28 novembre 2025
Cette étude vise à développer une méthode efficace pour atteindre l’hémostasie dans les artères de la souris.
Cette recherche développe une méthode pour sceller les perforations artérielles tout en préservant le flux sanguin. Il étudie si l’enveloppement graisseux prévient l’ischémie après une ponction artérielle. Un défi expérimental clé dans cette procédure est d’obtenir une hémostasie efficace après une ponction artérielle sans provoquer d’occlusion artérielle.
Pour commencer, placez la souris anesthésiée sur la table d’opération. Après confirmation de l’anesthésie, retirez les poils des régions cervicale et crânienne à l’aide d’un dépilateur. Désinfectez la peau exposée avec de l’iode povidone, suivie d’un éthanol à 75 % pour éliminer tout résidu.
Placez la souris sur une bouillotte réglée à 37 degrés Celsius et gardez-la ainsi pendant toute la durée des procédures expérimentales. Repositionnez la souris en position couchée sur le coussin chauffant. Après avoir réalisé une incision cervicale médiane, exciser une greffe de tissu adipeux sous-cutané de trois par trois par millimètre pour une utilisation ultérieure.
Effectuer une dissection contundante de la glande sous-mandibulaire, du muscle hyoïde sternal et du muscle sternocléidomastoïdien afin d’exposer les deux artères carotides courantes. Ensuite, libérez soigneusement l’artère carotide commune pour exposer les artères carotide interne et externe. Placez la pince vasculaire un à l’extrémité distale de l’artère carotide commune, puis placez la pince vasculaire deux à l’extrémité proximale de l’artère.
Ensuite, perforez l’artère carotide commune entre les deux pinces à l’aide d’une aiguille de calibre 23. Après avoir retiré l’aiguille, enroulez l’artère carotide commune au site de la ponction en utilisant la surface coupée ou le côté non sérosique du coussinet graisseux préalablement prélevé. Placez un point 4-0 sous l’artère enveloppée de graisse.
Attachez doucement un seul jet sur la surface grasse pour appliquer une pression et assurer un contact sécurisé entre le coussin gras et la paroi du vaisseau. Ensuite, ajustez progressivement la ligature pour équilibrer la pression et obtenir une hémostasie. Élever l’artère carotide commune distale à l’aide d’un coton-tige humidifié.
Relâchez la pince vasculaire un, puis retirez lentement le prélèvement pour permettre un retour progressif du flux sanguin vers le site de la ponction. Maintenant, vérifiez le flux sanguin au site de la ponction. Si un saignement actif est observé, réappliquez une pince vasculaire sur l’artère carotide commune distale.
Après une minute, libérez lentement la pince vasculaire un. Si le saignement persiste, repositionnez le coussinet adipeux ou resserrez légèrement la ligature pour augmenter la pression jusqu’à atteindre une hémostasie complète. Élever l’artère carotide commune proximale à l’aide d’un coton-tige humidifié.
Ensuite, libérez la pince vasculaire deux et retirez lentement le prélèvement pour permettre un flux sanguin contrôlé vers le site de la ponction. En cas de saignement, réappliquez la pince vasculaire deux sur l’artère carotide commune distale. Maintenant, serrez légèrement le coup unique de la suture pour augmenter la pression et attendez une minute.
Ensuite, élever l’artère carotide commune proximale et libérer la pince vasculaire deux en roulant lentement le tampon humidifié vers le site de la ponction. Ajoutez un autre coup en utilisant la même suture pour former un double nœud sur le lancer initial, améliorant la fixation des coussinets adipeux et favorisant une hémostasie équilibrée. Confirmez que les artères carotides communes de chaque côté du coussin adipeux sont remplies et maintiennent un diamètre constant des vaisseaux, indiquant ainsi une restauration du flux sanguin réussie.
Enfin, suturez l’incision cervicale et appliquez un antiseptique sur le site de la plaie. L’imagerie laser par contraste de taches et les mesures d’unités de perfusion avant et postopératoire, tant chez des souris simulées que chez des souris opérées, n’ont montré aucun changement significatif, confirmant que le flux sanguin cérébral n’était pas compromis par la technique de l’hémostasie artérielle. L’examen histologique du tissu cérébral par coloration par hématoxyline et éosine à sept, 14 et 28 jours après l’opération chez des souris opérées et chez des souris simulées a montré une architecture tissulaire intacte dans le cortex, l’hippocampe et le thalamus sans modifications pathologiques.
La coloration de Nissl a montré un alignement neuronal organisé, une structure cellulaire normale et des corps de Nissl préservés à travers tous les groupes et points temporels, indiquant qu’aucun dommage structurel n’est dû à la fermeture artérielle. La méthode actuelle vise à sceller le site de la ponction après la procédure, tout en maintenant un flux sanguin normal, évitant ainsi l’ischémie postopératoire.
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Cette recherche développe une méthode pour sceller les ponctions artérielles tout en préservant le flux sanguin. Elle examine si l'enveloppement graisseux prévient l'ischémie après une ponction artérielle.
L'obtention d'une hémostase fiable dans les modèles artériels de petits animaux est essentielle pour la recherche vasculaire translationnelle et la validation préclinique des interventions chirurgicales. Cette technique d'enroulement par la graisse permet de préserver la perméabilité artérielle et le débit sanguin physiologique, réduisant ainsi les lésions ischémiques perturbatrices et les complications secondaires dans les modèles pertinents pour la maladie. La méthode renforce la fiabilité prédictive des études vasculaires et neurologiques en minimisant les artefacts procéduraux susceptibles de compromettre l'intégrité des données.
Cette technique s'intègre au flux de travail préclinique pour les études sur les interventions vasculaires, faisant le lien entre la phase de découverte précoce et celle de la recherche translationnelle.