Name: Infection expérimentale de souris par le nématode parasite Strongyloides ratti (Vidéo) | JoVE Journal
Uploaded: 2025-01-17T13:50:00.000+00:00
Duration: 10 min 12 s
Description: Découvrez une méthode d'infection expérimentale par Strongyloides ratti chez la souris pour étudier les mécanismes immunitaires et la migration tissulaire des larves. Ce protocole permet de quantifier les parasites dans différents organes et d'analyser les différences sexuelles dans la réponse immunitaire intestinale.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

<meta charset="utf8"></head><body>Étude de l’infection à Strongyloides ratti chez des souris de laboratoire

<ol><li>Olsen, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Strongyloidiasis+-+the+most+neglected+of+the+neglected+tropical+diseases%5BTitle%5D)+AND+%22Trans+Royal+Soc+Tropical+Med+Hygiene%22%5BJournal%5D)">Strongyloidiasis - the most neglected of the neglected tropical diseases.</a> Trans Royal Soc Tropical Med Hygiene. 103 (10), 967-972 (2009).</li>
<li>Buonfrate, D., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+global+prevalence+of+Strongyloides+stercoralis+infection%5BTitle%5D)+AND+%22Pathogens%22%5BJournal%5D)">The global prevalence of Strongyloides stercoralis infection.</a> Pathogens. 9 (6), 468(2020).</li>
<li>Dawkins, H. J. S., Grove, D. I. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Attempts+to+establish+infections+with+Strongyloides+stercoralis+in+mice+and+other+laboratory+animals%5BTitle%5D)+AND+%22J+Helminthol%22%5BJournal%5D)">Attempts to establish infections with Strongyloides stercoralis in mice and other laboratory animals.</a> J Helminthol. 56 (1), 23-26 (1982).</li>
<li>Abraham, D., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Strongyloides+stercoralis%3A+protective+immunity+to+third-stage+larvae+inBALB%2FcByJ+mice%5BTitle%5D)+AND+%22Exp+Parasitol%22%5BJournal%5D)">Strongyloides stercoralis: protective immunity to third-stage larvae inBALB/cByJ mice.</a> Exp Parasitol. 80 (2), 297-307 (1995).</li>
<li>Breloer, M., Abraham, D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Strongyloides+infection+in+rodents%3A+immune+response+and+immune+regulation%5BTitle%5D)+AND+%22Parasitology%22%5BJournal%5D)">Strongyloides infection in rodents: immune response and immune regulation.</a> Parasitology. 144 (3), 295-315 (2017).</li>
<li>Breloer, M., Linnemann, L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Strongyloides+ratti+infection+in+mice%3A+immune+response+and+immune+modulation%5BTitle%5D)+AND+%22Philosophical+Trans+Royal+Society+B%22%5BJournal%5D)">Strongyloides ratti infection in mice: immune response and immune modulation.</a> Philosophical Trans Royal Society B. 379 (1894), 20220440(2024).</li>
<li>Dawkins, H. J. S., Grove, D. I., Dunsmore, J. D., Mitchell, G. F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Strongyloides+ratti%3A+Susceptibility+to+infection+and+resistance+to+reinfection+in+inbred+strains+of+mice+as+assessed+by+excretion+of+larvae%5BTitle%5D)+AND+%22Int+J+Parasitol%22%5BJournal%5D)">Strongyloides ratti: Susceptibility to infection and resistance to reinfection in inbred strains of mice as assessed by excretion of larvae.</a> Int J Parasitol. 10 (2), 125-129 (1980).</li>
<li>Ehrens, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Eosinophils+and+neutrophils+eliminate+migrating+Strongyloides+ratti+larvae+at+the+site+of+infection+in+the+context+of+extracellular+DNA+trap+formation%5BTitle%5D)+AND+%22Front+Immunol%22%5BJournal%5D)">Eosinophils and neutrophils eliminate migrating Strongyloides ratti larvae at the site of infection in the context of extracellular DNA trap formation.</a> Front Immunol. 12, 715766(2021).</li>
<li>Eschbach, M. L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Strongyloides+ratti+infection+induces+transient+nematode-specific+Th2+response+and+reciprocal+suppression+of+IFN-%CE%B3+production+in+mice%5BTitle%5D)+AND+%22Parasite+Immunol%22%5BJournal%5D)">Strongyloides ratti infection induces transient nematode-specific Th2 response and reciprocal suppression of IFN-γ production in mice.</a> Parasite Immunol. 32 (5), 370-383 (2010).</li>
<li>Dawkins, H., Muir, G., Grove, D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Histopathological+appearances+in+primary+and+secondary+infections+with+Strongyloides+ratti+in+mice%5BTitle%5D)+AND+%22Int+J+Parasitol%22%5BJournal%5D)">Histopathological appearances in primary and secondary infections with Strongyloides ratti in mice.</a> Int J Parasitol. 11 (1), 97-103 (1981).</li>
<li>Tada, I., Mimori, T., Nakai, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Migration+route+of+Strongyloides+ratti+in+albino+rats%5BTitle%5D)+AND+%22Jap+J+Parasit%22%5BJournal%5D)">Migration route of Strongyloides ratti in albino rats.</a> Jap J Parasit. 28 (4), 219-227 (1979).</li>
<li>Reitz, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Mucosal+mast+cells+are+indispensable+for+the+timely+termination+of+Strongyloides+ratti+infection%5BTitle%5D)+AND+%22Mucosal+Immunol%22%5BJournal%5D)">Mucosal mast cells are indispensable for the timely termination of Strongyloides ratti infection.</a> Mucosal Immunol. 10 (2), 481-492 (2017).</li>
<li>Viney, M. E., Lok, J. B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+biology+of+Strongyloides+spp%5BTitle%5D)+AND+%22WormBook%22%5BJournal%5D)">The biology of Strongyloides spp.</a> WormBook. , 1-17 (2018).</li>
<li>Reitz, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Interleukin-9+promotes+early+mast+cell-mediated+expulsion+of+Strongyloides+ratti+but+is+dispensable+for+generation+of+protective+memory%5BTitle%5D)+AND+%22Sci+Rep%22%5BJournal%5D)">Interleukin-9 promotes early mast cell-mediated expulsion of Strongyloides ratti but is dispensable for generation of protective memory.</a> Sci Rep. 8 (1), 8636(2018).</li>
<li>Breloer, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cutting+edge%3A+The+BTLA-HVEM+regulatory+pathway+interferes+with+protective+immunity+to+intestinal+Helminth+infection%5BTitle%5D)+AND+%22J+Immunol%22%5BJournal%5D)">Cutting edge: The BTLA-HVEM regulatory pathway interferes with protective immunity to intestinal Helminth infection.</a> J Immunol. 194 (4), 1413-1416 (2015).</li>
<li>Blankenhaus, B., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Foxp3%2B+regulatory+T+cells+delay+expulsion+of+intestinal+nematodes+by+suppression+of+IL-9-driven+mast+cell+activation+in+BALB%2Fc+but+not+in+C57BL%2F6+mice%5BTitle%5D)+AND+%22PLoS+Pathogens%22%5BJournal%5D)">Foxp3+ regulatory T cells delay expulsion of intestinal nematodes by suppression of IL-9-driven mast cell activation in BALB/c but not in C57BL/6 mice.</a> PLoS Pathogens. 10 (2), e1003913(2014).</li>
<li>Niamatali, S., Nolan, T. J., Schad, G. A. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aNiamatali%2C+S+%22Can+Autoinfection+be+Provoked+in+the+Strongyloides+ratt%2F-infected+Gerbil%2C+Meriones+unguiculatus%22">Can Autoinfection be Provoked in the Strongyloides ratt/-infected Gerbil, Meriones unguiculatus</a>. 59 (2), 149-152 (1992).</li>
<li>Gardner, M. P., Gems, D., Viney, M. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Extraordinary+plasticity+in+aging+in+Strongyloides+ratti+implies+a+gene-regulatory+mechanism+of+lifespan+evolution%5BTitle%5D)+AND+%22Aging+Cell%22%5BJournal%5D)">Extraordinary plasticity in aging in Strongyloides ratti implies a gene-regulatory mechanism of lifespan evolution.</a> Aging Cell. 5 (4), 315-323 (2006).</li>
<li>Viney, M. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Developmental+switching+in+the+parasitic+nematode+Strongyloides+ratti%5BTitle%5D)+AND+%22Proc+Biol+Sci%22%5BJournal%5D)">Developmental switching in the parasitic nematode Strongyloides ratti.</a> Proc Biol Sci. 263 (1367), 201-208 (1996).</li>
<li>Dawkins, H. J., Thomason, H. J., Grove, D. I. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+occurrence+of+Strongyloides+ratti+in+the+tissues+of+mice+after+percutaneous+infection%5BTitle%5D)+AND+%22J+Helminthol%22%5BJournal%5D)">The occurrence of Strongyloides ratti in the tissues of mice after percutaneous infection.</a> J Helminthol. 56 (1), 45-50 (1982).</li>
<li>Takamure, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Migration+route+of+Strongyloides+venezuelensis+in+rodents%5BTitle%5D)+AND+%22Int+J+Parasitol%22%5BJournal%5D)">Migration route of Strongyloides venezuelensis in rodents.</a> Int J Parasitol. 25 (8), 907-911 (1995).</li>
<li>Filbey, K., Bouchery, T., Le Gros, G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+role+of+ILC+2+in+hookworm+infection%5BTitle%5D)+AND+%22Parasite+Immunol%22%5BJournal%5D)">The role of ILC 2 in hookworm infection.</a> Parasite Immunol. 40 (2), e12429(2018).</li>
<li>Allen, J. E., Sutherland, T. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Host+protective+roles+of+type+2+immunity%3A+Parasite+killing+and+tissue+repair%2C+flip+sides+of+the+same+coin%5BTitle%5D)+AND+%22Semin+Immunol%22%5BJournal%5D)">Host protective roles of type 2 immunity: Parasite killing and tissue repair, flip sides of the same coin.</a> Semin Immunol. 26 (4), 329-340 (2014).</li>
<li>Dulovic, A., Puller, V., Streit, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Optimizing+culture+conditions+for+free-living+stages+of+the+nematode+parasite+Strongyloides+ratti%5BTitle%5D)+AND+%22Exp+Parasitol%22%5BJournal%5D)">Optimizing culture conditions for free-living stages of the nematode parasite Strongyloides ratti.</a> Exp Parasitol. 168, 25-30 (2016).</li>
<li>Douglas, B., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Transgenic+expression+of+a+T+cell+epitope+in+Strongyloides+ratti+reveals+that+helminth-specific+CD4%2B+T+cells+constitute+both+Th2+and+Treg+populations%5BTitle%5D)+AND+%22PLOS+Pathogens%22%5BJournal%5D)">Transgenic expression of a T cell epitope in Strongyloides ratti reveals that helminth-specific CD4+ T cells constitute both Th2 and Treg populations.</a> PLOS Pathogens. 17 (7), e1009709(2021).</li>
<li>Vadlamudi, R. S., Chi, D. S., Krishnaswamy, G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Intestinal+strongyloidiasis+and+hyperinfection+syndrome%5BTitle%5D)+AND+%22Clin+Mol+Allergy%22%5BJournal%5D)">Intestinal strongyloidiasis and hyperinfection syndrome.</a> Clin Mol Allergy. 4 (1), 8(2006).</li>
<li>Viney, M., Kikuchi, T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Strongyloides+ratti+and+S.+venezuelensis-+rodent+models+of+Strongyloides+infection%5BTitle%5D)+AND+%22Parasitology%22%5BJournal%5D)">Strongyloides ratti and S. venezuelensis- rodent models of Strongyloides infection.</a> Parasitology. 144 (3), 285-294 (2017).</li>
<li>Patton, J. B., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Methylprednisolone+acetate+induces%2C+and+%CE%947-dafachronic+acid+suppresses%2C+Strongyloides+stercoralis+hyperinfection+in+NSG+mice%5BTitle%5D)+AND+%22Proc+Natl+Acad+Sci%22%5BJournal%5D)">Methylprednisolone acetate induces, and Δ7-dafachronic acid suppresses, Strongyloides stercoralis hyperinfection in NSG mice.</a> Proc Natl Acad Sci. 115 (1), 204-209 (2018).</li>
<li>Reitz, M., Brunn, M. L., Voehringer, D., Breloer, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Basophils+are+dispensable+for+the+establishment+of+protective+adaptive+immunity+against+primary+and+challenge+infection+with+the+intestinal+helminth+parasite+Strongyloides+ratti%5BTitle%5D)+AND+%22PLOS+Neglected+Trop+Dis%22%5BJournal%5D)">Basophils are dispensable for the establishment of protective adaptive immunity against primary and challenge infection with the intestinal helminth parasite Strongyloides ratti.</a> PLOS Neglected Trop Dis. 12 (11), e000699(2018).</li>
<li>Blankenhaus, B., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Strongyloides+ratti+infection+induces+expansion+of+Foxp3%2B+regulatory+T+cells+that+interfere+with+immune+response+and+parasite+clearance+in+BALB%2Fc+Mice%5BTitle%5D)+AND+%22J+Immunol%22%5BJournal%5D)">Strongyloides ratti infection induces expansion of Foxp3+ regulatory T cells that interfere with immune response and parasite clearance in BALB/c Mice.</a> J Immunol. 186 (7), 4295-4305 (2011).</li>
<li>Hartmann, W., Blankenhaus, B., Brunn, M. L., Meiners, J., Breloer, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Elucidating+different+pattern+of+immunoregulation+in+BALB%2Fc+and+C57BL%2F6+mice+and+their+F1+progeny%5BTitle%5D)+AND+%22Sci+Rep%22%5BJournal%5D)">Elucidating different pattern of immunoregulation in BALB/c and C57BL/6 mice and their F1 progeny.</a> Sci Rep. 11 (1), 1536(2021).</li>
<li>Meiners, J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((IL-33+facilitates+rapid+expulsion+of+the+parasitic+nematode+Strongyloides+ratti+from+the+intestine+via+ILC2-+and+IL-9-driven+mast+cell+activation%5BTitle%5D)+AND+%22PLOS+Pathogens%22%5BJournal%5D)">IL-33 facilitates rapid expulsion of the parasitic nematode Strongyloides ratti from the intestine via ILC2- and IL-9-driven mast cell activation.</a> PLOS Pathogens. 16 (12), e1009121(2020).</li>
</ol>

<table><tbody><tr><td>50 ml&amp;nbsp ; tubes</td><td>Sarstedt, N<img alt="Équation 1 » src=" style="margin : auto ; ">mbrecht, DE&amp;nbsp ;</td><td>6,25,47,254</td><td>50 ml https://www.sarstedt.com/produkte/labor/reagenz-zentrifugenroehren/roehren/produkt/62.547.254/</td></tr> <tr><td>BD Micro-Fine U100 Insuline 0,5 ml</td><td>BD Bioscience</td><td>7468077</td><td>0,5 ml https://www.bestimed.de/bd-micro-fine-insulinspritze-05-ml-u100-8-mm-100x05ml-324825.html</td></tr><tr><td>tubes de centrifugation</td><td>Sarstedt, N&amp;uuml ; mbrecht, DE&amp;nbsp ;</td><td>72 706</td><td>1,5 ml https://www.sarstedt.com/produkte/labor/mikro-schraubroehren-reagiergefaesse/reagiergefaesse/produkt/72.706/</td></tr> <tr><td>Charbon de bois</td><td>Roth</td><td>0998.3</td><td>5 kg https://www.carlroth.com/de/de/aktivkohle/aktivkohle/p/0998.3</td></tr><tr><td>Falcon 6 puits à fond plat transparent, non traité, plaque de culture multipuits cellulaire, avec couvercle, stérile</td><td>Corning</td><td>351146</td><td>6 puits https://www.corning.com/emea/de/search.html?_cookie=false &amp; searchText=351146&amp; search-initialcatalog =Entreprise+Communications&amp; initialResultType=produits</td></tr><tr><td>Congélateur &amp; Réfrigérateur</td><td>Liebherr-Hausger&amp;auml ; te, Rostock, DE&amp;nbsp ;</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Greiner Bio-One&amp;nbsp ; 24-Puits de Platten f&amp;uuml ; r Zellkulturen aus Polystyrol</td><td>Fisher Scientific</td><td>10177380</td><td>24 puits https://www.fishersci.de/shop/products/polystyrene-24-well-cell-culture-multiwell-plate/10177380#?keyword=24-well</td></tr><tr><td>Incidin Premium Wipes</td><td>Ecolab Healthcare</td><td>100 10 279</td><td>https://www.ecolabhealthcare.de/website/seiten/produkte/flaechendesinfektion/tuecher/incidin_premium_wipes.php</td></tr><tr><td>Incubator 25&amp;deg ; C</td><td>Heraeus Instruments, Hanau, DE</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Incubateur 37&amp;deg ; C</td><td>Heraeus Instruments, Hanau, DE</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Microscope</td><td>Helmut Hund, Wetzlar, DE</td><td></td><td>4 x lentille objective, 10 x lentille oculaire</td></tr>.<tr><td>Parafilm M</td><td>Parafilm</td><td>11772644</td><td>4 po. X 125 pi https://www.fishersci.de/shop/products/parafilm-m-laboratory-wrapping-film-2/11772644</td></tr><tr><td>Pénicilline/Streptomycine (Pen-Strep)</td><td>Capricorn</td><td>PS-B</td><td>100x https://www.capricorn-scientific.com/en/shop/penicillin-streptomycin-pen-strep-100x~p1205</td></tr><tr><td>ROTI Fair 10x PBS 7.4</td><td>Roth</td><td>1105.1</td><td>https://www.carlroth.com/de/de/fertigloesungen-tabletten-portionsbeutel/rotifair-10x-pbs-7-4/p/1105.1</td></tr></tbody></table>

infection expérimentale de souris par le nématode parasite strongyloides ratti

Experimental Infection of Mice with the Parasitic Nematode Strongyloides ratti

S. ratti migre du site de l’infection principalement vers la tête et plus tard vers l’intestin par une voie qui n’est pas exactement définie. Pour étudier la localisation exacte dans le tissu de la tête et l’intestin, les souris C57BL/6 ont été infectées avec 1000 iL3 dans le coussinet du pied postérieur gauche. Les souris ont été sacrifiées du 1er au 14e jour et les parasites S. ratti ont été quantifiés dans la tête, le cerveau et les poumons antérieurs et postérieurs, le cerveau et les poumons (Figure 2) ainsi que dans le duodénum, le jéjunum, l’iléon, le cæcum et le côlon (Figure 3).
Au jour 1 p.i., la première L3 a atteint la tête, montrant une distribution uniforme (Figure 2A). De plus, une petite fraction des larves a été récupérée dans les poumons au jour 1 p.i. (figure 2B). Le nombre de L3 a augmenté de façon marquée au jour 2 p.i. pour atteindre une moyenne de 174 L3 ± 13 dans la tête et une moyenne de 17 ± 1,7 dans le poumon. Ainsi, la majorité de la L3 (environ 90 %) est prélevée dans la tête et seulement environ 10 % dans les poumons. La plupart des larves L3 (moyenne de 93 ± 13,3) étaient localisées dans la face antérieure de la tête, mais aussi environ 41 ± 4,7 larves de L3 étaient localisées dans la face postérieure de la tête et environ 39 ± 5,8 dans le cerveau. Dans la lignée de cette observation, la présence de L3 dans le cerveau et le liquide céphalo-rachidien a été rapportée à 24 h p.i. et avec un maximum à 48 h p.i. chez les souris C57BL/6 après infection percutanée20. Une diminution nette des nombres totaux de L3 a été observée au jour 3 p.i. par rapport à la charge larvaire au jour 2 p.i., et aucune L3 n’a été prélevée dans les tissus de la tête au jour 4 p.i. (figure 2A). En conséquence, l’arrivée des parasites S. ratti a été détectée dans l’intestin au jour 4 p.i. (Figure 3A). Pour permettre une définition précise de la localisation du parasite, l’intestin a été subdivisé en segments distincts, c’est-à-dire le duodénum, le jéjunum, l’iléon, le cæcum et le côlon (Figure 3B). Le jour 4, p.i., la majorité des parasites de S. ratti étaient localisés dans le duodénum et les deux premiers tiers du jéjunum (figure 3A). Cette localisation a été constante jusqu’au jour 6 p.i. À partir du jour 7 p.i., la majorité des adultes de S. ratti étaient localisés dans le cæcum, où ils ont persisté jusqu’au jour 9 p.i. (figure 3A). Le nombre de parasites dans le cæcum a chuté à environ 20 au jour 11 et à 0 au jour 14. Nous n’avons pas récupéré un nombre significatif de parasites dans le côlon restant à aucun moment analysé, à l’exception d’environ 5 à 11 parasites au jour 11 p.i. Bien que la localisation des parasites S. ratti ait changé entre le jour 4 et le jour 9 p.i. et que la majorité des adultes aient été éjectés de l’intestin grêle après le jour 7 p.i., le nombre total de personnes récupérées dans l’intestin entier est demeuré constant jusqu’au jour 9. La L1 viable n’a pas été quantifiée, mais elle est détectable du jour 4 au jour 11, avec un pic le jour 6 (données non présentées).
<img alt="Figure 1" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/67533/67533fig01.jpg"> 
Figure 1 : Maintien du cycle de vie de S. ratti chez le rat et la souris. Les rats Wistar sont injectés s.c. dans le pli nucal avec 2500 iL3. Après 6 à 15 jours, leurs excréments sont recueillis, mélangés à du charbon actif imbibé d’eau, disposés avec un dégradé et recouverts d’un film transparent, y compris des trous d’air. Cette culture est incubée pendant 6 à 7 jours à 25 °C et 90 % d’humidité. Les iL3 sont isolés à l’aide de l’appareil de Baermann et lavés 3 fois avec du PBS/Pen-Strep. Des souris expérimentales sont injectées avec 1000 iL3 par voie sous-cutanée dans le coussinet du pied arrière. Créé avec BioRender.com. La figure 1 a été créée dans BioRender. Linnemann, L. (2024) https://BioRender.com/g80l370. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/67533/67533fig01large.jpg" target="_blank">Veuillez cliquer ici pour voir une version agrandie de cette figure.</a>
<img alt="Figure 2" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/67533/67533fig02.jpg"> 
Figure 2 : Quantification de S. ratti dans les tissus pulmonaires et cintempestiques au fil du temps. Les souris C57BL/6 ont été injectées par voie s.c. avec 1000 iL3 dans le coussinet du pied arrière. Les souris ont été sacrifiées aux points temporels indiqués, et les parasites S. ratti dans la tête (A) et (B) les poumons ont été comptés. Chaque symbole représente le nombre de L3 d’une souris individuelle ; le graphique à barres indique la valeur moyenne et les barres d’erreur indiquent SEM. Les graphiques montrent des données combinées provenant d’expériences individuelles. Jour 1 : deux expériences indépendantes avec n=4 par point temporel et par expérience ; Jour 2 : Quatre expériences indépendantes avec n=4, n=4, n=6 et n=3 ; Jour 3 : Deux expériences indépendantes avec n=4 et n=3 ; Jour 4 : Une expérience avec n=5. (C) Dessin animé montrant les différentes régions de la tête utilisées pour l’isolement. La ligne pointillée rouge indique le chemin d’incision. La figure 2C a été créée dans BioRender. Linnemann, L. (2024) https://BioRender.com/t83e660. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/67533/67533fig02large.jpg" target="_blank">Veuillez cliquer ici pour voir une version agrandie de cette figure.</a>
<img alt="Figure 3" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/67533/67533fig03.jpg"> 
Figure 3 : Quantification de S. ratti dans les régions intestinales au fil du temps. Des souris C57BL/6 mâles ont reçu une injection s.c. de 1000 iL3 dans le coussinet du pied arrière. (A) Les souris ont été sacrifiées aux points temporels indiqués, et les parasites S. ratti, à l’exception de L1, ont été dénombrés dans les régions suivantes : duodénum, jéjunum 1-3, iléon, cæcum et côlon. (B) Vue d’ensemble schématique des différentes régions intestinales. Chaque symbole représente le nombre de parasites d’une souris individuelle ; le graphique à barres indique la moyenne, et les barres d’erreur indiquent le MEB. Jour 4 : deux expériences indépendantes avec des souris n=4 et n=6 ; Jour 5 : deux expériences indépendantes avec n=4 et n=6 ; Jour 6 : deux expériences indépendantes avec n=4 et n=6 ; Jour 7 : deux expériences indépendantes avec n=6 et n=3 ; Jours 8 à 14 : une expérience avec n=3. SI : intestin grêle. La figure 3B a été créée dans BioRender. Linnemann, L. (2024) https://BioRender.com/h27y297. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/67533/67533fig03large.jpg" target="_blank">Veuillez cliquer ici pour voir une version agrandie de cette figure.</a>

Infection expérimentale de souris par le nématode parasite Strongyloides ratti

Strongyloides ratti is a parasitic nematode that naturally infects wild rats. However, most laboratory rat and mouse strains are fully susceptible to ...

experimental-infection-mice-with-parasitic-nematode-strongyloides

Research

Recherche

JoVE Journal

Immunology and Infection

Immunologie et infection

Croisements génétiques des parasites du paludisme chez les rongeurs sont effectuées en alimentant deux des parasites génétiquement distinctes pour les moustiques. Recombinant progéniture clonée à partir de sang de souris après avoir laissé les moustiques de mordre des souris infectées. Cette vidéo montre comment produire des croisements...

Protocole pour la production d&#39;un croisement génétique des parasites du paludisme des rongeurs

Trichuris muris infection est un modèle de l'immunité intestinale Th2 où les souris résistantes générer une réponse immunitaire protectrice Th2 et souris susceptibles de générer une réponse Th1 pathologique.

Trichuris muris Infection: Un modèle de type 2 Immunité et inflammation de l&#39;intestin

Schistosoma mansoni oeufs sont des stimulateurs efficaces du type T auxiliaire 2 (Th2) la réponse immunitaire, caractéristique d'une infection parasitaire, l'asthme et l'inflammation allergique. Ce protocole utilise S. mansoni œuf d'injection afin de générer un taux de CD4 Th2 induite par les cytokines réponse inflammatoire dans les poumons, caractérisée par la formation de granulomes pulmonaires autour de l'oeuf, l'éosinophilie et l'activation des macrophages alternative.

En utilisant des oeufs de<em&gt; Schistosoma mansoni</em&gt; En tant que<em&gt; In vivo</em&gt; Modèle de l&#39;inflammation pulmonaire induite par les helminthes

Citrobacter rodentium infection constitue un modèle précieux pour l'étude des infections bactériennes entériques ainsi que l'hôte réponses immunitaires et la colite chez la souris. Ce protocole décrit la mesure du intégrité de la barrière, la charge de pathogènes et les dommages histologiques permettant la caractérisation approfondie des contributions pathogène et de l'hôte à la colite infectieuse murin.

La<em&gt; Citrobacter rodentium</emModèle de souris&gt;: Étudier Contributions des agents pathogènes et l&#39;hôte de la colite infectieuse

Cet article présente une méthode détaillée pour la mesure dynamique et la quantification de la vitesse du flux sanguin dans les vaisseaux sanguins individuels du système vasculaire hépatique de la souris à l’aide de l’imagerie par microscopie intravitale en combinaison avec une méthodologie spécifique pour l’acquisition et l’analyse d’images.

Microscopie intravitale imagerie du foie suivante<em&gt; Leishmania</em&gt; Infection: Une évaluation de l&#39;hémodynamique hépatiques

Cet article décrit un protocole d’isolement axénique à grande échelle et de perception des miracidia nageant librement de la douve de sang humaine Schistosoma mansoni et leur traitement ultérieur pour être introduit dans la culture in vitro .

Masse d’Isolation et de la culture In Vitro des étapes apporte de la douve de sang humain Schistosoma Mansoni

L’agent de la maladie de Chagas de Trypanosoma cruzi produit durable des infections asymptomatiques qui brusquement se développent en pathologie cliniquement reconnue. Le protocole de recherche suivant décrit une étude épidémiologique axée sur la famille de court terme pour démêler l’infection de T. cruzi transmise sexuellement des parents aux descendants.

Transmission sexuelle du trypanosome américaine des mâles et des femelles à des camarades de Naive

Ce protocole décrit la mise en place d'un modèle de souris pour l'étude des interactions Malassezia-hôtedans la peau. Il décrit la culture de Malassezia in vitro, l'infection de la peau murine avec Malassezia, et l'analyse ultérieure de l'inflammation et le fardeau fongique dans le tissu cutané.

Infecter des souris avec Malassezia spp. pour étudier l'interaction fungus-hôte

Ici, nous présentons un protocole compilé pour évaluer l’infection cutanée des souris avec l’amazonensis de Leishmania. Il s’agit d’une méthode fiable pour étudier la virulence parasite, permettant une vue systémique de la réponse de l’hôte vertébré à l’infection.

Infection in vivo avec l’amazonense de Leishmania pour évaluer la virulence parasite chez les souris

La boîte à outils génomique fonctionnelle pour les nématodes parasites Strongyloides stercoralis et Strongyloides ratti comprend la transgénèse, la mutagénèse médiée par CRISPR / Cas9 et l’ARNi. Ce protocole montrera comment utiliser la microinjection intragonadienne pour introduire des transgènes et des composants CRISPR dans S. stercoralis et S. ratti.

Génération de transgéniques et de Knockouts chez les espèces de strongyloïdes par microinjection

Les cellules T et ILC2 exprimant l’IL-9 sont induites au cours de l’infection à N. brasiliensis , mais leur caractérisation a été largement négligée dans l’intestin infecté en raison de leur faible fréquence et de leur cinétique différentielle. Ce protocole décrit l’isolement de ces cellules à partir de différents organes cibles et la confirmation de leur identité par cytométrie en flux à différents stades de l’infection.

Stratégie pour l’étude des cellules lymphoïdes productrices d’IL-9 dans le modèle d’infection à Nippostrongylus brasiliensis

Découvrez une méthode d'infection expérimentale par Strongyloides ratti chez la souris pour étudier les mécanismes immunitaires et la migration tissulaire des larves. Ce protocole permet de quantifier les parasites dans différents organes et d'analyser les différences sexuelles dans la réponse immunitaire intestinale.

Infection expérimentale de souris par le nématode parasite Strongyloides ratti

Explorer plus de vidéos