Name: Marquage par fluorescence pour visualiser les protéines faiblement exprimées chez le poisson-zèbre (Vidéo) | JoVE Journal
Uploaded: 2025-01-24T14:40:00.000+00:00
Duration: 9 min 38 s
Description: Découvrez un protocole de marquage fluorescent pour visualiser les protéines faiblement exprimées chez les larves de poisson-zèbre. Cette méthode simplifie la construction du donneur et améliore l'imagerie protéique en neurosciences.

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<meta charset="utf8"></head><body>Marquage fluorescent des protéines dans les larves de poisson-zèbre à l’aide de CRISPR/Cas9 Knock-In

<ol><li>Brittijn, S. A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Zebrafish+development+and+regeneration%3A+new+tools+for+biomedical+research%5BTitle%5D)+AND+%22Int+J+Dev+Biol%22%5BJournal%5D)">Zebrafish development and regeneration: new tools for biomedical research.</a> Int J Dev Biol. 53 (5-6), 835-850 (2009).</li>
<li>Gemberling, M., Bailey, T. J., Hyde, D. R., Poss, K. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+zebrafish+as+a+model+for+complex+tissue+regeneration%5BTitle%5D)+AND+%22Trends+Genet%22%5BJournal%5D)">The zebrafish as a model for complex tissue regeneration.</a> Trends Genet. 29 (11), 611-620 (2013).</li>
<li>Haraoka, Y., Miyake, M., Ishitani, T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Zebrafish+imaging+reveals+hidden+oncogenic-normal+cell+communication+during+primary+tumorigenesis%5BTitle%5D)+AND+%22Cell+Struct+Funct%22%5BJournal%5D)">Zebrafish imaging reveals hidden oncogenic-normal cell communication during primary tumorigenesis.</a> Cell Struct Funct. 48 (1), 113-121 (2023).</li>
<li>Gomes, M. C., Mostowy, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+case+for+modeling+human+infection+in+zebrafish%5BTitle%5D)+AND+%22Trends+Microbiol%22%5BJournal%5D)">The case for modeling human infection in zebrafish.</a> Trends Microbiol. 28 (1), 10-18 (2020).</li>
<li>Trede, N. S., Langenau, D. M., Traver, D., Look, A. T., Zon, L. I. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+use+of+zebrafish+to+understand+immunity%5BTitle%5D)+AND+%22Immunity%22%5BJournal%5D)">The use of zebrafish to understand immunity.</a> Immunity. 20 (4), 367-379 (2004).</li>
<li>Karlsson, J., von Hofsten, J., Olsson, P. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Generating+transparent+zebrafish%3A+a+refined+method+to+improve+detection+of+gene+expression+during+embryonic+development%5BTitle%5D)+AND+%22Mar+Biotechnol+%28NY%29%22%5BJournal%5D)">Generating transparent zebrafish: a refined method to improve detection of gene expression during embryonic development.</a> Mar Biotechnol (NY). 3 (6), 522-527 (2001).</li>
<li>White, R. M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Transparent+adult+zebrafish+as+a+tool+for+in+vivo+transplantation+analysis%5BTitle%5D)+AND+%22Cell+Stem+Cell%22%5BJournal%5D)">Transparent adult zebrafish as a tool for in vivo transplantation analysis.</a> Cell Stem Cell. 2 (2), 183-189 (2008).</li>
<li>Antinucci, P., Hindges, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+crystal-clear+zebrafish+for+in+vivo+imaging%5BTitle%5D)+AND+%22Sci+Rep%22%5BJournal%5D)">A crystal-clear zebrafish for in vivo imaging.</a> Sci Rep. 6, 29490(2016).</li>
<li>He, M. D., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Efficient+ligase+3-dependent+microhomology-mediated+end+joining+repair+of+DNA+double-strand+breaks+in+zebrafish+embryos%5BTitle%5D)+AND+%22Mutat+Res%22%5BJournal%5D)">Efficient ligase 3-dependent microhomology-mediated end joining repair of DNA double-strand breaks in zebrafish embryos.</a> Mutat Res. 780, 86-96 (2015).</li>
<li>Hisano, Y., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Precise+in-frame+integration+of+exogenous+DNA+mediated+by+CRISPR%2FCas9+system+in+zebrafish%5BTitle%5D)+AND+%22Sci+Rep%22%5BJournal%5D)">Precise in-frame integration of exogenous DNA mediated by CRISPR/Cas9 system in zebrafish.</a> Sci Rep. 5, 8841(2015).</li>
<li>Luo, J. J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((CRISPR%2FCas9-based+genome+engineering+of+zebrafish+using+a+seamless+integration+strategy%5BTitle%5D)+AND+%22FASEB+J%22%5BJournal%5D)">CRISPR/Cas9-based genome engineering of zebrafish using a seamless integration strategy.</a> FASEB J. 32 (9), 5132-5142 (2018).</li>
<li>Wierson, W. A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Efficient+targeted+integration+directed+by+short+homology+in+zebrafish+and+mammalian+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Elife%22%5BJournal%5D)">Efficient targeted integration directed by short homology in zebrafish and mammalian cells.</a> Elife. 9, e53968(2020).</li>
<li>Liu, J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Optimal+tagging+strategies+for+illuminating+expression+profiles+of+genes+with+different+abundance+in+zebrafish%5BTitle%5D)+AND+%22Commun+Biol%22%5BJournal%5D)">Optimal tagging strategies for illuminating expression profiles of genes with different abundance in zebrafish.</a> Commun Biol. 6 (1), 1300(2023).</li>
<li>Li, C., Evans, R. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Ligation+independent+cloning+irrespective+of+restriction+site+compatibility%5BTitle%5D)+AND+%22Nucleic+Acids+Res%22%5BJournal%5D)">Ligation independent cloning irrespective of restriction site compatibility.</a> Nucleic Acids Res. 25 (20), 4165-4166 (1997).</li>
<li>Yu, C., Zhang, Y., Yao, S., Wei, Y. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+PCR+based+protocol+for+detecting+indel+mutations+induced+by+TALENs+and+CRISPR%2FCas9+in+zebrafish%5BTitle%5D)+AND+%22PLoS+One%22%5BJournal%5D)">A PCR based protocol for detecting indel mutations induced by TALENs and CRISPR/Cas9 in zebrafish.</a> PLoS One. 9 (6), e98282(2014).</li>
<li>Hirata, H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Connexin+39.9+protein+is+necessary+for+coordinated+activation+of+slow-twitch+muscle+and+normal+behavior+in+zebrafish%5BTitle%5D)+AND+%22J+Biol+Chem%22%5BJournal%5D)">Connexin 39.9 protein is necessary for coordinated activation of slow-twitch muscle and normal behavior in zebrafish.</a> J Biol Chem. 287 (2), 1080-1089 (2012).</li>
<li>Cason, N., White, T. W., Cheng, S., Goodenough, D. A., Valdimarsson, G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Molecular+cloning%2C+expression+analysis%2C+and+functional+characterization+of+connexin44.1%3A+a+zebrafish+lens+gap+junction+protein%5BTitle%5D)+AND+%22Dev+Dyn%22%5BJournal%5D)">Molecular cloning, expression analysis, and functional characterization of connexin44.1: a zebrafish lens gap junction protein.</a> Dev Dyn. 221 (2), 238-247 (2001).</li>
<li>Urushibata, H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Control+of+developmental+speed+in+zebrafish+embryos+using+different+incubation+temperatures%5BTitle%5D)+AND+%22Zebrafish%22%5BJournal%5D)">Control of developmental speed in zebrafish embryos using different incubation temperatures.</a> Zebrafish. 18 (5), 316-325 (2021).</li>
<li>Yu, D., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cyclic+digestion+and+ligation-mediated+PCR+used+for+flanking+sequence+walking%5BTitle%5D)+AND+%22Sci+Rep%22%5BJournal%5D)">Cyclic digestion and ligation-mediated PCR used for flanking sequence walking.</a> Sci Rep. 10 (1), 3434(2020).</li>
</ol>

<table><tbody><tr><td>1000 et micro ; L&nbsp ; conseils</td><td>N’importe quelle marque</td><td>N/A</td><td>Pour toutes manipulations Tubes</td></tr> de <tr><td>1,5 mL</td><td>Toute marque</td><td>N/A</td><td>Pour le stockage et la centrifugation de solutions diverses Tubes de</td></tr><tr><td>1,5 mL (sans RNase)</td><td>Toute marque</td><td>N/A</td><td>Pour le stockage et la centrifugation de solutions sans RNase</td></tr><tr><td>10 & micro ; L pointes</td><td>N’importe quelle marque</td><td>N/A</td><td>Pour toutes les manipulations</td></tr><tr><td>10 &micro ; Embouts L (sans RNase)</td><td>N’importe quelle marque</td><td>N/A</td><td>Pour les manipulations sans RNase</td></tr><tr><td>1000 & micro ; L&nbsp ; pointes (sans RNase)</td><td>Toute marque</td><td>N/A</td><td>Pour les manipulations sans RNase</td></tr><tr><td>1-phényl 2-thiourée (PTU)</td><td>Sigma</td><td>P7629</td><td>Pour inhiber la mélanogénèse et garder les larves transparentes</td></tr><tr><td>200 &micro ; L pointes</td><td>N’importe quelle marque</td><td>N/A</td><td>Pour toutes manipulations</td></tr><tr><td>200 &micro ; Embouts L (sans RNase)</td><td>N’importe quelle marque</td><td>N/A</td><td>Pour les manipulations sans RNase</td></tr><tr><td>2x Taq Plus Master Mix II (Dye Plus)</td><td>Vazyme</td><td>P213-03</td><td>PCR pour les tests d’efficacité de l’ARNg</td></tr><tr><td>Boîtes de 35 mm</td><td>Corning</td><td>430165</td><td>Pour l’imagerie</td></tr><tr><td>Plaques à 6 puits</td><td>N’importe quelle marque</td><td>N/A</td><td>Pour l’élevage individuel et temporaire du poisson-zèbre</td></tr><tr><td>Acc65I</td><td>NEB</td><td>R0599S</td><td>Pour digestion enzymatique</td></tr><tr><td>Acide acétique</td><td>Sigma</td><td>695092</td><td>Pour la préparation de tampons TAE</td></tr><tr><td>Agar</td><td>Biofroxx</td><td>8211GR500</td><td>Pour plaques LB</td></tr><tr><td>Ampicilline, sel de sodium</td><td>Sangon</td><td>A610028</td><td>Pour les plaques LB</td></tr><tr><td>CaCl2</td><td>Sigma</td><td>C5080</td><td>Pour la préparation de tampons embryonnaires</td></tr><tr><td>Tubes capillaires</td><td>Appareil</td> <td>de Harvard30-0016</td><td>Pour générer des aiguilles pour l’injection</td></tr><tr><td>Tubes capillaires</td><td>N’importe quel</td> identifiant de marque <td>(diamètre intérieur) = 0,1 mm</td><td>Pour quantifier une gouttelette de 1 nL</td></tr><tr><td>CRISPRscan</td><td>CRISPRscan</td><td>&nbsp ; http://www.crisprscan.org/</td> <td>Pour la conception d’ARNsg</td></tr><tr><td>DH5&alpha ;</td><td>TIANGEN</td><td>CB101</td><td>Pour la transformation</td></tr><tr><td>EDTA</td><td>Sigma</td><td>E6758</td><td>Pour la préparation du tampon de lyse et du tampon TAE</td></tr><tr><td>Ensembl</td><td></td> <td>Ensembl&nbsp ; https://asia.ensembl.org/Danio_rerio/Info/Index</td><td>Pour trouver des informations génétiques</td></tr><tr><td>Éthanol</td><td>HUSHI</td><td>64-17-5</td><td>Pour la purification et l’extraction de l’ADN</td></tr><tr><td>Exonucléase III</td><td>Takara</td><td>2170A</td><td>LIC</td></tr><tr><td>Micro-injecteur à gaz</td><td>Warner Instruments</td><td>PLI-100A</td><td>Pour la micro-injection</td></tr><tr><td>Système d’électrophorèse sur gel</td><td>WIX</td><td>WIX-EP3000</td><td>Pour gel Gants d’électrophorèse</td></tr><tr><td></td><td>N’importe quelle marque</td><td>N/A</td><td>Pour toutes manipulations</td></tr><tr><td>Glucose</td><td>sgdbio</td><td>10010518</td><td>Pour plaques LB</td></tr><tr><td>Glycérol</td><td>Sangon</td><td>A501745</td><td>Pour plaques LB</td></tr><tr><td>gRNA-pMD19-T</td><td>China Zebrafish Resource Center (CZRC)</td><td>CZP3</td><td>Plasmide sgRNA contenant sgRNA scaffold</td></tr><tr><td>KCl</td><td>Sigma</td><td>P5405</td><td>Pour embryon préparation du tampon</td></tr><tr><td>Solution de précipitation de chlorure de lithium</td><td>Thermofisher</td><td>AM9480</td><td>Précipitation d’ARNsg, sans RNase</td></tr><tr><td>Agarose à bas point de fusion</td><td>Sangon</td><td>A600015</td><td>Pour la préparation de gels d’agarose à 4 %</td></tr><tr><td>Sulfate de magnésium</td><td>sgdbio</td><td>20025118</td><td>Pour plaques LB</td></tr><tr><td>Bain métallique</td><td>N’importe quelle marque</td><td>N/A</td><td>Pour l’incubation à température constante</td></tr><tr><td>Bleu de méthylène</td><td>Sigma</td><td>M9140</td><td>Pour la préparation du tampon d’embryons</td></tr><tr><td>Moule de micro-inection</td><td>Maison</td><td>N/A</td><td>Pour générer des rainures pour maintenir les embryons pendant la micro-injection</td></tr><tr><td>Microloader, embout pour remplir Femtotips et autres microcapillaires en verre, stérile, 0,5 &ndash ; 20 & micro ; L, 100 mm, gris clair, 192 pièces (2 paniers & fois ; 96 pièces)</td><td>Eppendorf</td><td>5242956003</td><td>Pour charger la solution de micro-injection dans l’aiguille d’injection, sans RNase</td></tr><tr><td>Extracteur de micropipettes</td><td>Sutter Instrument</td><td>P-97</td><td>Pour générer des aiguilles pour l’injection</td></tr><tr><td>Micropipettes</td><td>Eppendorf</td><td>N/A</td><td>Pour toutes manipulations</td></tr><tr><td>Micro-ondes</td><td>N/A N’importe quelle marque</td><td>N/A</td><td>Pour couler des plaques d’injection et des gels d’agarose</td></tr><tr><td>MinElute PCR Kit de purification (50)</td><td>QIAGEN</td><td>28004</td><td>Pour purifier les produits de PCR et les produits de digestion,</td></tr><tr><td>mMESSAGE sans RNase mMACHINE T3 Transcription</td><td>Kit Invitrogen</td><td>AM1348</td><td>Transcription in vitro de l’ARNm Cas9, sans RNase</td></tr><tr><td>N2</td><td>Toute marque</td><td>N/A</td><td>Pour la micro-injection</td></tr><tr><td>NaCl</td><td>Sigma</td><td>S5886</td><td>Pour la préparation du tampon embryon et du tampon de lyse</td></tr><tr><td>NaHCO3</td><td>Sigma</td><td>S5761</td><td>Pour la préparation d’un tampon embryonnaire</td></tr><tr><td>NaOH</td><td>Sangon</td><td>A100173</td><td>Pour la préparation</td></tr><tr><td>d’un tampon TAE Eau sans nucléase</td><td>Thermofisher</td><td>R0581</td><td>Manipulations liées à l’ARN, sans RNase</td></tr><tr><td>PciI</td><td>NEB</td><td>R0655S</td><td>Pour la digestion enzymatique</td></tr><tr><td>Appareil PCR</td><td>N’importe quelle marque</td><td>N/A</td><td>Amplification PCR Tubes de bandelettes</td></tr><tr><td>PCR</td><td>N’importe quelle marque</td><td>N/A</td><td>Pour</td></tr> les <tr><td>tubes PCR</td><td>FEITONGKANG</td><td>blp-200</td><td>Pour PCR</td></tr><tr><td>Boîte de Pétri</td><td>N’importe quelle marque</td><td>N/A</td><td>Pour l’élevage de larves de poisson-zèbre, etc.</td></tr><tr><td>Rouge phénolique</td><td>Sigma</td><td>P0290</td><td>Pour la micro-injection, sans RNase Porte-pipette</td></tr><tr><td></td><td>Warner Instruments</td><td>PLI-PH1</td><td>Pour la micro-injection</td></tr><tr><td>PrimeStar (Premix)</td><td>Takara</td><td>DR040A</td><td>Pour le clonage moléculaire</td></tr><tr><td>Protéinase K</td><td>Merck</td><td>539480</td><td>Pour l’extraction de l’ADN génomique</td></tr><tr><td>pT3TS (T3 :zCas9-UTRglobin)</td><td>Centre de ressources sur le poisson zèbre de Chine (CZRC)</td><td>Modèle plasmidique</td> <td>CZP11</td> Cas9</tr><tr><td>Centrifugeuse réfrigérée</td><td>N’importe quelle marque</td><td>N/A</td><td>Pour la centrifugation liée à l’ARN</td></tr><tr><td>Balance</td><td>Sartorius</td><td>BCE124-1CCN</td><td>Pour la coulée de plaques d’injection et de gels d’agarose</td></tr><tr><td>Ciseaux</td><td>N’importe quelle marque</td><td>N/A</td><td>Pour couper</td></tr><tr><td>les queues de poissons adultes FDS</td><td>Sangon</td><td>A600485</td><td>Pour la préparation</td></tr> <tr><td>du tampon de lysePetites brosses</td><td>N’importe quelle marque</td><td>N/A</td><td>Pour déplacer doucement les embryons sur des plaques de micro-injection</td></tr><tr><td>Spectrophotomètre</td><td>Thermofisher</td><td>NanoDrop 2000</td><td>Pour les mesures de concentration d’ADN/ARN</td></tr><tr><td>Micromètre de platine</td><td>N’importe quelle marque</td><td>DIV (Division) = 0,01 mm</td><td>Pour quantifier une gouttelette de 1 nL</td></tr><tr><td>Microscope à stéréofluorescence</td><td>Olympus</td><td>SZX16</td><td>Pour l’observation de l’expression des gènes</td></tr><tr><td>Stéréomicroscope</td><td>Motic</td><td>SMZ-168</td><td>Pour l’observation et la micro-injection</td></tr><tr><td>T7 RiboMAX Express Système de production d’ARN à grande échelle</td><td>Promega</td><td>P1320</td><td>Transcription in vitro d’ARNsg, sans RNase</td></tr><tr><td>Incubateur à température contrôlée</td><td>N’importe quelle marque</td><td>N/A</td><td>Pour l’incubation d’embryons</td></tr><tr><td>TIDE</td><td>TIDE</td><td>https://tide.nki.nl/</td> <td>Pour l’analyse de l’efficacité de l’ARNg&nbsp ;</td></tr><tr><td>Méthanesulfonate de tricaïne</td><td>Sigma</td><td>A5040</td><td>Pour la préparation de la solution de tricaïne</td></tr><tr><td>Tris</td><td>Sangon</td><td>A600194</td><td>Pour la préparation de la solution de tricaïne, du tampon de lyse et du tampon TAE</td></tr><tr><td>Tryptone</td><td>OXOID</td><td>LP0042</td><td>Pour les plaques LB</td></tr><tr><td>Pince à épiler</td><td>N’importe quelle marque</td><td>N/A</td><td>Pour couper les aiguilles d’injection</td></tr><tr><td>XbaI</td><td>NEB</td><td>R0145S</td><td>Pour enzymatique digestion</td></tr><tr><td>Extrait de levure</td><td>OXOID</td><td>LP0021</td><td>Pour plaques LB</td></tr><tr><td>Système d’aquarium pour poisson zèbre</td><td>ESEN</td><td>ESEN-AW-S1</td><td>Pour l’élevage de poissons adultes</td></tr><tr><td>Bassins d’accouplement de poissons-zèbres (avec séparateur)</td><td>N’importe quelle marque</td><td>N/A</td><td>Pour l’accouplement des poissons</td></tr><tr><td>Zeiss LSM 900+Airyscan2</td><td>ZEISS</td><td>Zeiss LSM900</td><td>Pour l’imagerie confocale des poissons marqués à la fluorescence et l’analyse des données</td></tr><tr><td>Site web</td><td>ZFIN</td><td>ZFIN http://zfin.org/</td> <td>Pour trouver des informations sur les gènes</td></tr></tbody></table>

marquage par fluorescence pour visualiser les protéines faiblement exprimées chez le poisson-zèbre

Fluorescence Labeling to Visualize Low-Expressed Proteins in Zebrafish

Les jonctions lacunaires constituées de protéines polymères appelées connexines sont essentielles à l’échange de métabolites et d’ions de faible poids moléculaire entre les cellules en contact. La méthode de marquage des protéines par fluorescence décrite ci-dessus a été utilisée pour marquer la connexine 39.9 (figure 5A) et la connexine 44.1 (figure 5B), respectivement. Le KI correct a été vérifié par PCR de jonction (figu...

Marquage par fluorescence pour visualiser les protéines faiblement exprimées chez le poisson-zèbre

CRISPR/Cas9-mediated knock-in (KI) technology allows for easier fluorescent-protein tagging in zebrafish (Danio rerio), a preferred model organism for in ...

fluorescence-labeling-to-visualize-low-expressed-proteins-in-zebrafish

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Genetics

Génétique

Monter toute l'hybridation in situ est l'une des techniques les plus utilisées en biologie du développement. Ici, nous présentons une haute résolution double fluorescentes dans le protocole de l'hybridation in situ pour analyser le profil d'expression précise d'un seul gène et de déterminer le chevauchement des domaines d'expression de deux gènes. Nous incluons une iodure de propidium nucléaires contre-coloration pour mettre en évidence l'organisation tissulaire.

Zebrafish entier Mont haute résolution double fluorescent In Situ Hybridation

La clé de la compréhension des processus morphogénétiques qui façonnent l'embryon précoce est la capacité de cellules d'image à haute résolution. Nous décrivons ici une technique de marquage des cellules individuelles ou de petits amas de cellules dans des embryons de zebrafish entier avec membrane cible protéine fluorescente verte.

L&#39;étiquetage et l&#39;imagerie des cellules dans le cerveau postérieur Zebrafish

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Étiquetage des cellules Lineage Zebrafish avec laser Uncagable dextran fluorescéine

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Imagerie cellulaire en direct d&#39;extrusion de l&#39;épiderme du poisson zèbre développement

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Simple cartographie du destin cellulaire chez le poisson zèbre

Décrit ici est un protocole d'imagerie semi-automatisé de la fluorescence spécifique de tissu d'embryons de poisson zèbre.

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Appartement Mont Préparation pour l&#39;observation et l&#39;analyse des échantillons embryon de poisson zèbre souillé par toute la montagne<em&gt; In situ</em&gt; Hybridation

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Découvrez un protocole de marquage fluorescent pour visualiser les protéines faiblement exprimées chez les larves de poisson-zèbre. Cette méthode simplifie la construction du donneur et améliore l'imagerie protéique en neurosciences.

Marquage par fluorescence pour visualiser les protéines faiblement exprimées chez le poisson-zèbre

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