Name: Livraison de nanoparticules d’une charge utile d’oligonucléotide dans un modèle animal de glioblastome multiforme (Vidéo) | JoVE Journal
Uploaded: 2024-09-27T13:45:00.000+00:00
Duration: 9 min 2 s
Description: Découvrez la livraison de nanoparticules d'oxyde de fer traversant la barrière hémato-encéphalique pour cibler les tumeurs de glioblastome. Cette plateforme améliore l'accumulation thérapeutique et offre une stratégie prometteuse pour le traitement du cancer cérébral.

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<meta charset="utf8"></head><body>Nanoparticules d’oxyde de fer pour l’administration d’un traitement guidé par l’image dans le glioblastome murin

<ol><li>Tan, A. C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Management+of+glioblastoma%3A+State+of+the+art+and+future+directions%5BTitle%5D)+AND+%22CA+Cancer+J+Clin%22%5BJournal%5D)">Management of glioblastoma: State of the art and future directions.</a> CA Cancer J Clin. 70 (4), 299-312 (2020).</li>
<li>Cihoric, N., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Current+status+and+perspectives+of+interventional+clinical+trials+for+glioblastoma+-+analysis+of+clinicaltrials.Gov%5BTitle%5D)+AND+%22Radiat+Oncol%22%5BJournal%5D)">Current status and perspectives of interventional clinical trials for glioblastoma - analysis of clinicaltrials.Gov.</a> Radiat Oncol. 12 (1), 1(2017).</li>
<li>Lee, S. Y. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Temozolomide+resistance+in+glioblastoma+multiforme%5BTitle%5D)+AND+%22Genes+Dis%22%5BJournal%5D)">Temozolomide resistance in glioblastoma multiforme.</a> Genes Dis. 3 (3), 198-210 (2016).</li>
<li>Dong, X. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Current+strategies+for+brain+drug+delivery%5BTitle%5D)+AND+%22Theranostics%22%5BJournal%5D)">Current strategies for brain drug delivery.</a> Theranostics. 8 (6), 1481-1493 (2018).</li>
<li>Teleanu, D. M., Chircov, C., Grumezescu, A. M., Volceanov, A., Teleanu, R. I. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Blood-brain+delivery+methods+using+nanotechnology%5BTitle%5D)+AND+%22Pharmaceutics%22%5BJournal%5D)">Blood-brain delivery methods using nanotechnology.</a> Pharmaceutics. 10 (4), 268(2018).</li>
<li>Ohta, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Investigating+the+optimum+size+of+nanoparticles+for+their+delivery+into+the+brain+assisted+by+focused+ultrasound-induced+blood-brain+barrier+opening%5BTitle%5D)+AND+%22Sci+Rep%22%5BJournal%5D)">Investigating the optimum size of nanoparticles for their delivery into the brain assisted by focused ultrasound-induced blood-brain barrier opening.</a> Sci Rep. 10 (1), 18220(2020).</li>
<li>Teplyuk, N. M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Therapeutic+potential+of+targeting+microrna-10b+in+established+intracranial+glioblastoma%3A+First+steps+toward+the+clinic%5BTitle%5D)+AND+%22EMBO+Mol+Med%22%5BJournal%5D)">Therapeutic potential of targeting microrna-10b in established intracranial glioblastoma: First steps toward the clinic.</a> EMBO Mol Med. 8 (3), 268-287 (2016).</li>
<li>Dube, T., Kumar, N., Bishnoi, M., Panda, J. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Dual+blood-brain+barrier-glioma+targeting+peptide-poly%28levodopamine%29+hybrid+nanoplatforms+as+potential+near+infrared+phototheranostic+agents+in+glioblastoma%5BTitle%5D)+AND+%22Bioconjug+Chem%22%5BJournal%5D)">Dual blood-brain barrier-glioma targeting peptide-poly(levodopamine) hybrid nanoplatforms as potential near infrared phototheranostic agents in glioblastoma.</a> Bioconjug Chem. 32 (9), 2014-2031 (2021).</li>
<li>Yoo, B., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Design+of+nanodrugs+for+mirna+targeting+in+tumor+cells%5BTitle%5D)+AND+%22J+Biomed+Nanotechnol%22%5BJournal%5D)">Design of nanodrugs for mirna targeting in tumor cells.</a> J Biomed Nanotechnol. 10 (6), 1114-1122 (2014).</li>
<li>Medarova, Z., Pham, W., Farrar, C., Petkova, V., Moore, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((In+vivo+imaging+of+sirna+delivery+and+silencing+in+tumors%5BTitle%5D)+AND+%22Nature+Medicine%22%5BJournal%5D)">In vivo imaging of sirna delivery and silencing in tumors.</a> Nature Medicine. 13 (3), 372-377 (2007).</li>
<li>Chen, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Co-administration+of+temozolomide+%28tmz%29+and+the+experimental+therapeutic+targeting+mir-10b%2C+profoundly+affects+the+tumorigenic+phenotype+of+human+glioblastoma+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Front+Mol+Biosci%22%5BJournal%5D)">Co-administration of temozolomide (tmz) and the experimental therapeutic targeting mir-10b, profoundly affects the tumorigenic phenotype of human glioblastoma cells.</a> Front Mol Biosci. 10, 1179343(2023).</li>
<li>Irtenkauf, S. M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Optimization+of+glioblastoma+mouse+orthotopic+xenograft+models+for+translational+research%5BTitle%5D)+AND+%22Compar+Med%22%5BJournal%5D)">Optimization of glioblastoma mouse orthotopic xenograft models for translational research.</a> Compar Med. 67 (4), 300-300 (2017).</li>
<li>Moore, A., Marecos, E., Bogdanov, A., Weissleder, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Tumoral+distribution+of+iron+oxide+nanoparticles+in+a+rodent+model%5BTitle%5D)+AND+%22Radiology%22%5BJournal%5D)">Tumoral distribution of iron oxide nanoparticles in a rodent model.</a> Radiology. 214 (2), 568-574 (2000).</li>
<li>Moore, A., Medarova, Z., Potthast, A., Dai, G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((In+vivo+targeting+of+underglycosylated+muc-1+tumor+antigen+using+a+multimodal+imaging+probe%5BTitle%5D)+AND+%22Cancer+Res%22%5BJournal%5D)">In vivo targeting of underglycosylated muc-1 tumor antigen using a multimodal imaging probe.</a> Cancer Res. 64 (5), 1821-1827 (2004).</li>
<li>Yoo, B., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Therapy+targeted+to+the+metastatic+niche+is+effective+in+a+model+of+stage+iv+breast+cancer%5BTitle%5D)+AND+%22Sci+Rep%22%5BJournal%5D)">Therapy targeted to the metastatic niche is effective in a model of stage iv breast cancer.</a> Sci Rep. 7, 45060(2017).</li>
<li>Dadfar, S. M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Iron+oxide+nanoparticles%3A+Diagnostic%2C+therapeutic+and+theranostic+applications%5BTitle%5D)+AND+%22Adv+Drug+Deliv+Rev%22%5BJournal%5D)">Iron oxide nanoparticles: Diagnostic, therapeutic and theranostic applications.</a> Adv Drug Deliv Rev. 138, 302-325 (2019).</li>
</ol>

<table><tbody><tr><td>Souris nues athymiques « J :NU »</td><td>Jackson Laboratory</td><td>RRID :IMSR_JAX :007850</td><td>Modèle de souris immunodéprimées</td></tr><tr><td>0,25 % Trypsine</td><td>Gibco</td><td>25200-056</td><td>Réactif de culture cellulaire pour U251</td></tr><tr><td>Tube de microcentrifugeuse de 1,7 mL</td><td>DOT Scientific</td><td>RN1700-GMT</td><td>Pour le prélèvement de tissus</td></tr><tr><td>10 &micro ; L, Seringue Neuros, Modèle 1701 RN, calibre 33, Point Style 4</td><td>Hamilton</td><td>65460-06</td><td>Seringue pour implantation intracrânienne de cellules tumorales</td></tr><tr><td>3M Vetbond</td><td>3M</td><td>1469SB</td><td>Adhésif tissulaire pour fermeture du site chirurgical</td></tr><tr><td>4 % Paraformaldéhyde&nbsp ;</td><td>Thermo Scientific</td><td>J199943-K2</td><td>Solution de fixation</td></tr><tr><td>tissulaire Lingette à base d’alcool isopropoylique à 70 %</td><td>Cardinal</td><td>MW-APL</td><td>Lingette antiseptique topique pour l’implantation tumorale et l’injection de veine caudale</td></tr><tr><td>Aperio Versa</td><td>Leica</td><td></td><td>Pour le balayage de lames de coupe de tissu colorées</td></tr><tr><td>Bétadine Surgical Scrub</td><td>Purdue</td><td>6761815101</td><td>Antiseptique topique pour l’implantation d’une</td></tr> <tr><td>tumeurBioSpec 70/30</td><td>Bruker</td><td></td><td>Scanner d’imagerie par résonance magnétique</td></tr><tr><td>Cire osseuse</td><td>Medline DYNJBW25</td><td></td><td>Cire osseuse pour scellement du site d’implantation</td></tr><tr><td>Fraises pour micro-foret</td><td>F.S.T.</td><td>19007-05</td><td>Fraise de forage utilisée pour faire un trou dans le crâne pour l’implantation tumorale</td></tr><tr><td>DAPI Fluoromount-G</td><td>SouthernBiotech</td><td>0100-20</td><td>Milieu de montage tissulaire contenant la coloration DAPI</td></tr><tr><td>Dulbecco' s Modified Eagle Medium (DMEM)</td><td>Gibco</td><td>11995-065</td><td>Milieux de culture cellulaire pour U251</td></tr><tr><td>Extra-Fine Graefe Forceps</td><td>F.S.T.</td><td>11150-10</td><td>Outil sugical pour l’implantation tumorale</td></tr><tr><td>Sérum fœtal bovin</td><td>Corning</td><td>35-010-CV</td><td>Complément de milieu de culture cellulaire pour U251</td></tr><tr><td>Ciseaux fins - Sharp 10.5cm</td><td>F.S.T.</td><td>14060-10</td><td>Outil sugical pour l’implantation tumorale</td></tr><tr><td>Glydo (Lidocaïne)</td><td>Sagent</td><td>673-76</td><td>Analgésique topique pour site chirurgical</td></tr><tr><td>Ideal Micro Drill</td><td>CellPoint Scientific</td><td>67-1200A</td><td>Foret utilisé pour faire un trou dans le crâne pour l’implantation d’une tumeur</td></tr><tr><td>Seringue à insuline 1CC 29G X 1/2"</td><td>Becton, Dickinson</td><td>324704</td><td>Seringue pour injection de D-Luciférine et injection dans la veine de la queue nanoparticules</td></tr><tr><td>Isoflurane</td><td>Covetrus</td><td>11695067772</td><td>Anethesia</td></tr><tr><td>Vaporisateur d’isoflurane</td><td>SOMNI Scientific</td><td>VS6002</td><td>Appareil d’anesthésie</td></tr><tr><td>IVIS SpectrumCT Système d’imagerie in vivo</td><td>PerkinElmer/Revvity</td><td>128201</td><td>Scanner d’imagerie par bioluminescence et fluorescence</td></tr><tr><td>IVISbrite D-Luciferin Sel de potassium</td><td>PerkinElmer/Revvity</td><td>122799-100MG</td><td>Substrat pour l’imagerie par bioluminescence</td></tr><tr><td>Ketaset (kétamine)</td><td>Zoetis</td><td>10004027</td><td>Anesthésique pour la chirurgie d’implantation tumorale</td></tr><tr><td>Ketofen (kétoprofène)</td><td>Zoetis</td><td>10004031</td><td>Analgésique pour la chirurgie d’implantation tumorale</td></tr><tr><td>Leica CM1950</td><td>Leica</td><td>CM1950</td><td>Pour la cryosection d’échantillons inclus dans l’OCT</td></tr><tr><td>PBS</td><td>Gibco</td><td>14190-144</td><td>Réactif de culture cellulaire et solution de suspension cellulaire pour l’implantation de U251</td></tr><tr><td>Pénicilline-streptomycine</td><td>Gibco</td><td>15140-122</td><td>Antibiotique pour milieux de culture cellulaire pour U251</td></tr><tr><td>Pommade vétérinaire Puralube</td><td>MWI Vétérinaire</td><td>27505</td><td>Pommade ophtalmique pour la protection lors de l’implantation de la tumeur</td></tr><tr><td>Règle</td><td>F.S.T.</td><td>18000-30</td><td>Utilisé pour mesurer le site de forage pour l’implanation</td></tr><tr><td>Tissue-Tek Cryomold&nbsp ; Intermédiaire 15 x 15 x 5 mm</td><td>Sakura</td><td>4566</td><td>Moule de collecte pour la collecte d’échantillons de tissus</td></tr><tr><td>Tissue-Tek&nbsp ;O.C.T. Compound</td><td>Sakura</td><td>4583</td><td>Composé de congélation pour la collecte d’échantillons de tissus</td></tr><tr><td>U-251 MG Lignée cellulaire humaine</td><td>Millapore Sigma</td><td>9063001</td><td>Lignée cellulaire de glioblastome humain</td></tr><tr><td>Solution injectable de xylazine, 100 mg/ml</td><td>Covetrus</td><td>1XYL006</td><td>Paralytique pour la chirurgie d’implantation tumorale</td></tr></tbody></table>

livraison de nanoparticules d’une charge utile d’oligonucléotide dans un modèle animal de glioblastome multiforme

Nanoparticle Delivery of an Oligonucleotide Payload in a Glioblastoma Multiforme Animal Model

MN-anti-miR10b a été synthétisé et caractérisé, comme décrit précédemment11. La microscopie électronique à transmission de MN-anti-miR10b montre la morphologie et la polydispersité de la nanoplateforme (Figure 1B). Cette nano-plate-forme a une taille moyenne de 25,12 ± 0,34 nm avec un potentiel zêta de 13,18 ± 1,47 mV (Figure 1C,D). Dans ces études, des souris athymiques nues ont été implantées orthotopiquement avec des cellules de glioblastome humain U251 selon le protocole décrit ci-dessus. Des injections systémiques intraveineuses de MN-anti-miR10b ont été effectuées à 20 mg Fe/kg. Les souris ont été euthanasiées et les tissus ont été prélevés 7 jours après la dose finale du nanomédicament. Les signaux de fluorescence et de bioluminescence Cy5.5 chez les souris injectées de MN-anti-miR10b ont montré une co-localisation claire (Figure 2A,B), indiquant l’administration des nanoparticules à la tumeur, tandis que les souris témoins n’ont montré aucun signal de fluorescence. L’imagerie par fluorescence ex vivo a montré la localisation des nanoparticules dans les principaux organes de clairance tels que le foie et les reins, ce qui est attendu pour ce type de nanoparticules (Figure 2C). Dans une étude distincte, des souris ont été implantées orthotopiquement avec des cellules GBM, comme ci-dessus, et soumises à une imagerie IRM in vivo. Des images pondérées T2* et des cartes T2* ont été obtenues avant l’administration des nanoparticules et 24 h après une dose unique de 20 mg Fe/kg. Une diminution caractéristique du signal IRM pondéré en T2 démontre le potentiel de MN-anti-miR10b en tant qu’agent de contraste IRM pour traverser la barrière hémato-encéphalique et son accumulation dans la région tumorale (Figure 3). Suite à l’imagerie in vivo, une microscopie à fluorescence a été réalisée pour vérifier davantage l’administration de nanoparticules à la tumeur. Comme décrit ci-dessus, les tissus ont été sectionnés et préparés pour la microscopie avec une coloration DAPI. Le signal de fluorescence Cy5.5 a été montré dans la région de la tumeur, confirmant l’administration (Figure 4).
<img alt="Figure 1" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/66986/66986fig01.jpg"> Graphique 1. Caractérisation de MN-anti-miR10b. (A) Une structure schématique d’un MN-anti-miR10b. La nanoplateforme se compose d’un noyau d’oxyde de fer recouvert de dextran, marqué avec un colorant optique Cy5.5 et conjugué à un oligonucléotide thérapeutique (anti-miR10b). Créé avec BioRender.com. (B) Microscopie électronique à transmission de MN-anti-miR10b. (C) La taille hydrodynamique de la construction est de 25,12 ± 0,34 nm. (D) Le potentiel zêta de MN-anti-miR10b est de 13,18 ± 1,47 mV. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/66986/66986fig01large.jpg" target="_blank">Veuillez cliquer ici pour voir une version agrandie de cette figure.</a>
<img alt="Figure 2" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/66986/66986fig02.jpg"> Graphique 2. Etudes in vivo et ex vivo en modèle GBM. (A) L’imagerie de bioluminescence in vivo (à gauche) et l’imagerie de fluorescence (à droite) montrent une co-localisation du signal des nanoparticules magnétiques dans la région tumorale. (B) L’imagerie ex vivo de la bioluminescence et de la fluorescence des cerveaux excisés confirme la co-localisation du signal. (C) La biodistribution des organes montre une accumulation vers les principaux organes clairsemés. B : Cerveau ; H : Cœur ; Lu : Poumons ; Li : Foie ; S : Rate ; K : Reins ; M : Muscle ; (n = 6 pour tous les groupes). <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/66986/66986fig02large.jpg" target="_blank">Veuillez cliquer ici pour voir une version agrandie de cette figure.</a>
<img alt="Figure 3" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/66986/66986fig03.jpg"> Graphique 3. In vivo IRM dans le modèle GBM. T2* (rangée du haut) et T2* (rangée du bas) obtenues avant (à gauche) et 24 h après l’injection (à droite) de MN-anti-miR10b. La diminution de l’intensité du signal dans l’image post-injection est indicative d’une accumulation d’oxyde de fer (n = 3). <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/66986/66986fig03large.jpg" target="_blank">Veuillez cliquer ici pour voir une version agrandie de cette figure.</a>
<img alt="Figure 4" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/66986/66986fig04.jpg"> Graphique 4. Microscopie à fluorescence ex vivo de tissus tumoraux. Des images microscopiques représentatives montrent l’accumulation de nanoparticules. Bleu - DAPI, Magenta - Cy5.5. Barre d’échelle = 100 μm ; (n = 6 pour tous les groupes). <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/66986/66986fig04large.jpg" target="_blank">Veuillez cliquer ici pour voir une version agrandie de cette figure.</a>

Livraison de nanoparticules d’une charge utile d’oligonucléotide dans un modèle animal de glioblastome multiforme

Glioblastoma multiforme (GBM) is the most common and aggressive form of primary brain malignancy for which there is no cure. The blood-brain barrier is a ...

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Perturbation de la barrière hémato-encéphalique induite par laser pour l’administration de liposomes dans un modèle murin de glioblastome

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Administration intraveineuse de nanoparticules thérapeutiques dans un modèle de glioblastome murin

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Administration intranasale de cellules souches neurales thérapeutiques (NSC) dans un modèle murin : une procédure d’administration ciblée sur la tumeur de NSC chargées de virus oncolytique dans un modèle de souris porteuse d’une tumeur cérébrale

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Découvrez la livraison de nanoparticules d'oxyde de fer traversant la barrière hémato-encéphalique pour cibler les tumeurs de glioblastome. Cette plateforme améliore l'accumulation thérapeutique et offre une stratégie prometteuse pour le traitement du cancer cérébral.

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