Name: L’amélioration de la dénervation rénale a atténué l’hypertension induite par la perfusion d’angiotensine II (Vidéo) | JoVE Journal
Uploaded: 2022-05-26T13:00:00.000+00:00
Duration: 8 min 35 s
Description: Découvrez la dénervation sympathique rénale chez la souris pour étudier l'hypertension et l'hypertrophie cardiaque induites par l'angiotensine II. Cette méthode standardisée permet d'explorer les mécanismes de régulation nerveuse sans lésion artérielle.

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Ce travail a été soutenu par la Fondation nationale des sciences naturelles de Chine (81770420), la Commission des sciences et de la technologie de la municipalité de Shanghai (20140900600), le Shanghai Key Laboratory of Clinical Geriatric Medicine (13dz2260700), la spécialité clinique clé de Shanghai (shslczdzk02801) et le Centre de la maladie coronarienne gériatrique, l’hôpital Huadong affilié à l’Université Fudan.

Toutes les procédures d’expérimentation animale étaient conformes au Guide éthique pertinent pour le soin et l’utilisation des animaux de laboratoire (publication des NIH n ° 85-23, révisée en 2011) et ont été approuvées par les comités de recherche animale de l’hôpital de Huadong affilié à l’Université Fudan. Des souris C57BL/6 mâles âgées de quatorze semaines (28-30g) ont été divisées au hasard en quatre groupes : groupe Sham, groupe Sham + Ang II, groupe RDN, groupe RDN + Ang II, n = 6 dans chaque groupe. Tous les animaux ont été maintenus dans des conditions fermées spécifiques exemptes d’agents pathogènes dans une pièce à température contrôlée à 24 ± 1 °C avec un cycle lumière/obscurité de 12 heures et un accès libre à la norme de rongeurs et à l’eau ad libitum.
1. Préparation du champ d’opération
<ol><li>Désinfectez la table d’opération avec de l’éthanol à 70%. Réglez la température du coussin chauffant à 37 °C.</li>
	<li>S’assurer que tous les instruments chirurgicaux sont stérilisés avant la chirurgie à 121 °C pendant 30 minutes ou par d’autres méthodes. Cette procédure nécessite des ciseaux microchirurgicaux, deux pinces droites fines, deux pinces fines incurvées, des pinces hémostatiques, des gazes stériles et des papiers de pesée.</li>
</ol>2. Hypertension induite par l’angiotensine II
<ol><li>Fournir du méloxicam (0,5 mg/kg, SC) aux souris C57BL/6 peu avant l’induction de l’anesthésie. Ensuite, anesthésier les souris en utilisant l’injection de pentobarbital sodique comme décrit précédemment20,21. L’isoflurane peut également être utilisé, si vous préférez. Confirmez la profondeur de l’anesthésie avec un réflexe de pincement négatif des orteils.</li>
	<li>Enlevez les poils sur le dos avec un rasoir. Appliquez une pommade vétérinaire sur les yeux pour prévenir la sécheresse sous anesthésie.</li>
	<li>Placez l’animal sur une table d’opération en position dorsale. Écouvillonner et essuyer la zone rasée avec de la povidone iodée suivie de trois lingettes contenant de l’éthanol à 70%.</li>
	<li>Faites une incision de 1 cm à l’aide d’une lame de scalpel stérile, perpendiculaire à la queue, derrière l’oreille sur l’omoplate de la patte avant.</li>
	<li>Utilisez un hémostatique stérile pour faire un tunnel sous-cutané sous la peau et créer une poche pour la pompe22. Insérez doucement une pompe osmotique remplie d’angiotensine II (1 000 ng/kg/min) dans la poche. Assurez-vous qu’il y a suffisamment d’espace libre pour suturer la plaie sans étirer la peau.</li>
	<li>Suturer le muscle avec des sutures en Vicryl 6-0 interrompues et fermer la peau avec des sutures en nylon 4-0 interrompues. Écouvillonner et essuyer le site de la plaie avec de la povidone iodée. Effectuer la même chirurgie avec un volume égal de solution saline pour le groupe témoin.</li>
	<li>Placez tous les instruments chirurgicaux dans un stérilisateur pendant 10 s et replacez les gants stériles entre les chirurgies. Surveillez toutes les souris jusqu’à ce qu’elles soient complètement rétablies.</li>
	<li>Surveillez de près et observez la cicatrisation des plaies chez la souris au moins deux fois par jour pendant la première semaine et une fois par jour par la suite, y compris la rougeur, l’enflure et l’infection. Effectuer la dissection immédiatement si les souris meurent pendant la perfusion d’Ang II.</li>
	<li>Mesurer la pression artérielle au départ et chaque semaine après la perfusion d’Ang II avec la méthode de pléthysmographie de la coiffede queue 23 chez des souris conscientes. S’assurer que les expériences de mesure de la pression artérielle sont menées dans un endroit calme, à 22 ± 2 °C, où les souris sont acclimatées pendant 1 h avant le début de l’expérience. Habituer les souris pendant au moins 5 jours consécutifs avant les mesures de pression artérielle de base23,24.</li>
</ol>3. Dénervation rénale bilatérale
<ol><li>Sélectionnez les souris présentant une pression artérielle élevée (TA) ≥140/90 mmHg ou une augmentation de 25 % de la PA systolique/PA diastolique, 1 semaine après la perfusion d’Ang II.</li>
	<li>Enregistrer le poids des animaux avant la chirurgie et choisir des animaux d’un poids minimum de 24 g pour la chirurgie de dénervation rénale.</li>
	<li>Anesthésier les souris à l’aide de pentobarbital sodique. Confirmez la profondeur de l’anesthésie avec un réflexe de pincement négatif des orteils.</li>
	<li>Enlevez les poils sur l’abdomen avec un rasoir. Effectuez cette procédure avec soin et minutie pour éviter toute contamination chirurgicale.</li>
	<li>Placez les souris sur la table d’opération, en maintenant l’abdomen en place et fixez ses membres avec du ruban adhésif. Désinfecter la peau abdominale avec de la povidone iodée suivie de trois lingettes avec de l’éthanol à 70%.</li>
	<li>Faites une incision abdominale médiane ventrale de 2 cm à l’aide d’une lame de scalpel. Retirez l’intestin avec de la gaze imbibée d’une solution saline à 37 °C pour exposer l’artère rénale gauche. Disséquez soigneusement mais carrément la graisse loin de l’artère rénale à l’aide d’une pince à épiler incurvée. (Figure 1A-C).</li>
	<li>Coupez le papier de pesée en un rectangle de la même taille que l’artère rénale avec des ciseaux tranchants stériles. Pour référence, coupez le papier de pesée dans la même taille que celle indiquée par la ligne pointillée de la figure 1C. REMARQUE: C’est une partie critique de la chirurgie, essayez de couper plusieurs morceaux de papier de pesée à la fois pour garder la même forme.</li>
	<li>Trempez le papier de pesage dans une solution phénol/éthanol à 10 % pendant au moins 30 s. Couvrir la surface de l’artère rénale gauche et envelopper le vaisseau avec le papier de pesée, conserver pendant 2 min (Figure 1D). Utilisez de la gaze pour protéger les tissus environnants afin d’éviter que le papier de pesée ne touche le rein et l’intestin environnants. REMARQUE: La solution de phénol est stable dans les tubes en plastique mais pas dans les flacons en verre. Par conséquent, la solution doit être fraîchement préparée pour chaque expérience18.</li>
	<li>Effectuez la même procédure pour l’artère rénale droite. Effectuez la chirurgie fictive avec du papier de pesée immergé dans une solution saline.</li>
	<li>Repositionnez les muscles dans leur position initiale et fermez le péritoine avec des sutures de Vicryl 6-0 dans une suture interrompue. Ensuite, fermez la peau avec des sutures en nylon 4-0 interrompues. Surveillez toutes les souris jusqu’à ce qu’elles soient complètement rétablies.</li>
</ol>4. Soins postopératoires
<ol><li>Appliquez de la povidone iodée sur l’incision et placez l’animal dans une couverture chauffante pour la récupération et la surveillance postopératoire.</li>
	<li>Surveillez les souris deux fois par jour pour évaluer la rougeur, l’enflure et la douleur ou l’infection abdominale. Fournir du méloxicam (0,5 mg/kg, SC) à toutes les souris environ 1 h avant et 24 h après la procédure RDN.</li>
</ol>

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<li>Wilde, E., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Tail-cuff+technique+and+its+influence+on+central+blood+pressure+in+the+mouse%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+the+American+Heart+Association%22%5BJournal%5D)">Tail-cuff technique and its influence on central blood pressure in the mouse.</a> Journal of the American Heart Association. 6 (6), 005204(2017).</li>
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</ol>

Il n’y a pas de conflits d’intérêts, financiers ou autres, tels que déclarés par les auteurs.

La question de savoir si le RDN pourrait abaisser la tension artérielle est devenue controversée depuis la publication du résultat négatif de l’essai de symplicité HTN-3 7,25. Cependant, plusieurs essais cliniques et expériences sur des animaux ont démontré des résultats positifs et efficaces de RDN sur les humains et les animaux hypertendus 9,10,11,12,13,14,15,16,17.<su...

L’hypertension est une maladie cardiovasculaire chronique majeure dans le monde. L’hypertension non contrôlée pourrait endommager les organes cibles et contribuer à l’insuffisance cardiaque, aux accidents vasculaires cérébraux et aux maladies rénales chroniques 1,2,3. La prévalence de l’hypertension est passée de 20 % à 31 % entre 1991 et 2007 en Chine. Le nombre d’adultes souffrant d’hypertension en Chine pourrait doubler à la suite d’une récente révision des critères diagnostiques de l’hypertension (130/80 mmHg)4. L’hypertension peut être contrôlée par la médecine, cependant, environ 20% des patients sont incapables de contrôler leur hypertension, même lorsqu’ils reçoivent au moins trois médicaments antihypertenseurs (dont un diurétique) à la dose maximale tolérée, ce qui peut conduire au développement d’une hypertension pharmacorésistante5.
La dénervation sympathique rénale (RDN) s’est avérée être un traitement potentiel de l’hypertension. En 2009, Krum et ses collègues ont signalé pour la première fois un traitement de l’hypertension résistante utilisant le RDN. Il a été constaté que l’ablation percutanée de l’artère rénale peut effectivement provoquer une réduction persistante de la pression artérielle chez les patients6. Cependant, l’échec de l’essai Symplicity Hypertension 3 (HTN-3) a entravé l’application du RDN7, transformant le RDN en une thérapie controversée. Néanmoins, la perspective de RDN n’a pas encore été exclue. Des essais cliniques récents, dont RADIANCE-HTN SOLO, SPYRAL HTN-OFF MED/ON MED et SPYRAL HTN-OFF MED Pivotal, ont confirmé l’efficacité du RDN sur l’hypertension 8,9,10,11,12. Ainsi, des recherches mécanistiques plus détaillées doivent être effectuées pour explorer les effets du RDN.
Le but global de cette étude est de démontrer comment le RDN chez la souris peut être modifié pour produire une chirurgie plus simple et plus stable. Un grand nombre d’expériences ont étudié diverses approches de RDN, telles que la cryoablation intravasculaire, l’échographie extracorporelle et l’application locale d’un produit chimique ou d’une neurotoxine dans différents modèles animaux 13,14,15,16,17. Le modèle RDN généré par ablation chimique au phénol est un modèle expérimental bien établi pour étudier la pathogenèse de l’activation sympathique sur l’hypertension. Ce modèle est généré par corrosion chimique des nerfs sympathiques rénaux avec une solution de phénol/éthanol à 10% à l’aide d’un coton-tige18. D’une part, le RDN conventionnel inhibe potentiellement l’activité sympathique rénale, ce qui diminue alors la sécrétion de rénine et la réabsorption de sodium, et augmente le flux sanguin rénal. D’autre part, il supprime le système rénine-angiotensine-aldostérone19. Ainsi, RDN a un effet bénéfique sur l’hypertension. Cependant, le modèle RDN généré par ablation chimique manque de critères d’ablation et de temps d’ablation et les détails de la procédure expérimentale ne sont pas encore clairs. De plus, aucun rapport technique n’est disponible. Dans ce rapport, nous décrivons un protocole chirurgical pour la génération d’un modèle RDN avec du phénol en utilisant du papier de pesée dans l’hypertension induite par l’angiotensine II (Ang II) chez des souris C57BL / 6. Nous enveloppons l’artère rénale avec du papier de pesée contenant du phénol et unifions le temps d’ablation, ce qui aide à établir un modèle RDN plus reproductible et fiable. Ce modèle expérimental vise à évaluer l’effet des RDN sur l’hypertension.

<table><tbody><tr><td>Angiotensine II</td><td>Sangon Biotech</td><td>CAS :4474-91-3</td><td>Pour faire un modèle d’animol hypertensif</td></tr><tr><td>Anticorps anti-tyrosine hydroxylase</td><td>Abcam</td><td>ab137869</td><td>Pour évaluer l’expression de TH des nerfs rénaux Analyse de la</td></tr><tr><td>pression artérielle</td><td>Visitech Systems</td><td>BP-2000</td><td>Mesurer la pression artérielle des souris</td></tr><tr><td>Mini-pompe osmotique</td><td>DURECT Corporation</td><td>CA 95014</td><td>Pour remplir avec de l’angiotensine II</td></tr><tr><td>Norepinephrine ELISA</td><td>Kit Abcam</td><td>ab287789</td><td>pour mesurer les niveaux de noradrénaline rénale</td></tr><tr><td>Phenol</td><td>Sangon Biotech</td><td>CAS :108-95-2</td><td>Endommager le nerf sympathique rénal</td></tr><tr><td>Papier pesée Sangon</td><td>Biotech</td><td>F512112</td><td>Pour détruire le nerf rénal avec du papier de pesée immergé dans du phénol ; https://www.sangon.com/productDetail?productInfo.code=F512112.&nbsp ;</td></tr></tbody></table>

l’amélioration de la dénervation rénale a atténué l’hypertension induite par la perfusion d’angiotensine ii

Improved Renal Denervation Mitigated Hypertension Induced by Angiotensin II Infusion

Les bénéfices de la dénervation sympathique rénale (RDN) sur la pression artérielle ont été prouvés dans un grand nombre d’essais cliniques au cours des dernières années. Cependant, le mécanisme de régulation de la RDN sur l’hypertension reste insaisissable. Il est donc essentiel d’établir un modèle RDN plus simple chez la souris. Dans cette étude, des mini-pompes osmotiques remplies d’angiotensine II ont été implantées chez des souris C57BL/6 âgées de 14 semaines. Une semaine après l’implantation de la mini-pompe osmotique, une procédure RDN modifiée a été réalisée sur les artères rénales bilatérales des souris à l’aide de phénol. Les souris appariées selon l’âge et le sexe ont reçu une solution saline et ont servi de groupe fictif. La pression artérielle a été mesurée au départ et chaque semaine par la suite pendant 21 jours. Ensuite, l’artère rénale, l’aorte abdominale et le cœur ont été prélevés pour un examen histologique à l’aide de la coloration H & E et Masson. Dans cette étude, nous présentons un modèle RDN simple, pratique, reproductible et standardisé, qui peut contrôler l’hypertension et soulager l’hypertrophie cardiaque. La technique peut dénerver les nerfs sympathiques rénaux périphériques sans endommager les artères rénales. Par rapport aux modèles précédents, le RDN modifié facilite l’étude de la pathobiologie et de la physiopathologie de l’hypertension.

Statistiques Toutes les données sont exprimées sous forme de moyenne ± d’écart-type. L’ANOVA unidirectionnelle a été utilisée pour des expériences avec trois conditions ou plus, suivies de tests post-hoc de Bonferroni pour les comparaisons entre les groupes individuels. Considérez une valeur de p égale ou inférieure à 0,05 comme significative. Un logiciel commercial a été utilisé pour effectuer toutes les analyses statistiques.
L’augmentation de la pression artériel...

Nous présentons ici un protocole de dénervation sympathique rénale (RDN) chez les souris souffrant d’hypertension induite par la perfusion d’angiotensine II. La procédure est reproductible, pratique et permet d’étudier les mécanismes de régulation des RDN sur l’hypertension et l’hypertrophie cardiaque.

L’amélioration de la dénervation rénale a atténué l’hypertension induite par la perfusion d’angiotensine II

The benefits of renal sympathetic denervation (RDN) on blood pressure have been proved in a large number of clinical trials in recent years. However, the ...

La dénervation sympathique rénale est un traitement potentiel de l’hypertension, qui a été prouvé par de nombreux essais cliniques. Cette technique dénerve les nerfs rénaux à écoulement libre sans endommager les artères rénales. De plus, c’est un modèle simple, critique, reproductible et standardisé.La démonstration de la procédure sera assurée par Ming Wang, un assistant de laboratoire de mon laboratoire. Commencez par désinfecter la table d’opération avec de l’éthanol à 70%, puis réglez la température du coussin chauffant à 37 degrés Celsius. Avant la chirurgie, stérilisez tous les instruments chirurgicaux, y compris les ciseaux microchirurgicaux, les pinces droites fines, les pinces fines incurvées, les pinces hémostatiques, les gazes stériles et le papier de pesée à 121 degrés Celsius pendant 30 minutes.Après avoir anesthésié une souris C57BKL/6 mâle âgée de 14 semaines, retirez les poils sur le dos avec un rasoir, puis appliquez une pommade vétérinaire sur les yeux pour éviter la sécheresse. Placez la souris sur une table d’opération en position dorsale. Glisser et essuyer la zone rasée avec de la povidone iodée, suivie de trois lingettes avec de l’éthanol à 70%.À l’aide d’une lame de scalpel stérile, faites une incision d’un centimètre perpendiculaire à la queue derrière l’oreille au-dessus de l’omoplate de la patte avant. Ensuite, utilisez un hémostatique stérile pour créer un tunnel sous-cutané sous la peau et créer une poche pour la pompe. Insérez doucement une pompe osmotique remplie d’angiotensine II dans la poche, en assurant suffisamment d’espace libre pour suturer la plaie sans étirer la peau.Suturer le muscle avec des sutures en Vicryl 6-0 interrompues et fermer la peau avec des sutures en nylon 4-0 interrompues. Ensuite, écouvillonnez et essuyez le site de la plaie avec de la povidone iodée. Placez tous les instruments chirurgicaux dans un stérilisateur pendant 10 secondes et replacez les gants stériles entre les chirurgies.Surveillez la souris jusqu’à ce qu’elle soit complètement rétablie. Surveillez de près et observez la cicatrisation des plaies au moins deux fois par jour pendant la première semaine et une fois par jour par la suite, y compris la rougeur, l’enflure et l’infection. Effectuer la dissection immédiatement si la souris meurt pendant la perfusion d’angiotensine II.Mesurer la pression artérielle au départ et chaque semaine après la perfusion d’angiotensine II avec la méthode de pléthysmographie du brassard de queue chez des souris conscientes. Une semaine après la perfusion d’angiotensine II, sélectionnez les souris présentant une pression artérielle élevée et notez leur poids. Choisissez des animaux d’un poids minimum de 24 grammes pour la chirurgie de dénervation rénale.Ensuite, retirez les poils sur l’abdomen d’une souris anesthésiée avec un rasoir, puis placez la souris sur la table d’opération. Maintenez l’abdomen en place et fixez les membres avec du ruban adhésif. Désinfecter la peau abdominale avec de la povidone iodée, suivie de trois lingettes avec 70% d’éthanol.Après avoir pratiqué une incision abdominale médiane ventrale de deux centimètres, tirez l’intestin vers l’arrière avec de la gaze imbibée d’une solution saline de 37 degrés Celsius pour exposer l’artère rénale gauche. Soigneusement, mais franchement, disséquez la graisse loin de l’artère rénale à l’aide d’une pince à épiler incurvée. À l’aide de ciseaux tranchants stériles, coupez le papier de pesée en un rectangle de la même taille que l’artère rénale.Coupez plusieurs morceaux de papier de pesée à la fois pour garder la même forme. Trempez le papier de pesage dans une solution d’éthanol à 10 % de phénol pendant au moins 30 secondes. Couvrez la surface de l’artère rénale gauche et enveloppez le vaisseau avec le papier de pesée pendant deux minutes.Utilisez de la gaze pour protéger les tissus environnants afin d’éviter que le papier de pesée ne touche les reins et l’intestin. Répétez la même procédure pour l’artère rénale droite. Après la chirurgie, repositionnez les muscles dans leur position initiale et fermez le péritoine avec des sutures en Vicryl 6-0 dans un schéma de suture interrompu, puis fermez la peau avec des sutures en nylon 4-0 interrompues.Surveillez toutes les souris jusqu’à ce qu’elles soient complètement rétablies. Une augmentation significative de la pression artérielle systolique a été observée une semaine après la perfusion d’angiotensine II. Le groupe de dénervation sympathique rénale, ou RDN, angiotensine II a montré une réduction significative de la pression artérielle systolique par rapport au groupe angiotensine II simulée 21 jours après la procédure RDN.Aucune différence significative n’a été observée entre les groupes placebo et RDN deux semaines après la procédure RDN. La coloration à l’hématoxyline et à l’éosine du nerf sympathique rénal et de l’artère rénale est illustrée ici. Aucun épaississement de la couche intima de l’artère rénale n’a été observé dans les quatre groupes.Par rapport au groupe des noyaux fictifs, fragmentés et pyknotiques, la digestion et le gonflement du tissu endoneurial ont été observés dans les deux groupes RDN. L’immunohistochimie des faisceaux nerveux a révélé que l’expression de la tyrosine hydroxylase était significativement diminuée dans le groupe RDN et RDN angiotensine II par rapport aux deux groupes simulés. La teneur en noradrénaline corticale rénale dans les reins dénervés dans le groupe normotendus et hypertendu a été significativement réduite par rapport au rein innervé.La coloration de Masson n’a montré aucune augmentation remarquable de l’intima media de l’aorte abdominale parmi les groupes. Des images représentatives du myocarde dans différents groupes sont présentées ici. L’hypertrophie cardiaque induite par la perfusion d’angiotensine II a été améliorée par le traitement RDN par la diminution de la fibrose interstitielle et de la taille des cardiomyocytes.Pendant la procédure, ne touchez pas le phénol aux tissus environnants, sauf à l’artère rénale, car il peut provoquer une obstruction intestinale, une infection abdominale et une sténose de l’artère rénale. Cette méthode peut établir un modèle RDN standardisé pour aider à étudier les mécanismes qui contrôlent l’hypertension. Les applications futures de cette technique peuvent contribuer à élargir les voies qui sous-tendent le processus d’hypertension et d’hypertrophie cardiaque.

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Cette vidéo montre une procédure de dénervation sympathique de l’artère rénale dans un modèle de souris hypertensive induite par l’angiotensine II, utilisant du phénol pour perturber la fonction nerveuse sympathique et réduire la pression artérielle.

Dénervation sympathique des artères rénales dans un modèle murin d’hypertension induite par l’angiotensine II

Une méthode en deux étapes pour établir l'insuffisance rénale chronique (IRC) chez le rat Lewis par l'ablation chirurgicale 5/6e de la masse rénale est décrite. Combinaison de la procédure chirurgicale, NOS-inhibition et une alimentation riche en sel conduit à un modèle ressemblant CKD humaine, permettant l'étude des mécanismes et le développement de nouvelles interventions thérapeutiques causales.

5/6e néphrectomie en association avec High Salt Diet Nitric Oxide Synthase et inhibition pour provoquer la maladie rénale chronique chez le rat Lewis

Anesthésiés souris présentent artérielle systémique non physiologiques, qui s’oppose à une évaluation pertinente de tonus autonome étant donné la relation intime entre la pression artérielle et le système nerveux autonome. Ainsi, une nouvelle méthode pour l’activité nerveuse sympathique rénale en même temps record et la pression artérielle avec une perfusion intraveineuse chez des souris conscientes est exposée.

Nouvelle approche pour l’enregistrement simultané de l’activité nerveuse sympathique rénale et de la pression artérielle avec une perfusion intraveineuse, conscients, souris sans retenue.

Un modèle murin Goldblatt modifié à 2 reins 1 clip (2K1C) a été développé en utilisant des tubes en polyuréthane pour initier une sténose de l’artère rénale, induisant une augmentation de l’expression de la rénine et des lésions rénales. Ici, nous décrivons une procédure détaillée de préparation et de placement du brassard sur l’artère rénale pour générer un modèle murin 2K1C reproductible et cohérent.

Un modèle modifié de régulation de la rénine dans la sténose de l’artère rénale

Ici, nous présentons un protocole décrivant la pharmacologie du réseau et les techniques d’amarrage moléculaire pour explorer le mécanisme d’action de Jiawei Shengjiang San (JWSJS) dans le traitement de la néphropathie diabétique.

Effet antagoniste de Jiawei Shengjiang San sur un modèle de rat de néphropathie diabétique : lié à la voie de signalisation EGFR/MAPK3/1

La dénervation rénale (RDN) médiée par l’ozone guidée par TDM par l’injection d’un mélange de gaz O2-O 3 autour des ganglions lombaires réduit le fardeau des médicaments antihypertenseurs et permet d’améliorer le taux de contrôle de la pression artérielle à domicile. Nous présentons une nouvelle technique de RDN simplifiée, unilatérale et sans contraste qui minimise les lésions de l’artère rénale dans le traitement des patients atteints d’hypertension artérielle résistante (HR).

Amélioration du contrôle de la pression artérielle à domicile par la dénervation rénale médiée par l’ozone guidée par TDM pour les patients souffrant d’hypertension résistante

Hypertension oculaire chronique est induite en utilisant la photocoagulation au laser du trabéculum dans les yeux de souris. La pression intraoculaire (PIO) est élevée pendant plusieurs mois après le traitement au laser. La diminution de l'acuité visuelle et la sensibilité au contraste des animaux expérimentaux sont surveillés en utilisant le test optomoteur.

Un modèle de souris induite par laser de l&#39;hypertension oculaire chronique pour caractériser les défauts d&#39;apparence

Le modèle de la section du nerf tibial est un modèle bien toléré, validé et reproductible de l'atrophie du muscle squelettique. Le protocole chirurgical de modèle est décrit et démontré dans C57Black6 souris.

Tibial Nerve Transection - un modèle standardisé pour dénervation induit l&#39;atrophie musculaire chez les souris

Le degré de dysfonction vasculaire et contribuer mécanismes physiologiques peut être évaluée chez les patients atteints de maladie rénale chronique par la mesure de la dilatation de l'artère brachiale médiée par le flux, la vitesse des ondes de pulsation aortique et vasculaire endothéliale expression de la protéine de la cellule.

L&#39;évaluation de la fonction vasculaire chez les patients atteints de maladie rénale chronique

Un dysfonctionnement hémodynamique précoce est essentiel au développement de la maladie rénale. Pourtant, les méthodologies de détection sont limitées. Les progrès récents de l’échographie offrent une option non invasive et précise pour la détection précoce des lésions rénales. Cette étude décrit une méthodologie échographique étape par étape pour détecter le dysfonctionnement rénal à l’aide d’un modèle de néphrotoxicité induite par un médicament chez le rat.

Détection précoce du médicament-Induced rénale hémodynamique Dysfonction Utilisation de échographique Technology chez le rat

Découvrez la dénervation sympathique rénale chez la souris pour étudier l'hypertension et l'hypertrophie cardiaque induites par l'angiotensine II. Cette méthode standardisée permet d'explorer les mécanismes de régulation nerveuse sans lésion artérielle.

L’amélioration de la dénervation rénale a atténué l’hypertension induite par la perfusion d’angiotensine II

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