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<ol><li>Knudsen, L., Ochs, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+micromechanics+of+lung+alveoli%3A+structure+and+function+of+surfactant+and+tissue+components%5BTitle%5D)+AND+%22Histochem+Cell+Biol%22%5BJournal%5D)">The micromechanics of lung alveoli: structure and function of surfactant and tissue components.</a> Histochem Cell Biol. 150 (6), 661-676 (2018).</li>
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<li>Shiraishi, K., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Biophysical+forces+mediated+by+respiration+maintain+lung+alveolar+epithelial+cell+fate%5BTitle%5D)+AND+%22Cell%22%5BJournal%5D)">Biophysical forces mediated by respiration maintain lung alveolar epithelial cell fate.</a> Cell. 186 (7), 1478-1492.e15 (2023).</li>
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<li>Huh, D., Hamilton, G. A., Ingber, D. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((From+3D+cell+culture+to+organs-on-chips%5BTitle%5D)+AND+%22Trends+Cell+Biol%22%5BJournal%5D)">From 3D cell culture to organs-on-chips.</a> Trends Cell Biol. 21 (12), 745-754 (2011).</li>
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<li>Lim, M. J., Kim, S. J., Jo, A., Kim, S. W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Enhanced+application+potential+of+alveolar+organoids+through+epithelial+and+niche+cell+interactions%5BTitle%5D)+AND+%22Sci+Rep%22%5BJournal%5D)">Enhanced application potential of alveolar organoids through epithelial and niche cell interactions.</a> Sci Rep. 15 (1), 17538(2025).</li>
<li>Schindelin, J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Fiji%3A+An+open-source+platform+for+biological-image+analysis%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Methods%22%5BJournal%5D)">Fiji: An open-source platform for biological-image analysis.</a> Nat Methods. 9 (7), 676-682 (2012).</li>
<li>Purev, E., Bahmed, K., Kosmider, B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Alveolar+organoids+in+lung+disease+modeling%5BTitle%5D)+AND+%22Biomolecules%22%5BJournal%5D)">Alveolar organoids in lung disease modeling.</a> Biomolecules. 14 (1), 115(2024).</li>
<li>Manuyakorn, W., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Mechanical+strain+causes+adaptive+change+in+bronchial+fibroblasts+enhancing+profibrotic+and+inflammatory+responses%5BTitle%5D)+AND+%22PLoS+One%22%5BJournal%5D)">Mechanical strain causes adaptive change in bronchial fibroblasts enhancing profibrotic and inflammatory responses.</a> PLoS One. 11 (4), e0153926(2016).</li>
<li>Kılıç, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Mechanical+forces+induce+an+asthma+gene+signature+in+healthy+airway+epithelial+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Sci+Rep%22%5BJournal%5D)">Mechanical forces induce an asthma gene signature in healthy airway epithelial cells.</a> Sci Rep. 10 (1), 966(2020).</li>
<li>Tam, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Hedgehog+signaling+as+a+therapeutic+target+for+airway+remodeling+and+inflammation+in+allergic+asthma%5BTitle%5D)+AND+%22Cells%22%5BJournal%5D)">Hedgehog signaling as a therapeutic target for airway remodeling and inflammation in allergic asthma.</a> Cells. 11 (19), 3016(2022).</li>
<li>Georas, S. N., Rezaee, F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Epithelial+barrier+function%3A+at+the+front+line+of+asthma+immunology+and+allergic+airway+inflammation%5BTitle%5D)+AND+%22J+Allergy+Clin+Immunol%22%5BJournal%5D)">Epithelial barrier function: at the front line of asthma immunology and allergic airway inflammation.</a> J Allergy Clin Immunol. 134 (3), 509-520 (2014).</li>
<li>Ivanov, A. I., Parkos, C. A., Nusrat, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cytoskeletal+regulation+of+epithelial+barrier+function+during+inflammation%5BTitle%5D)+AND+%22Am+J+Pathol%22%5BJournal%5D)">Cytoskeletal regulation of epithelial barrier function during inflammation.</a> Am J Pathol. 177 (2), 512-524 (2010).</li>
<li>Barnett, K. C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((An+epithelial-immune+circuit+amplifies+inflammasome+and+IL-6+responses+to+SARS-CoV-2%5BTitle%5D)+AND+%22Cell+Host+Microbe%22%5BJournal%5D)">An epithelial-immune circuit amplifies inflammasome and IL-6 responses to SARS-CoV-2.</a> Cell Host Microbe. 31 (2), 243-259.e6 (2023).</li>
<li>Li, Y., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((HB-EGF-induced+IL-8+secretion+from+airway+epithelium+leads+to+lung+fibroblast+proliferation+and+migration%5BTitle%5D)+AND+%22BMC+Pulm+Med%22%5BJournal%5D)">HB-EGF-induced IL-8 secretion from airway epithelium leads to lung fibroblast proliferation and migration.</a> BMC Pulm Med. 21 (1), 347(2021).</li>
<li>Guo, T. J. F., Singhera, G. K., Leung, J. M., Dorscheid, D. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Airway+epithelial-derived+immune+mediators+in+COVID-19%5BTitle%5D)+AND+%22Viruses%22%5BJournal%5D)">Airway epithelial-derived immune mediators in COVID-19.</a> Viruses. 15 (8), 1655(2023).</li>
<li>Thomas, D., Choi, S., Alamana, C., Parker, K. K., Wu, J. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cellular+and+engineered+organoids+for+cardiovascular+models%5BTitle%5D)+AND+%22Circ+Res%22%5BJournal%5D)">Cellular and engineered organoids for cardiovascular models.</a> Circ Res. 130 (12), 1780-1802 (2022).</li>
<li>Li, K., He, Y., Jin, X., Jin, K., Qian, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Reproducible+extracellular+matrices+for+tumor+organoid+culture%3A+challenges+and+opportunities%5BTitle%5D)+AND+%22J+Transl+Med%22%5BJournal%5D)">Reproducible extracellular matrices for tumor organoid culture: challenges and opportunities.</a> J Transl Med. 23 (1), 497(2025).</li>
<li>Vande Geest, J. P., Di Martino, E. S., Vorp, D. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((An+analysis+of+the+complete+strain+field+within+Flexercell+membranes%5BTitle%5D)+AND+%22J+Biomech%22%5BJournal%5D)">An analysis of the complete strain field within Flexercell membranes.</a> J Biomech. 37 (12), 1923-1928 (2004).</li>
<li>Mondoñedo, J. R., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+high-throughput+system+for+cyclic+stretching+of+precision-cut+lung+slices+during+acute+cigarette+smoke+extract+exposure%5BTitle%5D)+AND+%22Front+Physiol%22%5BJournal%5D)">A high-throughput system for cyclic stretching of precision-cut lung slices during acute cigarette smoke extract exposure.</a> Front Physiol. 11, 566(2020).</li>
</ol>

<a href="https://app.jove.com/t/6700">This corrects</a> the article <a href="https://dx.doi.org/10.3791/69447">10.3791/69447</a>

An erratum was issued for:&#160;<a href="https://www.jove.com/t/69447">Generation of 3D Collagen-Embedded A549/MRC-5 Alveolar Organoids using a Mechanical Cell-Stretching Bioreactor</a>.&#160;

Erratum: Generation of 3D Collagen-Embedded A549/MRC-5 Alveolar Organoids using a Mechanical Cell-Stretching Bioreactor

<table><tbody><tr><td>Tube microcentrifuge de 1,5 mL</td><td>Eppendorf</td><td>0030 125.215</td><td></td></tr><tr><td>Tube conique de 15 mL</td><td>Fisher Scientific</td><td>14-959-53A</td><td></td></tr><tr><td>16 % de paraformaldéhyde</td><td>Thermo Fisher Scientific</td><td>28908</td><td></td></tr><tr><td>2-mercaptoéthanol</td><td>Millipore Sigma</td><td>M3148</td><td></td></tr><tr><td>Tube conique de 50 mL</td><td>Fisher Scientific</td><td>14-432-22</td><td></td></tr><tr><td>Plaque circulaire en mousse Tissue Train à 6 puits (membrane flexible)</td><td>Flexcell International</td><td>TTCF-5001</td><td></td></tr><tr><td>Cellules A549</td><td>Collection de culture de type américain (ATCC)</td><td>CCL-171</td><td></td></tr><tr><td>Compresseur d’air</td><td>Outils pneumatiques de Californie</td><td>10020DSPCAD</td><td></td></tr><tr><td>Albumine sérique bovine</td><td>Millipore Sigma</td><td>A9418</td><td></td></tr><tr><td>Buffer RLT</td><td>Qiagen</td><td>79216</td><td></td></tr><tr><td>Incubateur CO2</sous></td><td>PHCBI</td><td>MCO-170AICUVL-PA</td><td></td></tr><tr><td>Solution de prélèvement d’organoïdes Cultrex</td><td>Bio-Techne</td><td>3700-100-01</td><td></td></tr><tr><td>Kit de test de cytotoxicité CyQUANT LDH</td><td>Thermo Fisher Scientific</td><td>C20300</td><td></td></tr><tr><td>DAPI (4&prime ;,6-diamidino-2-phénylindole)</td><td>Thermo Fisher Scientific</td><td>D1306</td><td></td></tr><tr><td>Diméthylsulfoxyde</td><td>Sigma Aldrich</td><td>D2650-100ML</td><td></td></tr><tr><td>Dulbecco » s modifié Eagle' Medium s (DMEM)</td><td>Thermo Fisher Scientific</td><td>11965092</td><td></td></tr><tr><td>Microscope à noyau EVOS XL</td><td>Thermo Fisher Scientific</td><td>AMEX1200</td><td></td></tr><tr><td>Sérum fœtal bovin (FBS)</td><td>Thermo Fisher Scientific</td><td>A5209501</td><td></td></tr><tr><td>Logiciels d’analyse d’image fidjiennes</td><td>Instituts nationaux de la santé</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Système de tension et de tissu Flexcell FX-6000 (comprend un contrôleur de tension Flexlink FX-6000, un réservoir de pression, une plaque de base, une fenêtre en acrylique, des stations de chargement cylindriques de 25 mm de diamètre, un siphon à eau, le logiciel FlexSoft FX-6000 V1.0, et divers tubes)</td><td>Flexcell International</td><td>FX6000T</td><td></td></tr><tr><td>Interleukin-6 Duoset Humé ELISA</td><td>Bio-Techne</td><td>DY206</td><td></td></tr><tr><td>Interleukine-8 Duoset Humé ELISA</td><td>Bio-Techne</td><td>DY208</td><td></td></tr><tr><td>Microscope confocal Leica DMi8</td><td>Leica Microsystems</td><td>11889122</td><td></td></tr><tr><td>Matrice membranaire de socle Matrigel</td><td>Corning</td><td>356237</td><td></td></tr><tr><td>Cellules MRC-5</td><td>ATCC</td><td>CCL-185</td><td></td></tr><tr><td>Parafilm</td><td>Millipore Sigma</td><td>P7793</td><td></td></tr><tr><td>Pénicilline/streptomycine (Pen/Streptocococcique)</td><td>Thermo Fisher Scientific</td><td>15140122</td><td></td></tr><tr><td>Sondes de marquage phaloïdines, Alexa Fluor 488</td><td>Thermo Fisher Scientific</td><td>A12379</td><td></td></tr><tr><td>Solution physiologique tamponnée au phosphate (PBS)</td><td>Thermo Fisher Scientific</td><td>14190-144</td><td></td></tr><tr><td>Collagène queue de rat I</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>C3867</td><td></td></tr><tr><td>Protéine lactate déshydrogénase humaine recombinante (active)</td><td>Abcam</td><td>Ab93699</td><td></td></tr><tr><td>Tampon de lyse RIPA</td><td>Thermo Fisher Scientific</td><td>89901</td><td></td></tr><tr><td>Tubes microfuge sans RNase</td><td>Thermo Fisher Scientific</td><td>AM12400</td><td></td></tr><tr><td>Flasque de culture T75 cm2 flasque de culture</td><td>Greiner</td><td>658175</td><td></td></tr><tr><td>Triton X-100</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>X100-5ML</td><td></td></tr><tr><td>Anticorps monoclonal ZO-1 (ZO1-1A12), Alexa Fluor 594</td><td>Thermo Fisher Scientific</td><td>339194</td><td></td></tr></tbody></table>

génération d’organoïdes alvéolaires a549/mrc-5 intégrés en collagène 3d à l’aide d’un bioréacteur mécanique à étirement cellulaire

Generation of 3D Collagen-Embedded A549/MRC-5 Alveolar Organoids using a Mechanical Cell-Stretching Bioreactor

Génération d’organoïdes alvéolaires A549/MRC-5 intégrés en collagène 3D à l’aide d’un bioréacteur mécanique à étirement cellulaire

Although breathing dynamics and mechanical strain play critical roles in alveolar biology, their contributions to the pathogenesis of respiratory diseases ...

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Bioingénierie

Une méthode est décrite pour la préparation d'une matrice tridimensionnelle composée de collagène de type I et de fibroblastes humains primaires. Ce gel organotypique constitue un substrat utile pour évaluer la migration cellulaire invasive, car il imite les caractéristiques fondamentales du stroma tissulaire et se prête à de nombreuses formes de microscopie.

Organotypiques de collagène I Dosage: Une plate-forme malléable pour évaluer le comportement des cellules dans un contexte 3-Dimensional

Un nouveau protocole d’imagerie a été développé à l’aide d’un actionneur mécanique motorisé personnalisé pour permettre la mesure des réponses en temps réel à la déformation mécanique dans les cellules vivantes. Pertinent pour la mécanobiologie, le système peut appliquer des contraintes allant jusqu’à 20 % tout en permettant une imagerie en temps quasi réel avec la microscopie confocale ou à force atomique.

Imagerie sur cellule vivante pendant stretch mécanique

Dans ce travail, nous présentons une technique de fabrication rapide de tissus vasculaires vivants par culture directe de collagène, de cellules musculaires lisses et de cellules endothéliales. De plus, un nouveau protocole pour la caractérisation mécanique des tissus vasculaires modifiés est décrit.

Ingénierie 3D cellularisé collagène Gels pour la régénération tissulaire vasculaire

L’article décrit la différenciation dirigée par étapes des cellules souches pluripotentes induites en organoïdes pulmonaires entiers tridimensionnels contenant à la fois des cellules pulmonaires épithéliales proximales et distales ainsi que du mésenchyme.

Génération d’organoïdes pulmonaires entiers 3D à partir de cellules souches pluripotentes induites pour la modélisation de la biologie et de la maladie du développement pulmonaire

Ce protocole présente une méthode pour la culture et la croissance 3D de cellules de type améloblaste en microgravité afin de maintenir leur forme allongée et polarisée ainsi que l’expression protéique spécifique de l’émail. Les conditions de culture pour la culture de constructions d’ingénierie parodontale et d’organes pulmonaires en microgravité sont également décrites.

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Le protocole décrit un bioréacteur basé sur l’imagerie qui permet l’élimination sélective de l’épithélium endogène de la trachée du rat et la distribution homogène des cellules exogènes à la surface de la lumière, suivie d’une culture in vitro à long terme de la construction du tissu cellulaire.

Bioréacteur guidé par imagerie pour la génération de tissus des voies respiratoires issus de la bioingénierie

Le protocole présente une méthode permettant de dériver des organoïdes pulmonaires humains à partir de tissus pulmonaires primaires, d’élargir les organoïdes pulmonaires et d’induire une différenciation proximale pour générer des organoïdes des voies respiratoires 3D et 2D qui phénopient fidèlement l’épithélium des voies respiratoires humaines.

Établir des organoïdes pulmonaires humains et une différenciation proximale pour générer des organoïdes matures des voies respiratoires

Le présent protocole décrit les capacités et les modalités de culture essentielles de l’Open-Top Organ-Chip pour l’établissement et la maturation réussis de cultures d’organes sur puce de pleine épaisseur de tissus primaires (peau, alvéole, voies respiratoires et intestin), offrant la possibilité d’étudier différents aspects fonctionnels de l’interface épithéliale/mésenchymateuse et vasculaire humaine in vitro.

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Dans cet article, nous démontrons un modèle organoïde en trois étapes (expansion bidimensionnelle [2D], stimulation 2D, maturation tridimensionnelle [3D]) offrant un outil prometteur pour la recherche fondamentale sur les tendons et une méthode potentielle sans échafaudage pour l’ingénierie tissulaire des tendons.

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Ce protocole décrit une méthode définie à base d’hydrogel pour générer des organoïdes mammaires humains qui récapitulent des caractéristiques clés de la morphogenèse mammaire dans un système de culture tridimensionnel contrôlé.

Une méthode définie à base d’hydrogel pour générer des organoïdes mammaires humains tridimensionnels qui récapitulent la morphogenèse mammaire

University of British Columbia - Okanagan.  Ce protocole décrit la génération d’organoïdes à partir de cellules épithéliales alvéolaires A549 et de fibroblastes pulmonaires MRC-5 sur un échafaudage hydrogel à matrice extracellulaire, suivie de l’intégration dans des gels de collagène 3D et d’une exposition à une contrainte mécanique à l’aide d’un bioréacteur d’étirement cellulaire pour étudier la mécanobiologie alvéolaire.

Génération d’organoïdes alvéolaires A549/MRC-5 intégrés en collagène 3D à l’aide d’un bioréacteur mécanique à étirement cellulaire

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