15 mars 2024
Nous décrivons un protocole d’extraction de noyaux de haute qualité à partir de cellules souches pluripotentes induites cryopréservées, de types de cellules stromales/endothéliales et de cellules sanguines dérivées de cellules souches pluripotentes induites afin de soutenir les analyses de séquençage de nouvelle génération à noyau unique. La production de noyaux intacts de haute qualité est impérative pour les expériences multiomiques, mais peut constituer une barrière à l’entrée sur le terrain pour certains laboratoires.
Mon laboratoire étudie les gènes et les mécanismes qui affectent la formation des cellules sanguines. Nous produisons des cellules sanguines à partir de cellules souches pluripotentes induites par l’homme, et nous voulons le faire plus efficacement pour soutenir la production à l’échelle clinique de thérapies cellulaires adaptées à des patients spécifiques. Nous utilisons des modalités de génomique unicellulaire pour identifier des modèles d’expression génique et d’autres facteurs qui peuvent aider à soutenir la formation des cellules sanguines.
L’un des principaux défis de la production de cellules sanguines in vitro est qu’elle est coûteuse et inefficace. Nous utilisons des approches génétiques pour résoudre ce problème. Nous voulons utiliser des indices de la génétique humaine et de l’hématopoïèse in vivo pour guider les améliorations que nous apportons au système in vitro.
Nous essayons d’utiliser la génomique fonctionnelle et l’analyse de noyaux uniques pour faire progresser le domaine en termes d’identification des gènes et des réseaux de signalisation qui entraînent la formation des bons types de cellules sanguines in vitro. La création d’un ensemble de données multi-omiques de haute qualité nous a permis de découvrir les facteurs de transcription, l’énergie et la machinerie régulière qui pilotent la différenciation in vitro des cellules sanguines. Nous utilisons ces données pour comprendre les données génétiques humaines telles que les loci et les facteurs incertains qui sont à l’origine de la différenciation que nous n’avons pas été en mesure de voir auparavant.
Nous sommes très enthousiastes à l’idée de tirer parti des informations de ces ensembles de données multimodales que nous avons pu générer sur la base de l’isolement de noyaux de haute qualité. Nous avons l’intention de concentrer nos études futures sur les gènes et les mécanismes de développement qui peuvent produire des types de cellules sanguines, à l’échelle clinique in vitro.
Cet article présente un protocole d'extraction de noyaux de haute qualité à partir de cellules souches pluripotentes induites cryopréservées, dérivées de types cellulaires stromaux/endothéliaux et sanguins. Ce processus est essentiel pour faciliter les analyses de séquençage nucléaire de nouvelle génération, cruciales pour les expériences multiomiques.
L'isolement de noyaux de haute qualité à partir de cellules sanguines dérivées de CIPi congelées est essentiel pour permettre des analyses multiomiques robustes au niveau du noyau unique, influant directement sur la validation des cibles et la réduction des risques mécanistiques dans le domaine de la découverte hématopoïétique. Cette capacité renforce la confiance prédictive dans l'interrogation des gènes et des voies biologiques, facilitant l'avancement ajusté au risque des candidats aux thérapies cellulaires. Une extraction fiable de noyaux à partir de divers types cellulaires assure la continuité translationnelle et l'extensibilité du portefeuille pour les thérapeutiques sanguines de nouvelle génération.
Ce protocole d'isolement nucléaire s'intègre à l'interface entre la phase initiale de découverte et la recherche préclinique, permettant une transition fluide entre la génomique orientée par des hypothèses et la validation translationnelle dans des systèmes de cellules sanguines dérivées de cellules souches pluripotentes induites (iPSC).