dow Corning</td><td>Sylgard 184</td><td></td></tr><tr><td>poly-diméthylsiloxane base élastomère</td><td>Dow Corning</td><td>Sylgard 184</td><td></td></tr><tr><td>plaquette de silicium</td><td>Technologie Bonda SI8PSPD</td><td></td><td></td></tr><tr><td>photorésine à tons négatifs</td><td>Microchem</td><td>SU-8</td><td></td></tr><tr><td>poli double face LiNbO3 plaquette</td><td>University Wafer</td><td>Y-128&deg ;</td><td></td></tr><tr><td>photorésine positive</td><td>Nicolaus-Otto-Stra&szlig ; e</td><td>AZ 9260</td><td></td></tr><tr><td>plasma d’oxygène</td><td>Harrick Masque</td> en plastique plasma <td></td><td></td></tr><tr><td></td><td>Infinite Graphics</td><td></td><td></td></tr></tbody></table>

manipulation de microparticules par permanent des ondes acoustiques de surface avec bi-fréquence excitations

Microparticle Manipulation by Standing Surface Acoustic Waves with Dual-frequency Excitations

Nous démontrons une méthode pour augmenter la capacité de réglage d’une onde acoustique surface stationnaire (SSAW) pour la manipulation de microparticules dans un système de lab-on-a-chip (LOC). L’excitation simultanée de la fréquence fondamentale et sa troisième harmonique, ce qui est qualifié de double fréquence d’excitation, à une paire de transducteurs interdigitaux (OID) pourrait générer un nouveau type de commandes des ondes acoustiques dans un canal microfluidique. Varier la puissance et la phase de l’excitation de la double-fréquence des signaux résultats dans un domaine reconfigurable de la force de rayonnement acoustique appliquée sur les microparticules dans le microcanaux (p. ex., le nombre et l’emplacement des nœuds pression et la au moyen de microparticules les concentrations au niveau des noeuds de pression correspondante). Cet article montre que le temps du mouvement de la MICROPARTICULE au nœud de pression qu’un seul peut être réduit ~ 2 fois dans le rapport de la puissance de la fréquence fondamentale supérieure à environ 90 %. En revanche, il y a trois nœuds de pression dans le microcanaux si inférieure à ce seuil. En outre, réglage de la phase initiale entre la fréquence fondamentale et les résultats du troisième harmoniques dans les taux de mouvement différents des trois nœuds pression SSAW, ainsi que du pourcentage de microparticules à chaque nœud de pression dans le microcanaux. Il y a une bonne concordance entre l’observation expérimentale et les prédictions numériques. Cette méthode nouvelle excitation peut intégrer facilement et de façon non invasive dans le système LOC, avec une tenabilité large et seulement quelques changements pour le montage expérimental.

La répartition de la pression acoustique et la force de rayonnement acoustique d’un SSAW à l’excitation bi-fréquence (6,2 et 18,6 MHz) sont indiquées dans la Figure 1. Ici, l’excitation bi-fréquence se produit sur les microparticules en polystyrène (4 µm de diamètre) dans un microchannel avec une largeur de 300 µm à une puissance acoustique de 146 mW. La pression acoustique qui en résulte est toujours en phase quand P1 &gt; 90 % alors qu’...

Un protocole permettant de manipuler les microparticules dans un canal microfluidique avec une double fréquence d’excitation est présenté.

Manipulation de microparticules par permanent des ondes acoustiques de Surface avec bi-fréquence Excitations

We demonstrate a method for increasing the tuning ability of a standing surface acoustic wave (SSAW) for microparticles manipulation in a lab-on-a-chip ...

Cette méthode peut aider à résoudre des problèmes clés dans le domaine biomédical, tels que la manipulation des microparticules et aider au tri dans un canal microfluidique pour les laboratoires sur puce. Le principal avantage de cette technique est qu’elle peut améliorer l’accordabilité de la commission d’ondes acoustiques de surface stationnaire. Yannapol, un étudiant diplômé de mon groupe, fera la démonstration de la procédure.Commencer par un moule pour le canal microfluidique. Celui-ci est un motif photosensible à tons négatifs sur une plaquette de silicium. Plus de détails sont fournis par le motif de photolithographie utilisé pour le créer.Mélangez 10 parties de PDMS avec une partie du rapport de volume de base en élastomère. Dégazez le mélange dans un four sous vide pendant environ 15 minutes. Après le dégazage, apportez le mélange dans le moule.Là, versez-le sur la résine photosensible sur la plaquette de silicium. Maintenant, dégazez la plaquette de silicium recouverte pendant encore 15 minutes. Après cela, chauffez la plaquette dans un incubateur pour solidifier le PDSM.Lorsque le PDMS est refroidi, retirez-le de la plaquette. Le canal microfluidique est prêt pour les prochaines étapes du protocole. Préparez un substrat pour la fabrication des transducteurs.Dans ce cas, utilisez une plaquette de niobate de lithium de quatre pouces de diamètre. Sur une machine à revêtir, enduisez la plaquette d’une photorésine positive. Ensuite, utilisez la photolithographie pour modeler la résine photosensible avec 20 bandes de 150 nanomètres dans une ouverture de deux centimètres.Après la photolithographie, il s’agit de la représentation schématique du changement de section transversale du substrat. Une fois la résine photosensible développée, pulvérisez 20 nanomètres de chrome sur le substrat, suivis de 400 nanomètres d’aluminium. Utilisez de l’acétone pour enlever la couche de chrome et d’aluminium sur les zones non exposées.Prenez le substrat pour le traitement de surface dans le plasma d’oxygène. Utilisez un rapport azote/oxygène de deux pour un avec 30 watts de puissance pendant 60 secondes. Une fois terminé, travaillez à la fois avec le substrat et le microcanal.Alignez le microcanal PDMS et collez-le avec le substrat de niobate de lithium. Appuyez sur les deux ensemble pendant quelques secondes pour les lier. Placez l’appareil intégré dans la chambre de chauffe à 60 degrés pendant trois heures.Après avoir chauffé la chambre, l’appareil est prêt pour des études utilisant des excitations à double fréquence d’ondes acoustiques de surface stationnaire. Pour les observations, utilisez un microscope inversé avec l’appareil sur sa platine. Placez la plaquette avec les transducteurs interdigités en contact avec la platine et placez le microcanal sur le dessus.Connectez les transducteurs au signal amplifié d’un générateur de fonctions. Disposez les fluides d’un pousse-seringue pour qu’ils passent sur un agitateur magnétique. Préparez la solution pour les expériences.Mélangez quatre microbilles de polystyrène dans de l’eau déminéralisée. Faites tourner le mélange dans un tourbillon pendant deux à trois minutes. Ensuite, placez le mélange dans un sonicateur à ultrasons pendant 10 minutes.Transférez le mélange dans une seringue de trois millilitres. Ajoutez également une barre d’agitation dans la seringue. Ensuite, placez la seringue sur le pousse-seringue.Assurez-vous que la seringue se trouve au-dessus de l’agitateur magnétique et qu’elle est connectée à l’entrée de l’appareil. Réglez le débit de la pompe à seringue à quelques microlitres par minute. Maintenant, pilotez l’appareil avec la fondamentale et la troisième harmonique des transducteurs interdigités.Observez les microparticules stabilisées au microscope et enregistrez des images avec l’appareil photo numérique. Commencez sans excitation et faites varier la différence de phase entre les deux fréquences. Utilisez les images enregistrées pour déterminer la concentration de microparticules à chaque nœud de pression.Il s’agit d’un graphique des formes d’ondes de pression d’une onde acoustique de surface stationnaire aux fréquences d’excitation de 6,2 et 18,6 mégahertz. L’axe vertical est la position le long d’un microcanal de 300 micromètres de large. Les courbes représentent différents rapports de puissance, le pourcentage de puissance en mode fondamental par rapport à la puissance totale de 146 milliwatts.Voici la force de rayonnement acoustique appliquée à quatre microsphères micrométriques dans le même canal dans les mêmes conditions de puissance. À un rapport de puissance supérieur à 90 %, la force est toujours en phase et produit un seul nœud de pression à la position de 150 micromètres dans le canal. Des nœuds supplémentaires apparaissent pour un rapport de puissance inférieur à 90 %Lorsque quatre microsphères de polystyrène micrométriques sont initialement placées sur une paroi du canal, leur mouvement est déterminé par le rapport de puissance.Remarque :Pour les rapports de puissance supérieurs à 90 %, les particules vont au nœud central. Pour des rapports de puissance de 90 % et moins, ils vont aux nœuds latéraux. La comparaison des données expérimentales, tracées à l’aide de symboles, avec des simulations tracées par des lignes pointillées, pour la position des particules en fonction du rapport de puissance donne un bon accord.Notez que ce graphique montre à la fois les nœuds latéraux supérieur et inférieur. Une concordance similaire est évidente dans un graphique de la concentration des particules en fonction du rapport de puissance. Lors de la tentative de cette procédure, il est important de se rappeler de régler l’onde acoustique stationnaire dans le canal microfluidique en ajustant le rapport de puissance de l’excitation à double fréquence.Après son développement, cette technique a ouvert la voie aux chercheurs dans le domaine de l’ingénierie biomédicale pour explorer la manipulation rapide, efficace et flexible des microparticules dans les laboratoires sur puce. N’oubliez pas que travailler avec des instruments électriques peut être extrêmement dangereux et que des précautions pour éviter les chocs électriques doivent toujours être prises lors de l’exécution de cette procédure.

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Dans cette vidéo, nous décrivons d'abord les procédures de fabrication et d'exploitation d'une onde acoustique de surface (SAW) de l'appareil à contre-courant de l'acoustique. Nous démontrons ensuite un dispositif expérimental qui permet à la fois la visualisation des écoulements analyse qualitative et quantitative des flux complexes dans le dispositif de pompage SAW.

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