July 12th, 2024
Nous décrivons un protocole de xénotransplantation dans le jaune d’embryons de poisson-zèbre transparent qui est optimisé par une méthode de stadification simple et rapide. Les analyses post-injection comprennent la survie et l’évaluation de la charge de morbidité des cellules xénotransplantées par cytométrie en flux.
Nous cherchons à obtenir des connaissances moléculaires sur le contrôle de l’hématopoïèse normale et maligne, puis à exploiter ces connaissances pour développer de nouvelles thérapies pour le traitement des cancers du sang. Les xénogreffes tumorales sont un outil indispensable pour évaluer l’impact d’une altération génétique ou d’un traitement sur le comportement tutumeur. Cependant, les xénogreffes de souris sont coûteuses, longues et de portée limitée.
L’utilisation du poisson-zèbre pour la xénotransplantation tumorale permet de surmonter tous ces inconvénients. Dans ce protocole, nous démontrons un processus de montage facile et rapide pour la xénotransplantation, ce qui augmente le débit. Nous utilisons en outre la coloration cellulaire pour connaître la qualité de l’inoculum, puis la cytométrie en flux pour évaluer la progression tumorale en évaluant ou en quantifiant la charge de la maladie.
Nous avons l’intention d’utiliser cette approche pour identifier de nouvelles façons de bloquer la fonction de la cascade de kinases Ras/MAP, qui est à l’origine de la grande majorité des cancers humains. Et nous le ferons non pas en essayant de bloquer l’activité catalytique de la cascade kinase Ras/MAP, mais plutôt en empêchant sa capacité à phosphoryler les substrats cancérigènes qu’elle modifie.
Ce protocole décrit une méthode de xénotransplantation dans le jaune d'œuf d'embryons de poisson zèbre transparents, utilisant une technique de mise en scène rapide. L'étude comprend des analyses post-injection pour évaluer la survie cellulaire et la charge de la maladie par cytométrie en flux.
Rapid xenotransplantation analysis in transparent zebrafish embryos enables high-throughput, cost-effective in vivo tumor modeling for early-stage oncology discovery. This approach accelerates hypothesis testing and disease burden quantification, supporting predictive confidence in target validation and mechanistic de-risking. The method's scalability and quantitative outputs position it as a valuable asset for portfolio triage and preclinical decision-making.
This zebrafish xenotransplantation method integrates into the discovery-to-preclinical continuum, bridging early target validation, lead identification, and translational research.