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DOI: 10.3791/68346-v
Zeshuo Feng1, Yanjiao Li1, Ju Wu2, Jiajun Yin2, Ruoyu Wang1, Shanshan Liang1
1The Key Laboratory of biomarker high throughput screening and target translation of breast and gastrointestinal tumor,Affiliated Zhongshan Hospital of Dalian University, 2Department of General Surgery,Affiliated Zhongshan Hospital of Dalian University
Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.
This protocol outlines a method for creating a patient-derived colorectal cancer organoid model co-cultured with tumor-infiltrating lymphocytes (TILs). It aims to study their interactions and the therapeutic potential of TIL-based therapy for personalized colorectal cancer treatment.
Le protocole décrit une méthode de création d’un modèle d’organoïde de cancer colorectal (CRC) dérivé d’un patient co-cultivé avec des lymphocytes infiltrant la tumeur (TIL) afin d’étudier leurs interactions et leur potentiel thérapeutique. Ce modèle fournit une plate-forme préclinique pour explorer les réponses immunitaires dans le microenvironnement tumoral et pour prédire l’efficacité de la thérapie basée sur le TIL pour le traitement personnalisé du CCR.
La recherche vise à explorer les interactions des lymphocytes infiltrant la tumeur avec les organoïdes du cancer colorectal, et le potentiel thérapeutique de la thérapie basée sur le TIL pour les traitements personnalisés du cancer colorectal. Notre protocole a simplifié la prévention des lymphocytes infiltrant la tumeur à partir des lymphocytes et permet leur co-culture avec des organoïdes de cancer colorectal, surmontant ainsi une efficacité inférieure et une morbidité courante chez les patients.
[Narrateur] Pour commencer, préparez les réactifs expérimentaux et les vêtements de laboratoire pour l’utilisation. Ensuite, rincez trois fois le tissu tumoral primaire du cancer colorectal avec cinq millilitres de PBS suivi d’un tampon de lavage des tissus. À l’aide de ciseaux à tissus, coupez le tissu en petits fragments. Transférez le tissu haché dans le tampon de digestion CRC. Incuber l’échantillon dans un bain-marie réglé à 37 degrés Celsius pendant 30 minutes jusqu’à ce que le tissu soit complètement dissocié. Ajoutez ensuite un volume égal d’Ad DMEM à l’échantillon digéré pour neutraliser la réaction. Centrifugez la suspension à 380 G pendant cinq minutes à 25 degrés Celsius. Jetez maintenant le surnageant de l’échantillon centrifugé à l’aide d’une pipette. Pipetez un à trois millilitres de tampon de lyse érythrocytaire préchauffé sur la pastille et incubez l’échantillon à 25 degrés Celsius pendant 10 minutes. Ajoutez un volume égal d’Ad DMEM pour terminer la lyse. Centrifugez le tube à 380 G pendant cinq minutes à environ 25 degrés Celsius. Après avoir jeté le surnageant, mettez en suspension la pastille cellulaire dans un volume approprié d’Ad DMEM. Ajoutez du bleu de trypan à la suspension pour quantifier les cellules viables et obtenir une suspension cellulaire unique du tissu tumoral.
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