Détection rapide de la virulence et du typage d’Helicobacter pylori à l’aide de la technologie de marquage par points quantiques

Nos recherches portent sur le développement de réactifs diagnostiques pour l’immunochromatographie in vitro. Notre objectif est d’utiliser le marquage par points quantiques pour permettre la liaison d’anticorps antigènes spécifiques pour une détection précise de HP. Nous avons découvert que l’utilisation de la technologie des points quantiques pour la détection de la frappe HP peut vraiment aider au traitement précis de cette bactérie.

Nous résoudrons les problèmes de la technologie traditionnelle étant incapable de distinguer la virulence d’Helicobacter pylori et ayant des opérations compliquées grâce à la technologie des points quantiques. Tout en jugeant si Helicobacter pylori est infecté, nous pouvons distinguer la force de la virulence et fournir des plans de traitement individualisés.

[Instructeur] Pour commencer, prélevez le sang dans un tube de gel de séparation en prenant soin d’éviter l’hémolyse. S’il n’est pas possible de tester le sérum dans les quatre heures, conservez l’échantillon à une température comprise entre deux et huit degrés Celsius pendant trois jours maximum. Pour un entreposage à long terme, scellez et conservez l’échantillon à une température inférieure à moins 20 degrés Celsius pendant une période pouvant aller jusqu’à un an. Remettez les échantillons à température ambiante et mélangez-les soigneusement avant utilisation. Sortez le kit de réactifs et les matériaux de contrôle de la qualité et laissez-les s’équilibrer à température ambiante. Maintenant, centrifugez les échantillons de sang entier à 1 467 G pendant 10 minutes. Maintenant, allumez l’instrument et l’ordinateur d’exploitation. Lancez le logiciel correspondant et connectez-vous au logiciel. Vérifiez que le numéro de lot de la carte numérique sécurisée ou de la carte SD correspond à celui du kit de réactifs. Insérez la carte SD dans l’instrument et sélectionnez lire la puce d’identification dans l’application pour une correspondance automatique. Dans l’application, sélectionnez le module de test. Choisissez les paramètres d’initialisation pour initialiser l’instrument et attendez la fin du processus. Accédez à la zone de réactif de l’instrument et retirez l’emplacement de la carte de test. Maintenant, ouvrez le kit de réactifs et sélectionnez le nombre requis de cartes de test. Ensuite, ouvrez les patchs en feuille des cartes de test et placez-les dans la fente selon l’orientation indiquée. Réinsérez la fente pour carte dans la zone de réactif de l’instrument. Dans le module de test, sélectionnez RIS bidirectionnel. Entrez dans le module de saisie manuelle, cliquez sur Saisie d’informations et saisissez les informations spécifiques sur le matériau de contrôle qualité. Cliquez sur générer et placez les matériaux de contrôle qualité dans le rack d’échantillons désigné, en veillant à ce que l’ordre et l’orientation soient corrects. Cliquez sur démarrer le test pour lancer le test de contrôle qualité. Maintenant, dans le module de test, sélectionnez entrée manuelle pour afficher le SIL bidirectionnel. Placez les échantillons de test dans le support d’échantillons désigné, en veillant à ce qu’ils soient correctement ordonnés et orientés. Cliquez sur démarrer le test. Une fois l’essai terminé, l’instrument éjecte automatiquement les cartes d’essai usagées et l’opérateur les élimine avec les déchets médicaux. Les diagrammes de pic de deux échantillons négatifs n’ont montré aucun signal significatif à X1-Urease, X2-CagA ou X3-VacA, confirmant les résultats négatifs d’Helicobacter pylori, tandis que le fort pic à la ligne X4-C indiquait des résultats de test valides. Deux échantillons positifs pour l’uréase ont montré de forts pics de signal à X1, confirmant l’infection à Helicobacter pylori de type 2, tandis que X2 et X3 sont restés au départ ou à un signal faible, indiquant des anticorps CagA et VacA négatifs. Trois échantillons positifs pour l’uréase et également positifs pour CagA et/ou VacA ont montré des pics élevés à X1, X2 et X3, indiquant une infection à Helicobacter pylori de type 1. Les courbes ROC pour les biomarqueurs individuels et les indicateurs combinés ont montré que la combinaison de cinq indicateurs avec le typage des anticorps G17, PGI, PCI, PGR et Helicobacter pylori améliorait les performances diagnostiques avec la sensibilité et la spécificité les plus élevées.