Occlusion aortique complète ou partielle pour le traitement du choc hémorragique chez le porc

Cette méthode peut aider à répondre à des questions clés dans le domaine des soins de traumatologie, y compris des stratégies pour traiter l’hémorragie torse non compressible. Le principal avantage de cette technique est qu’elle peut aider à tester des stratégies de réanimation endovasculaire pertinentes dans un modèle de grand animal cliniquement réaliste avec une physiologie qui imite celle de l’homme. Les implications de cette technique s’étendent au traitement du choc hémorragique, qui est l’une des principales causes de décès évitables par traumatisme.

En général, les personnes qui ne connaissent pas cette méthode auront du mal, car elle nécessite une expertise chirurgicale et une connaissance de la physiologie des soins intensifs. Après avoir confirmé un niveau approprié de sédation à l’aide d’un pincement des membres postérieurs, utilisez un laryngoscope conventionnel équipé d’une lame Miller éclairée de 12 pouces pour passer l’extrémité de la lame à travers l’oropharynx du porc anesthésié. En prenant soin de ne pas endommager la muqueuse buccale ou les dents, avancez lentement l’extrémité de la lame jusqu’à l’épiglotte, en soulevant l’épiglotte avec la lame et en continuant au-delà de l’entrée du larynx jusqu’à ce qu’une vue claire du larynx soit obtenue.

Placez une sonde endotrachéale française de 6,5 ou 7 avec un stylet entre les cordes vocales, dans la trachée, et gonflez le ballonnet avec 10 à 15 centimètres cubes d’air pour éviter les fuites autour du brassard ou l’aspiration du contenu gastrique. Ensuite, connectez le tube endotrachéal au ventilateur mécanique à travers un filtre respiratoire et fixez le tube autour du maxillaire avec du ruban adhésif. Pour une canulation de l’artère fémorale et des veines, frottez les sites opératoires avec un volume abondant de povidone iodée pendant cinq minutes et placez les serviettes chirurgicales stériles autour des sites opératoires pour préserver la stérilité des champs chirurgicaux.

À l’aide d’un scalpel muni d’une lame chirurgicale stérile numéro 10, identifiez le pli inguinal et faites une incision verticale de huit centimètres dans l’aine droite, quatre centimètres au-dessus et quatre centimètres au-dessous du pli inguinal droit. Disséquez à travers le tissu sous-cutané et placez deux écarteurs Weitlaner dans l’incision. À l’aide d’une pince à angle droit Mixter et d’un électrocautérisation, disséquez les tissus conjonctifs et le muscle jusqu’à ce que le faisceau neurovasculaire soit clairement exposé, et disséquez prudemment l’artère, en prenant soin de préserver le nerf latéral.

Utilisez une aiguille d’introduction coudée de calibre 20 pour percer l’artère et avancez un fil-guide à bout rond de 0,35 pouce à travers la lumière de l’aiguille inclinée. Lorsque le fil-guide est en place, retirez l’aiguille sur le fil guide, en maintenant une légère pression sur l’artériotomie pour éviter les saignements, et insérez une gaine d’insertion française 14 sur le fil guide. Ensuite, canulez l’artère fémorale gauche et la veine comme nous venons de le démontrer.

Pour la canulation de l’artère carotide et de la veine jugulaire externe, utilisez un scalpel à lame numéro 10 pour faire une incision verticale de six centimètres à environ deux centimètres latéralement de la ligne médiane sur le côté gauche du cou. Utilisez l’électrocautérisation pour disséquer à travers le tissu sous-cutané jusqu’à ce que le muscle sternocléido-mastoïdien soit exposé, et disséquez le long du bord latéral du muscle pour exposer la veine jugulaire externe gauche. Ensuite, canulez le vaisseau avec un cathéter français 8 comme nous venons de le démontrer.

Pour l’exposition de l’artère carotide commune gauche, disséquez le bord médial du muscle sternocléido-mastoïdien, jusqu’à ce que le triangle carotide, qui contient l’artère carotide, le nerf vague et la veine jugulaire interne, soit observé. Canuler l’artère carotide comme démontré précédemment, avec un cathéter français 5. Pour la dissection controlatérale, isoler la veine jugulaire externe droite et l’artère carotide commune droite, comme démontré pour leurs homologues latéraux.

Ensuite, utilisez une gaine d’introduction française 9 pour canuler la veine jugulaire externe droite et placez une sonde de débit de l’artère carotide de quatre millimètres autour de l’artère carotide commune droite. Ensuite, insérez le cathéter de l’artère pulmonaire à travers la gaine d’insertion française 9 de 15 à 18 centimètres dans la veine jugulaire externe droite. Une fois le cathéter en place, gonflez le ballonnet avec pas plus de 1,5 centimètre cube d’air.

Avancez le cathéter et observez le moniteur pour évaluer la transition de la pression de l’oreillette droite au ventricule droit, à l’artère pulmonaire et à la pression cunéiforme de l’artère pulmonaire. Ensuite, dégonflez le ballon et confirmez qu’une trace d’artère pulmonaire revient au moniteur. Pour la mise en place d’un tube de cystostomie, utilisez un scalpel à lame numéro 10 pour faire une incision abdominale inférieure de cinq centimètres et extracorporellement la vessie.

À l’aide de l’électrocautérisation, faites une petite ouverture dans la vessie et aspirez l’urine, et utilisez une suture en polypropylène 4-0 pour effectuer une fermeture temporaire du cordon de la bourse de la vessie. Placez un cathéter de Foley français 18 à l’intérieur de la lumière de la vessie et utilisez une seringue de 10 centimètres cubes pour gonfler le ballonnet. Ensuite, attachez la suture pour fixer le cathéter dans la lumière de la vessie.

Pour l’insertion d’un cathéter aortique à ballonnet, insérez un fil de guidage rigide Amplatz de 0,035 pouce et 260 centimètres à travers la gaine d’insertion française 14. Confirmez sa position dans l’aorte supracœliaque à l’aide de l’échographie. Ensuite, insérez le cathéter d’occlusion à ballonnet sur le fil guide, dans l’aorte supracœliaque.

Après avoir calculé le volume sanguin total, utilisez une pompe automatisée pour faire une hémorragie de 35 % du volume sanguin total en 20 minutes, dans des sacs de prélèvement de sang standard pour un stockage à quatre degrés Celsius. Lorsque tout le sang a été stocké, gonflez le cathéter d’occlusion du ballonnet aortique avec 9 à 12 centimètres cubes d’air, ou jusqu’à ce qu’il n’y ait plus de diminution de la pression artérielle moyenne distale après un gonflage supplémentaire du ballonnet. Après 40 minutes d’occlusion, utilisez la pompe automatisée pour réanimer l’animal, avec du sang total d’un volume égal à 20 % du volume sanguin total via le cathéter de la veine fémorale gauche sur 20 minutes.

Ensuite, dégonflez le ballon progressivement sur cinq minutes. Pendant la phase de gonflage par ballonnet, les animaux du groupe d’occlusion complète subissent une pression artérielle moyenne proximale plus élevée que les animaux du groupe d’occlusion partielle, tandis que la pression artérielle distale moyenne pendant le gonflage par ballonnet est plus élevée dans le groupe d’occlusion partielle par rapport au groupe d’occlusion complète, ce qui reflète le flux aortique distal partiel. Après la réanimation, la pression artérielle moyenne proximale et distale augmente dans les deux groupes et revient à la ligne de base après le dégonflement du ballonnet pour le reste de la phase de soins intensifs.

Tous les animaux ressentent une tachycardie réflexe immédiatement après l’hémorragie qui subit une augmentation progressive pendant la phase de gonflage du ballon dans les deux groupes. Après une hémorragie, la pression veineuse centrale diminue dans les deux groupes, subissant une augmentation après le dégonflement du ballonnet, et revenant à la ligne de base après la réanimation. De même, le débit cardiaque diminue après une hémorragie, augmente pendant le gonflage du ballon et revient à la ligne de base après le dégonflement du ballonnet en réanimation dans les deux groupes.

Le débit carotidien diminue dans les deux groupes immédiatement après l’hémorragie, le groupe d’occlusion complète présentant un débit carotidien plus élevé par rapport au groupe d’occlusion partielle. Après la réanimation et le dégonflage du ballonnet, le débit carotidien se rétablit vers la ligne de base dans les deux groupes, mais à un niveau plus bas dans le groupe d’occlusion complète. Après avoir regardé cette vidéo, vous devriez avoir une bien meilleure compréhension de la façon d’utiliser de grands modèles animaux pour tester l’occlusion aortique à l’aide de stratégies endovasculaires.

De plus, comme toute autre opération chirurgicale, vous devez être prudent dans la manipulation des instruments pour pouvoir la faire en toute sécurité.