November 3rd, 2023
Ce protocole décrit une méthode d’acquisition synchrone et de co-enregistrement d’événements de signalisation intracellulaire et de sécrétion d’insuline et de glucagon par des pseudo-îlots humains primaires en utilisant l’administration adénovirale d’un biocapteur d’adénosine monophosphate cyclique (AMPc), d’un détecteur de différence d’AMPc in situ (cADDis) et d’un système de micropérifusion.
Notre laboratoire s’efforce de comprendre, de prévenir et d’inverser le dysfonctionnement des cellules bêta et d’autres anomalies des paupières dans le diabète de type 1 et de type 2. Nos études se concentrent sur la pathogenèse du diabète humain en intégrant des études de la biologie du pancréas et des paupières humaines ainsi que de la santé et de la maladie. Les œillets humains sont des structures sphériques 3D, et l’accès aux cellules dans l’ensemble de l’œillet présente certains défis expérimentaux.
Par exemple, lorsque nous essayons d’introduire des biocapteurs pour comprendre la signalisation des cellules de l’œillet, notre protocole de pseudo-paupière surmonte ce défi en effectuant des manipulations génétiques à l’état de cellule unique et en agrégeant ces cellules humaines transduites en pseudo-paupières pour des études en aval. Notre système de pseudo-paupières nous permet d’exprimer des biocapteurs sur l’ensemble de l’œillet, plutôt que sur la surface de la paupière. Combiné à notre système d’imagerie des cellules vivantes et de microperfusion, nous pouvons à la fois mesurer et co-enregistrer les processus intracellulaires dynamiques avec la sécrétion hormonale en aval.
Ce protocole pourrait être appliqué pour répondre à une variété de questions scientifiques importantes. Par exemple, les stratégies de silençage génique pourraient être combinées à cette approche pour comprendre l’impact d’un gène d’intérêt sur la fonction des paupières et les voies de signalisation associées, soit globalement, soit de manière auto-spécifique.
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Cette étude aborde la dysfonction des cellules bêta et les anomalies des îlots dans le diabète, en utilisant un système modèle de pseudo-îlots pour l'acquisition synchrone de la signalisation cellulaire et de la sécrétion hormonale. La méthode emploie la livraison adénovirale d'un biocapteur de cAMP et un système de micropériffusion pour permettre une analyse dynamique des réponses à l'insuline et au glucagon.
The human pseudoislet system enables synchronous, quantitative assessment of intracellular signaling and hormone secretion in primary human islet cells, addressing a critical bottleneck in diabetes target validation. By allowing genetic manipulation and biosensor integration throughout the 3D islet structure, this platform enhances predictive confidence in mechanistic studies and supports risk-adjusted portfolio decisions in metabolic disease research. Its integration of live-cell imaging and microperifusion workflows positions it as a reusable capability for early discovery and translational research pipelines.
This system bridges early discovery, target validation, and preclinical research by enabling hypothesis-driven interrogation of islet signaling and function in a single workflow.