Name: Etude comparative sur la teneur en polysaccharides et l’activité antioxydante d’Hippophae rhamnoides subsp. sinensis et d’Hippophae gyantsensis (Vidéo) | JoVE Journal
Uploaded: 2025-08-15T14:30:00.000+00:00
Duration: 10 min 3 s
Description: Découvrez la comparaison du contenu en polysaccharides et de l'activité antioxydante entre Hippophae rhamnoides subsp. sinensis et Hippophae gyantsensis. Cette étude évalue le potentiel pharmaceutique de ces espèces.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

1. Echantillons et matériaux
<ol>
	<li>Collectez des échantillons d’argousier de différents hippophes du plateau de Qinghai-Xizang. REMARQUE : Les échantillons ont été identifiés par le professeur agrégé Yue Liu de l’Université de médecine traditionnelle chinoise de Chengdu. Des spécimens de référence ont été déposés à l’École de médecine ethnique de l’Université de médecine traditionnelle chinoise de Chengdu. Les renseignements sur l’échantillonnage sont présentés dans le tableau 1. Les détails des réactifs et de l’équipement utilisés dans cette étude sont énumérés dans la table des matériaux.</li>
	<li>Sécher les échantillons dans un four à 40 °C pendant 72 h.</li>
	<li>Broyez 20 g de chaque échantillon d’argousier en poudre et passez-le dans un tamis n° 3. Traitez chaque échantillon avec trois répétitions parallèles. Continuez à écraser les échantillons qui ne sont pas passés au tamis, puis tamisez-les jusqu’à ce qu’ils aient tous été tamisés.</li>
	<li>Conservez les échantillons à −20 °C pour les études de suivi.</li>
</ol>
2. Extraction des polysaccharides d’argousier
REMARQUE : Cette étude a adopté la méthode d’extraction précédemment établie pour l’argousier avec quelques modifications pour obtenir des polysaccharides30.
<ol>
	<li>Pesez 5,0 g de poudre d’échantillon d’argousier et placez-le dans une fiole à fond rond de 250 ml. Ajoutez 50 ml d’éthanol anhydre à la poudre et faites-la tremper à température ambiante (RT ; 25 °C) pendant 24 h pour éliminer les composants lipophiles. Traitez chaque échantillon avec trois répétitions parallèles.</li>
	<li>Filtrez la poudre de l’échantillon, qui a été trempée pendant la nuit, à l’aide d’un entonnoir Buchner, puis jetez le filtrat pour obtenir le résidu de filtre. Lavez les résidus de filtre trois fois avec 50 mL d’eau déminéralisée et séchez-les à un poids constant à 40 °C.</li>
	<li>Transvaser les résidus de filtre dégraissés dans une fiole à fond rond séchée de 250 ml, ajouter 150 ml d’eau déminéralisée dans un rapport solide/liquide de 1:30 (g/mL) et effectuer l’extraction par reflux dans un bain-marie à 80 °C deux fois pendant 2 h à chaque fois. Séparez le filtrat pour obtenir la solution brute de polysaccharide d’argousier.</li>
	<li>Concentrer l’extrait à l’aide d’un évaporateur rotatif à 50 °C pendant 1,5 h. Conservez la solution concentrée au réfrigérateur à 4 °C pour une utilisation ultérieure.</li>
	<li>Ajouter le réactif Sevage (CHCl3 :C4H9OH = 4:1, v :v) à la solution de polysaccharide brut à un rapport de volume de 1:4 entre le réactif de Sevage et la solution de polysaccharide brut. Mélangez avec un agitateur magnétique à une vitesse de 1050 tr/min pendant 20 min.</li>
	<li>Transférez le liquide dans un tube à centrifuger de 50 ml et centrifugez-le à 4000 × g pendant 15 min, puis récupérez le surnageant. Répétez l’opération ci-dessus trois fois jusqu’à ce qu’il n’y ait plus de précipité floculant blanc à l’interface entre les deux phases.</li>
	<li>Concentrez l’extrait de polysaccharide d’argousier après élimination des protéines. Ajouter de l’éthanol anhydre dans un rapport de volume de 1:3 pour une précipitation d’éthanol anhydre et placer le mélange à 4 °C pendant la nuit.</li>
	<li>Retirez la couche supérieure d’éthanol anhydre, transférez le mélange dans un tube à centrifuger de 50 mL et centrifugez-le à 4000 × g pendant 15 min pour obtenir le précipité. Lyophiliser le précipité pour obtenir des polysaccharides totaux.</li>
	<li>Calculez les rendements totaux en polysaccharides à l’aide de l’équation (1) ci-dessous : 
	<img alt="Equation 1" src="/files/ftp_upload/68855/68855eq01.jpg" style="margin: auto;"> REMARQUE : Dans l’équation (1), m représente le poids (g) des polysaccharides d’argousier, et M représente la masse (g) de l’échantillon d’argousier.</li>
</ol>
3. Détermination de la teneur en polysaccharides
<ol>
	<li>Préparation de la solution<ol>
		<li>Préparation de la solution de réactif phénolique<ol>
			<li>Pesez avec précision 3 g de phénol et transférez-le dans une fiole jaugée brune. Ajouter 50 mL d’eau déminéralisée pour dissoudre le phénol.</li>
			<li>Secouez bien le mélange jusqu’à ce qu’il soit homogène. Étiquetez le ballon et rangez-le pour une utilisation ultérieure.</li>
		</ol>
		</li>
		<li>Préparation de la solution étalon de glucose<ol>
			<li>Pesez avec précision 10 mg de glucose anhydre et transférez-le dans une fiole jaugée de 10 ml. Ajoutez de l’eau déminéralisée pour dissoudre le glucose et secouez bien le mélange.</li>
			<li>Diluez le mélange au volume désiré avec de l’eau désionisée pour obtenir une solution étalon de glucose.</li>
		</ol>
		</li>
		<li>Préparation de la solution de l’échantillon d’essai.<ol>
			<li>Peser avec précision 5 mg de polysaccharides d’argousier lyophilisés (ZG1-ZG5 et JZ1-JZ5) dans des fioles jaugées (n = 10). Ajouter de l’eau déminéralisée dans chaque fiole jusqu’à un volume final de 50 mL.</li>
			<li>Sonicez le mélange pendant 20 minutes jusqu’à ce que les polysaccharides soient complètement dissous. Traitez chaque échantillon avec trois répétitions parallèles.</li>
		</ol>
		</li>
	</ol>
	</li>
	<li>Construction de la courbe standard REMARQUE : Dans la méthode à l’acide phénol-sulfurique, les polysaccharides réagissent avec l’acide sulfurique concentré pour générer des dérivés de furfural, qui se condensent ensuite avec le phénol pour former un composé jaune orangé. La longueur d’onde d’absorption maximale de ce composé est d’environ 490 nm. Par conséquent, la longueur d’onde de détection de cette expérience a été fixée à 490 nm22.<ol>
		<li>Diluer la solution étalon de glucose avec de l’eau désionisée à une concentration de 0,1 mg/mL. À l’aide d’une micropipette, transvasez soigneusement 200, 300, 400, 500, 600 et 700 μL de la solution étalon de glucose dans six tubes à essai propres et distincts. Ajouter de l’eau pure à un volume total de 1,0 mL, puis mélanger délicatement chaque solution pour assurer une dilution uniforme.</li>
		<li>Ajouter 1,0 mL de solution de phénol à 6 % et 5,0 mL d’acide sulfurique dans les tubes à essai mentionnés ci-dessus. Bien mélanger, laisser refroidir, puis laisser reposer à RT pendant 30 min. REMARQUE : Le phénol est un composé chimique toxique et l’acide sulfurique concentré est corrosif. Des gants doivent être portés lors de la préparation de solutions de phénol et d’acide sulfurique, et la procédure doit être effectuée à l’intérieur d’une hotte.</li>
		<li>Transférez les échantillons susmentionnés dans des cuvettes et utilisez de l’eau pure à blanc à la place de l’échantillon. Mesurez leur absorbance à 490 nm à l’aide d’un spectrophotomètre UV-Vis et de trois répétitions.</li>
		<li>Tracez la courbe standard avec les concentrations de glucose sur l’axe des x et les valeurs d’absorbance sur l’axe des y. Obtenez l’équation de régression et calculez le coefficient de corrélation (R²). REMARQUE : Le spectrophotomètre UV-Vis doit être préchauffé une demi-heure à l’avance. Lors de la mesure de l’absorbance dans cette étape, l’absorbance doit être comprise entre 0,2 et 0,8. Par conséquent, la concentration de l’échantillon doit être quantifiée.</li>
	</ol>
	</li>
	<li>Etude méthodologique<ol>
		<li>Test de précision :<ol>
			<li>Prenez JZ2 et préparez la solution d’essai conformément à la méthode décrite à l’étape 3.1.3. Effectuer la colorimétrie à l’acide phénol-sulfurique en suivant la méthode décrite à l’étape 3.2.2.</li>
			<li>Par la suite, déterminer l’absorbance conformément à la procédure décrite à l’étape 3.2.3. Répétez cette procédure six fois et calculez l’écart-type relatif (RSD).</li>
		</ol>
		</li>
		<li>Test de stabilité :<ol>
			<li>Préparez la solution d’échantillon JZ2 en suivant la méthode décrite à l’étape 3.1.3. À 0, 2, 4, 6, 8 et 10 h après la préparation de l’échantillon, effectuer la colorimétrie à l’acide phénol-sulfurique conformément à la méthode spécifiée à l’étape 3.2.2.</li>
			<li>Ensuite, déterminez l’absorbance en suivant la procédure décrite à l’étape 3.2.3 et calculez la DSR.</li>
		</ol>
		</li>
		<li>Test de répétabilité :<ol>
			<li>Préparez la solution d’échantillon JZ2 en suivant la méthode décrite à l’étape 3.1.3. Préparez six répétitions en parallèle. Effectuer la colorimétrie à l’acide phénol-sulfurique conformément à la méthode spécifiée à l’étape 3.2.2.</li>
			<li>Ensuite, déterminez l’absorbance en suivant la procédure décrite à l’étape 3.2.3 et calculez la DSR.</li>
		</ol>
		</li>
		<li>Test de récupération :<ol>
			<li>Prenez JZ2 et préparez la solution d’essai conformément à la méthode décrite à l’étape 3.1.3. Préparez neuf répétitions en parallèle. Ajouter les solutions de référence équivalant à 80 %, 100 % et 120 % de la teneur totale en polysaccharides de l’échantillon et préparer trois échantillons parallèles.</li>
			<li>Effectuer la colorimétrie à l’acide phénol-sulfurique conformément à la méthode spécifiée à l’étape 3.2.2. Par la suite, déterminer l’absorbance en suivant la procédure décrite à l’étape 3.2.3 et calculer le taux de récupération à l’aide de l’équation (2). 
			<img alt="Equation 2" src="/files/ftp_upload/68855/68855eq02.jpg" style="margin: auto;"> REMARQUE : Dans l’équation (2), A représente la quantité de glucose contenue dans la solution d’échantillon d’argousier, B représente la quantité de glucose ajoutée et C représente la valeur mesurée de la solution contenant du glucose et de la solution d’échantillon d’argousier.</li>
		</ol>
		</li>
	</ol>
	</li>
	<li>Détermination du contenu<ol>
		<li>Préparer la solution d’échantillon comme décrit à l’étape 3.1.3 et effectuer la colorimétrie à l’acide phénol-sulfurique conformément à la méthode spécifiée à l’étape 3.2.2.</li>
		<li>Déterminer l’absorbance en suivant la procédure décrite à l’étape 3.2.3 et calculer la teneur en polysaccharides à l’aide de la méthode de la courbe standard. Effectuez ces opérations en parallèle trois fois pour chaque échantillon.</li>
	</ol>
	</li>
</ol>
4. Activité de piégeage des radicaux DPPH31,32
<ol>
	<li>Peser avec précision 2,7 mg de DPPH dans une fiole jaugée vide de 50 ml. Le dissoudre dans 50 mL d’éthanol anhydre pour préparer une solution mère de DPPH à une concentration de 0,054 mg/mL et obtenir la solution de travail DPPH. REMARQUE : La solution DPPH doit être stockée dans l’obscurité.</li>
	<li>Peser avec précision 5 mg de vitamine C (Vc) dans une fiole jaugée vide de 10 mL et la dissoudre dans 10 mL d’eau déminéralisée pour préparer une solution de Vc à une concentration de 0,5 mg/mL. Diluer successivement pour préparer des solutions d’essai de Vc à des concentrations de 0,5, 0,125, 0,03125, 0,0078125 et 0,001953 mg/mL.</li>
	<li>Pesez avec précision 5 mg de chaque polysaccharide d’argousier (ZG1-ZG5 et JZ1-JZ5). Dissoudre chaque échantillon dans 10 mL d’eau déminéralisée pour préparer des solutions d’échantillon de polysaccharide d’argousier à une concentration de 0,5 mg/mL. Diluer successivement les solutions ci-dessus pour préparer des solutions d’essai de polysaccharidique d’argousier à des concentrations de 0,5, 0,125, 0,03125, 0,0078125 et 0,001953 mg/mL.</li>
	<li>En utilisant la solution de DPPH comme substrat, préparer les groupes suivants dans une plaque à 96 puits : groupe témoin négatif A0 (150 μL d’eau et 50 μL de solution de DPPH), groupe d’échantillons A1 (150 μL d’échantillon ou de solution de Vc et 50 μL de solution de DPPH) et groupe de contrôle d’échantillon A2 (150 μL d’échantillon et 50 μL d’éthanol anhydre). Effectuez cette procédure en trois exemplaires.</li>
	<li>Laissez la réaction se poursuivre pendant 30 minutes dans l’obscurité. Ensuite, mesurez l’absorbance à 517 nm. Répétez l’expérience trois fois et calculez le taux de piégeage des radicaux libres DPPH à l’aide de l’équation (3). REMARQUE : L’absorbance de la solution de DPPH doit être maintenue à 0,7 ± 0,02. Des concentrations excessivement élevées et trop faibles peuvent entraîner des lectures d’absorbance inexactes, affectant ainsi les résultats expérimentaux finaux. 
	<img alt="Equation 3" src="/files/ftp_upload/68855/68855eq03.jpg" style="margin: auto;"> Dans l’équation (3), A0 est l’absorbance de l’eau désionisée et de la solution de DPPH, A1 est l’absorbance de l’échantillon ou de la solution de Vc et de DPPH, et A2 est l’absorbance de l’échantillon et de l’éthanol anhydre.</li>
	<li>Calcul de la concentration demi-inhibitrice (Ic50)<ol>
		<li>Générer un tableau de données visuellement organisé illustrant la corrélation entre les concentrations de composés d’essai de réaction (0,5, 0,125, 0,03125, 0,0078125 et 0,001953 mg/mL) et leurs valeurs de réaction en pourcentage correspondantes.</li>
		<li>Utilisez l’ajustement de courbe non linéaire (avec GraphPad Prism) pour déterminer l’IC50 et l’erreur standard.</li>
	</ol>
	</li>
</ol>

<ol><li>Chinese Pharmacopoeia Committee. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=%22Pharmacopoeia+of+the+People%27s+Republic+of+China%22">Pharmacopoeia of the People's Republic of China</a>. 1, Chinese Medical Science and Technology Press. (2025).</li>
<li>Su, S. Y., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Structure+elucidation%2C+immunomodulatory+activity%2C+antitumor+activity+and+its+molecular+mechanism+of+a+novel+polysaccharide+from+Boletusreticulatus+Schaeff%5BTitle%5D)+AND+%22Food+Sci+Hum+Wellness%22%5BJournal%5D)">Structure elucidation, immunomodulatory activity, antitumor activity and its molecular mechanism of a novel polysaccharide from Boletusreticulatus Schaeff.</a> Food Sci Hum Wellness. 12 (2), 647-661 (2023).</li>
<li>Wang, Y. X., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Utilizing+relative+ordered+structure+theory+to+guide+polysaccharide+purification+for+structural+characterization%5BTitle%5D)+AND+%22Food+Hydrocoll%22%5BJournal%5D)">Utilizing relative ordered structure theory to guide polysaccharide purification for structural characterization.</a> Food Hydrocoll. 115, 106603(2021).</li>
<li>Zhang, W., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Seabuckthorn+berry+polysaccharide+protects+against+carbon+tetrachloride-induced+hepatotoxicity+in+mice%3A+via+anti-oxidative+and+anti-inflammatory+activities%5BTitle%5D)+AND+%22Food+Funct%22%5BJournal%5D)">Seabuckthorn berry polysaccharide protects against carbon tetrachloride-induced hepatotoxicity in mice: via anti-oxidative and anti-inflammatory activities.</a> Food Funct. 8 (9), 3130-3138 (2017).</li>
<li>Wang, X., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Seabuckthorn+berry+polysaccharide+extracts+protect+against+acetaminophen+induced+hepatotoxicity+in+mice+via+activating+the+Nrf-2%2FHO-1-SOD-2+signaling+pathway%5BTitle%5D)+AND+%22Phytomedicine%22%5BJournal%5D)">Seabuckthorn berry polysaccharide extracts protect against acetaminophen induced hepatotoxicity in mice via activating the Nrf-2/HO-1-SOD-2 signaling pathway.</a> Phytomedicine. 38, 90-97 (2018).</li>
<li>Zhao, L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Proteomic+analysis+reveals+the+molecular+mechanism+of+Hippophae+rhamnoides+polysaccharide+intervention+in+LPS-induced+inflammation+of+IPEC-J2+cells+in+piglets%5BTitle%5D)+AND+%22Int+J+Biol+Macromol%22%5BJournal%5D)">Proteomic analysis reveals the molecular mechanism of Hippophae rhamnoides polysaccharide intervention in LPS-induced inflammation of IPEC-J2 cells in piglets.</a> Int J Biol Macromol. 164, 3294-3304 (2020).</li>
<li>Chen, J. H., Chen, X., Zhou, G. H., Xu, X. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Ultrasound%3A+a+reliable+method+for+regulating+food+component+interactions+in+protein-based+food+matrices%5BTitle%5D)+AND+%22Trends+Food+Sci+Technol%22%5BJournal%5D)">Ultrasound: a reliable method for regulating food component interactions in protein-based food matrices.</a> Trends Food Sci Technol. 128, 316-330 (2022).</li>
<li>Pundir, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Ethnomedicinal+uses%2C+phytochemistry+and+dermatological+effects+of+Hippophae+rhamnoides+L.%3A+A+review%5BTitle%5D)+AND+%22J+Ethnopharmacol%22%5BJournal%5D)">Ethnomedicinal uses, phytochemistry and dermatological effects of Hippophae rhamnoides L.: A review.</a> J Ethnopharmacol. 266, 113434(2021).</li>
<li>Teng, H., He, Z. G., Hong, C. Z., Xie, S. Z., Zha, X. Q. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Extraction%2C+purification%2C+structural+characterization+and+pharmacological+activities+of+polysaccharides+from+sea+buckthorn+%28Hippophae+rhamnoides+L.%29%3A+A+review%5BTitle%5D)+AND+%22J+Ethnopharmacol%22%5BJournal%5D)">Extraction, purification, structural characterization and pharmacological activities of polysaccharides from sea buckthorn (Hippophae rhamnoides L.): A review.</a> J Ethnopharmacol. 324, 117809(2024).</li>
<li>Niu, H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Pectin-stabilized+emulsions%3A+Structure-emulsification+relationships%2C+covalent+and+non-covalent+modifications%2C+and+future+trends%5BTitle%5D)+AND+%22Trends+Food+Sci+Technol%22%5BJournal%5D)">Pectin-stabilized emulsions: Structure-emulsification relationships, covalent and non-covalent modifications, and future trends.</a> Trends Food Sci Technol. 159, 104986(2025).</li>
<li>Dou, Z. M., Chen, C., Huang, Q., Fu, X. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+structure%2C+conformation%2C+and+hypoglycemic+activity+of+a+novel+heteropolysaccharide+from+the+blackberry+fruit%5BTitle%5D)+AND+%22Food+Funct%22%5BJournal%5D)">The structure, conformation, and hypoglycemic activity of a novel heteropolysaccharide from the blackberry fruit.</a> Food Funct. 12 (12), 5451-5464 (2021).</li>
<li>Niu, H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Multiscale+combined+techniques+for+evaluating+emulsion+stability%3A+A+critical+review%5BTitle%5D)+AND+%22Adv+Colloid+Interface+Sci%22%5BJournal%5D)">Multiscale combined techniques for evaluating emulsion stability: A critical review.</a> Adv Colloid Interface Sci. 311, 102813(2023).</li>
<li>Yuan, D., Li, C., Huang, Q., Fu, X. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Ultrasonic+degradation+effects+on+the+physicochemical%2C+rheological+and+antioxidant+properties+of+polysaccharide+from+Sargassum+pallidum%5BTitle%5D)+AND+%22Carbohydr+Polym%22%5BJournal%5D)">Ultrasonic degradation effects on the physicochemical, rheological and antioxidant properties of polysaccharide from Sargassum pallidum.</a> Carbohydr Polym. 239, 116230(2020).</li>
<li>Chen, R., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Extraction%2C+structural+characterization+and+biological+activities+of+polysaccharides+from+mulberry+leaves%3A+A+review%5BTitle%5D)+AND+%22Int+J+Biol+Macromol%22%5BJournal%5D)">Extraction, structural characterization and biological activities of polysaccharides from mulberry leaves: A review.</a> Int J Biol Macromol. 257, 128669(2024).</li>
<li>Lei, J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Pressurized+hot+water+extraction%2C+structural+properties%2C+biological+effects%2C+and+in+vitro+microbial+fermentation+characteristics+of+sweet+tea+polysaccharide%5BTitle%5D)+AND+%22Int+J+Biol+Macromol%22%5BJournal%5D)">Pressurized hot water extraction, structural properties, biological effects, and in vitro microbial fermentation characteristics of sweet tea polysaccharide.</a> Int J Biol Macromol. 222 (Pt B), 3215-3228 (2022).</li>
<li>Chen, F., Huang, G. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Antioxidant+activity+of+polysaccharides+from+different+sources+of+ginseng%5BTitle%5D)+AND+%22Int+J+Biol+Macromol%22%5BJournal%5D)">Antioxidant activity of polysaccharides from different sources of ginseng.</a> Int J Biol Macromol. 125, 906-908 (2019).</li>
<li>Chen, Y. F., Yang, H., Shen, Z. Z., Ye, J. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Whole-genome+sequencing+and+potassium-solubilizing+mechanism+of+Bacillus+aryabhattai+SK1-7%5BTitle%5D)+AND+%22Front+Microbiol%22%5BJournal%5D)">Whole-genome sequencing and potassium-solubilizing mechanism of Bacillus aryabhattai SK1-7.</a> Front Microbiol. 12, 722379(2022).</li>
<li>Yun, Y. H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+green+method+for+the+quantification+of+polysaccharides+in+Dendrobium+officinale%5BTitle%5D)+AND+%22RSC+Adv%22%5BJournal%5D)">A green method for the quantification of polysaccharides in Dendrobium officinale.</a> RSC Adv. 5, 105057-105065 (2015).</li>
<li>Kim, J. M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Quantitative+determination+of+fucoidan+using+polyion-sensitive+membrane+electrodes%5BTitle%5D)+AND+%22Anal+Chim+Acta%22%5BJournal%5D)">Quantitative determination of fucoidan using polyion-sensitive membrane electrodes.</a> Anal Chim Acta. 877, 1-8 (2015).</li>
<li>Ogura, I., Sugiyama, M., Tai, R., Mano, H., Matsuzawa, T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Optimization+of+microplate-based+phenol-sulfuric+acid+method+and+application+to+the+multi-sample+measurements+of+cellulose+nanofibers%5BTitle%5D)+AND+%22Anal+Biochem%22%5BJournal%5D)">Optimization of microplate-based phenol-sulfuric acid method and application to the multi-sample measurements of cellulose nanofibers.</a> Anal Biochem. 681, 115329(2023).</li>
<li>Wen, J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Polysaccharides+from+sea+buckthorn+-+Ultrasound-assisted+enzymatic+extraction%2C+purification%2C+structural+characterization%2C+and+antioxidant+activity+analysis%5BTitle%5D)+AND+%22Food+Chem+X%22%5BJournal%5D)">Polysaccharides from sea buckthorn - Ultrasound-assisted enzymatic extraction, purification, structural characterization, and antioxidant activity analysis.</a> Food Chem X. 26, 102265(2025).</li>
<li>Yue, F. F., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Effects+of+monosaccharide+composition+on+quantitative+analysis+of+total+sugar+content+by+phenol-sulfuric+acid+method%5BTitle%5D)+AND+%22Front+Nutr%22%5BJournal%5D)">Effects of monosaccharide composition on quantitative analysis of total sugar content by phenol-sulfuric acid method.</a> Front Nutr. 9, 963318(2022).</li>
<li>Dou, Z. M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Pectin-type+polysaccharides+from+raspberry+%28Rubus+idaeus+L.%29%3A+structure+characterization+and+activity+against+DSS-induced+colitis%5BTitle%5D)+AND+%22Carbohydr+Polym%22%5BJournal%5D)">Pectin-type polysaccharides from raspberry (Rubus idaeus L.): structure characterization and activity against DSS-induced colitis.</a> Carbohydr Polym. 364, 123710(2025).</li>
<li>Li, Q., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((%CE%B1-D-1%2C3-glucan+from+Radix+Puerariae+thomsonii+improves+NAFLD+by+regulating+the+intestinal+flora+and+metabolites%5BTitle%5D)+AND+%22Carbohydr+Polym%22%5BJournal%5D)">α-D-1,3-glucan from Radix Puerariae thomsonii improves NAFLD by regulating the intestinal flora and metabolites.</a> Carbohydr Polym. 299, 120197(2023).</li>
<li>Dou, Z. M., Chen, C., Fu, X. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Digestive+property+and+bioactivity+of+blackberry+polysaccharides+with+different+molecular+weights%5BTitle%5D)+AND+%22J+Agric+Food+Chem%22%5BJournal%5D)">Digestive property and bioactivity of blackberry polysaccharides with different molecular weights.</a> J Agric Food Chem. 67 (45), 12428-12440 (2019).</li>
<li>Zhou, S. Y., Huang, G. L., Huang, H. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Extraction%2C+derivatization+and+antioxidant+activities+of+onion+polysaccharide%5BTitle%5D)+AND+%22Food+Chem%22%5BJournal%5D)">Extraction, derivatization and antioxidant activities of onion polysaccharide.</a> Food Chem. 388, 133000-133009 (2022).</li>
<li>Musa, K. H., Abdullah, A., Kuswandi, B., Hidayat, M. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+novel+high+throughput+method+based+on+the+DPPH+dry+reagent+array+for+determination+of+antioxidant+activity%5BTitle%5D)+AND+%22Food+Chem%22%5BJournal%5D)">A novel high throughput method based on the DPPH dry reagent array for determination of antioxidant activity.</a> Food Chem. 141 (4), 4102-4106 (2013).</li>
<li>Garcia, E. J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Antioxidant+activity+by+DPPH+assay+of+potential+solutions+to+be+applied+on+bleached+teeth%5BTitle%5D)+AND+%22Braz+Dent+J%22%5BJournal%5D)">Antioxidant activity by DPPH assay of potential solutions to be applied on bleached teeth.</a> Braz Dent J. 23 (1), 22-27 (2012).</li>
<li>Wei, A., Shibamoto, T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Antioxidant%2Flipoxygenase+inhibitory+activities+and+chemical+compositions+of+selected+essential+oils%5BTitle%5D)+AND+%22J+Agric+Food+Chem%22%5BJournal%5D)">Antioxidant/lipoxygenase inhibitory activities and chemical compositions of selected essential oils.</a> J Agric Food Chem. 58 (12), 7218-7225 (2010).</li>
<li>Song, Y. C. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=%22Extraction%2C+purification+and+modulation+of+mice+gut+microbiota+by+sea+buckthorn+polysaccharides%22">Extraction, purification and modulation of mice gut microbiota by sea buckthorn polysaccharides</a>. , Xihua University. (2022).</li>
<li>Dong, N., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Exploring+quality+variations+of+Polygonati+Rhizoma+during+nine-steaming+and+nine-drying+process+through+color-polysaccharides-antioxidant+activity+linkages%5BTitle%5D)+AND+%22Chin+Tradit+Herbal+Drugs%22%5BJournal%5D)">Exploring quality variations of Polygonati Rhizoma during nine-steaming and nine-drying process through color-polysaccharides-antioxidant activity linkages.</a> Chin Tradit Herbal Drugs. 56 (2), 476-486 (2025).</li>
<li>Rumpf, J., Burger, R., Schulze, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Statistical+evaluation+of+DPPH%2C+ABTS%2C+FRAP%2C+and+Folin-Ciocalteu+assays+to+assess+the+antioxidant+capacity+of+lignins%5BTitle%5D)+AND+%22Int+J+Biol+Macromol%22%5BJournal%5D)">Statistical evaluation of DPPH, ABTS, FRAP, and Folin-Ciocalteu assays to assess the antioxidant capacity of lignins.</a> Int J Biol Macromol. 233, 123470(2023).</li>
<li>Zhang, C. C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Research+progress+in+microevolutionary+process+of+excellent+traits+and+quality+of+Dao-di+herbs%5BTitle%5D)+AND+%22Chin+Mater+Med%22%5BJournal%5D)">Research progress in microevolutionary process of excellent traits and quality of Dao-di herbs.</a> Chin Mater Med. 48 (22), 6021-6029 (2023).</li>
<li>Li, X. W., Zhang, H. T., Zhang, Z. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+relation+between+contents+of+flavonoids+in+leaves+of+Hippophae+tibetana+Schlecht.+and+ecological+factors%5BTitle%5D)+AND+%22J+Ecological+Environ%22%5BJournal%5D)">The relation between contents of flavonoids in leaves of Hippophae tibetana Schlecht. and ecological factors.</a> J Ecological Environ. 27 (02), 239-245 (2018).</li>
<li>Li, C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Characterization%2C+antioxidant+and+immunomodulatory+activities+of+polysaccharides+from+Prunella+vulgaris+Linn%5BTitle%5D)+AND+%22Int+J+Biol+Macromol%22%5BJournal%5D)">Characterization, antioxidant and immunomodulatory activities of polysaccharides from Prunella vulgaris Linn.</a> Int J Biol Macromol. 75, 298-305 (2015).</li>
<li>Cao, C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Physicochemical+characterization%2C+potential+antioxidant+and+hypoglycemic+activity+of+polysaccharide+from+Sargassum+pallidum%5BTitle%5D)+AND+%22Int+J+Biol+Macromol%22%5BJournal%5D)">Physicochemical characterization, potential antioxidant and hypoglycemic activity of polysaccharide from Sargassum pallidum.</a> Int J Biol Macromol. 139, 1009-1017 (2019).</li>
<li>Li, Q. Y., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+comparison+study+on+structure-function+relationship+of+polysaccharides+obtained+from+sea+buckthorn+berries+using+different+methods%3A+antioxidant+and+bile+acid-binding+capacity%5BTitle%5D)+AND+%22Food+Sci+Hum+Wellness%22%5BJournal%5D)">A comparison study on structure-function relationship of polysaccharides obtained from sea buckthorn berries using different methods: antioxidant and bile acid-binding capacity.</a> Food Sci Hum Wellness. 13 (1), 494-505 (2024).</li>
</ol>

<table><tbody><tr><td>Balance analytique (avec une précision de 0,0001 g)</td><td>Sartorius Scientific Instruments (Pékin) Co., Ltd.</td><td>BSA224S-CW</td><td></td></tr><tr><td>Balance analytique (avec une précision de 0,00001 g)</td><td>Sartorius Scientific Instruments (Pékin) Co., Ltd.</td><td>CPA225D</td><td></td></tr><tr><td>Centrifugeuse de paillasse à basse vitesse</td><td>Shanghai Zigui Instrument Co., Ltd.</td><td>TD4K-Z</td><td></td></tr><tr><td>DPPH</td><td>Shanghai Yuanye Bio-Technology Co., Ltd.</td><td>CAS 1898-66-4</td><td></td></tr><tr><td>Éthanol</td><td>Chengdu Kelong Chemical Products Co., Ltd.</td><td>NCA 64-17-5</td><td></td></tr><tr><td>Tube EP</td><td>Hunan BKMAK Holding Co., Ltd.</td><td>BS-20-M</td><td>2 mL</td></tr><tr><td>Lyophilisateur</td><td>Société Labconco</td><td>LABCONCO</td><td></td></tr><tr><td>Glucose anhydre</td><td>Chengdu Kelong Chemical Products Co., Ltd.</td><td>NCA 50-99-7</td><td>Étalon de référence</td></tr><tr><td>Bloc-notes graphique&nbsp ; Prim 9.5.0&nbsp ;</td><td>Logiciel GraphPad</td><td>N/A</td><td>Déterminez la valeur IC50 et la valeur P.</td></tr><tr><td>Four de séchage à circulation d’air chaud</td><td>Shanghai Yiheng Technology Instrument Co., Ltd.</td><td>NB-DGG-9070A</td><td></td></tr><tr><td>Acide L-ascorbique</td><td>Beijing Labgic Technology Co., Ltd.</td><td>NCA 50-81-7</td><td>médicament témoin positif</td></tr><tr><td>Lecteur de microplaques</td><td>Shanghai Shanpu Biotechnology Co., Ltd.</td><td>Lecture Max 1500</td><td></td></tr><tr><td>Plaque à 96 puits</td><td>Beijing Labgic Technology Co., Ltd.</td><td>11512</td><td></td></tr><tr><td>OriginPro 2025</td><td>Laboratoire d’origine</td><td>N/A</td><td>Créer un graphique linéaire du taux de liquidation</td></tr><tr><td>POINTES DE PIPETTE</td><td>Beijing Labgic Technology Co., Ltd.</td><td>BS-200-T</td><td>200 &mu ; L</td></tr><tr><td>POINTES DE PIPETTE</td><td>Beijing Labgic Technology Co., Ltd.</td><td>T-1000-B</td><td>1000 &mu ; L</td></tr><tr><td>Phénol</td><td>Chengdu Kelong Chemical Products Co., Ltd.</td><td>NCA 108-95-2</td><td></td></tr><tr><td>Évaporateur rotatif</td><td>&nbsp ; BUCHI Laboratory Equipment Trading (Shanghai) Ltd.</td><td>Buchi R-100</td><td></td></tr><tr><td>Système d’eau pure de type réactif standard</td><td>Qingdao Flom Technology Co., Ltd.</td><td>FBZ2001-up-p</td><td></td></tr><tr><td>Bain-marie thermostatique à affichage numérique</td><td>Guan’an Scientific Instruments (Zhejiang) Co., Ltd.</td><td>WB100-6F</td><td></td></tr><tr><td>Spectrophotomètre UV-Visible</td><td>Shanghai Mapada Instruments Co., Ltd.&nbsp ;</td><td>V-1100D</td><td></td></tr><tr><td>Nettoyeur à ultrasons</td><td>Sheng Zheng ChaoJie Industrial Co., Ltd.</td><td>CJ-060SD</td><td>Nettoyeur à ultrasons 360 W 50 Hz</td></tr></tbody></table>

etude comparative sur la teneur en polysaccharides et l’activité antioxydante d’hippophae rhamnoides subsp. sinensis et d’hippophae gyantsensis

Comparative Study on the Polysaccharide Contents and Antioxidant Activities of Hippophae rhamnoides subsp. sinensis and Hippophae gyantsensis

Rendement en polysaccharides bruts Les polysaccharides ont été extraits par HWE. Le reflux du bain d’eau est illustré à la figure supplémentaire 1. La concentration de la solution d’extrait polysaccharidique est illustrée à la figure supplémentaire 2. L’effet de stratification de la centrifugation après déprotéination est présenté dans la figure supplémentaire 3. Les cinq lots de H. rhamnoides subsp. sinensis ont des rendements en po...

Etude comparative sur la teneur en polysaccharides et l’activité antioxydante d’Hippophae rhamnoides subsp. sinensis et d’Hippophae gyantsensis

This paper reports a well-designed and in-depth comparative study on the polysaccharide yields, contents, and antioxidant activities of two Hippophae ...

comparative-study-on-polysaccharide-contents-antioxidant-activities

Research

Recherche

JoVE Journal

Chemistry

Chimie

Nous présentons un protocole pour l’utilisation de l’éthanol comme solvant d’extraire et de caractériser la propolis verte taïwanaise qui présente une activité antibactérienne.

Extraction et analyse des taïwanaise Propolis verte

Les acides phénoliques sont des composés phytochimiques importants présents dans les grains entiers. Ils possèdent des propriétés bioactives telles que des fonctions protectrices antioxydantes. Ces travaux visaient à rendre compte d’une méthode généralisée pour l’identification HPLC, l’estimation de la teneur totale en phénols et la détermination de la capacité antioxydante des acides phénoliques dans les céréales et les légumineuses.

Méthode généralisée de détermination de la composition en acide phénolique soluble libre et de la capacité antioxydante des céréales et des légumineuses

L’objectif de ce protocole est de détecter les métabolites phénoliques dans le plasma à l’aide d’une méthode de chromatographie-spectrométrie de masse semi-ciblée.

Chromatographie ultra-haute performance semi-ciblée couplée à l’analyse par spectrométrie de masse des métabolites phénoliques dans le plasma des adultes âgés

Le présent protocole décrit les étapes de purification et les études ultérieures de quatre β-glucanes fongiques différents en tant que molécules immunomodulatrices potentielles qui améliorent les propriétés antitumorales de la microglie contre les cellules de glioblastome.

Isolement et purification du β-glucane fongique comme stratégie d’immunothérapie pour le glioblastome

Ici, nous introduisons une méthode d’évaluation de la stabilité basée sur une technologie de diffusion de la lumière multiple pour évaluer la stabilité des extraits de médecine traditionnelle chinoise.

Utilisation de plusieurs diffusions de la lumière pour examiner la stabilité des extraits de Phyllanthus emblica L. obtenus avec différentes méthodes d’extraction

Nous décrivons ici plusieurs protocoles visant à une valorisation intégrée de Gracilaria gracilis : récolte d’espèces sauvages, culture en interne et extraction de principes bioactifs. Les effets antioxydants, antimicrobiens et cytotoxiques des extraits sont évalués, ainsi que l’évaluation nutritionnelle et de la stabilité des aliments enrichis en biomasse et pigments d’algues entières.

Valorisation de l’algue rouge Gracilaria gracilis par une approche de bioraffinage

Ce protocole détaille l’utilisation d’une méthode d’extraction assistée par micro-ondes à base de polyols pour extraire les composés phénoliques et les antioxydants naturels, représentant une approche pratique et écologiquement durable pour le développement d’extraits prêts à l’emploi.

Extraction assistée par micro-ondes de composés phénoliques et d’antioxydants pour des applications cosmétiques à l’aide de la technologie à base de polyols

Tégument des mammifères contient des lipides solvant extractible qui peuvent fournir des compositions chimiques caractéristiques de chaque espèce. Cet article présente une méthode de routine pour la séparation de larges classes de lipides isolés à partir de tissus tégumentaires en utilisant la chromatographie en couche mince et détermination du profil de triacylglycéride par désorption / ionisation laser à temps de vol par spectrométrie de masse assistée par matrice.

Profilage des matières triacylglycéride à Bat tégumentaire lipides par chromatographie sur couche mince préparative et MALDI-TOF spectrométrie de masse

En trois dimensions (3D) des poutres composites à microstructure sont fabriqués par l'infiltration dirigée et localisée des nanocomposites dans des réseaux microfluidiques poreuses 3D. La souplesse de ce procédé de fabrication permet l'utilisation de différentes matières thermodurcissables et des nanocharges dans le but de réaliser une variété de 3D fonctionnel nanocomposites renforcés produits macroscopiques.

Fabrication de trois dimensions microstructurées nanocomposites par microfluidique Infiltration

Les glycosides indoxyles sont des outils bien établis et largement utilisés pour le criblage enzymatique et la surveillance de l’activité enzymatique. En particulier pour les structures de type glucose, les synthèses précédentes se sont avérées difficiles et à faible rendement. Notre nouvelle approche utilise des esters d’acide indoxylique comme intermédiaires précieux pour produire un nombre considérable de glycosides d’indoxyle avec de bons rendements.

Synthèse d’indoxyl-glycosides pour la détection des activités de la glycosidase

Découvrez la comparaison du contenu en polysaccharides et de l'activité antioxydante entre Hippophae rhamnoides subsp. sinensis et Hippophae gyantsensis. Cette étude évalue le potentiel pharmaceutique de ces espèces.

Etude comparative sur la teneur en polysaccharides et l’activité antioxydante d’Hippophae rhamnoides subsp. sinensis et d’Hippophae gyantsensis (Vidéo) | JoVE Journal

Etude comparative sur la teneur en polysaccharides et l’activité antioxydante d’Hippophae rhamnoides subsp. sinensis et d’Hippophae gyantsensis

Explorer plus de vidéos