$$\rightleftharpoonup{xx}$$
$$\longleftharp{xx}$$,
$$\longrightharp{xx}$$,
פרוטוקול זה הוא קטע מתוך Imura et al., Protocols for Visualizing Steroidogenic Organs and Their Interactive Organs with Immunostaining in the Fruit Fly Drosophila melanogaster, J. Vis. Exp. (2017).
הערה: ערכת הפרוטוקולים הכוללת מוצגת באיור 1.
1. דיסקציה של בלוטת טבעת הזחל (RG)
הערה: ב-D. melanogaster, השייך ל-cyclorrhaphous Diptera, ה-PG נמצא בתוך איבר אנדוקריני מורכב שנקרא בלוטת הטבעת (RG, איור 2D). מאחר שאין זה אפשרי שה-PG מופרד בניתוח מסוגים אחרים של תאים (נדון בהמשך), מטרה מעשית היא לבודד RG שלם ולא פגום על ידי דיסקציה.
- הכנת הזחלים בשלבי ההתפתחות המתאימים
NOTE: כדי לסנכרן את שלבי ההתפתחות של זחלי D. melanogaster, יש צורך לאסוף ביצים בחלון זמן צר ולאסוף זחלים בזמנים המתאימים.
- לאסוף ביצים במשך 2 שעות על צלחת אגר מיץ ענבים ב 25 ° C.
- אספו זחלי כוכב1 שזה עתה בקעו תחת מיקרוסקופ מנתח עם מלקחיים והעבירו אותם לבקבוקון קטן המכיל מחית שמרים סטנדרטיים/מזון זבוב קמח תירס.
NOTE: גיל הזחלים מיוצג על ידי "שעות לאחר הטלת ביצים (hAEL)", "שעות לאחר בקיעה (hAH)", או "שעות לאחר אקדיזיס L3 (hAL3E)".
- בנקודת הזמן המתאימה, אספו את הזחלים המבוימים עם לולאת פלסטיק חד פעמית כדי למנוע פגיעה לא רצויה. כדי למזער את ההבדל בהתקדמות ההתפתחותית של זחלי הכוכבהשלישי, אספו את זחלי הכוכבהשני ב-70 hAEL (48 hAH) ואפשרו להם להתיך במרווחים של שעתיים. לאחר מכן, לאסוף את הזחליםinstar 3 בתוך 2 שעות לאחר אקדיזיס L3; הליך זה נותן 0-2 זחלי hAL3E.
- מעבירים את הזחלים המבוימים לצלחת מלאה במי מלח חוצצים פוספט (PBS).
- שטפו את הזחלים עם PBS כדי להסיר שאריות מזון מהגוף.
- דיסקציה גסה של הזחלים תחת מיקרוסקופ מנתח
- החזיקו את וו הפה של הזחל בעזרת מלקחיים. חותכים את גוף הזחל בשליש הקדמי של אורך הגוף באמצעות מספריים מיקרו.
- החזק את הקצה החתוך של גוף הזחל הקדמי עם זוג מלקחיים אחד. באמצעות זוג המלקחיים האחרים, לדחוף בעדינות את קצה הראש לכיוון החלק הפנימי של הגוף; הליך זה הופך את גוף הזחל מבפנים החוצה.
NOTE: ניתן לדלג על שלב זה לדיסקציה של זחלי כוכברחוב 1.
- חזור על שלבים 1.2.1-1.2.2 עם זחלים נוספים למשך 5-10 דקות.
NOTE: מספר הזחלים צריך להיות שווה או פחות מ 20 כדי לחסוך זמן דיסקציה.
- קיבוע והכתמה של רקמה עם אימונוהיסטוכימיה
- הכניסו את השליש הקדמי של גופי הזחל (שלב 1.2.2) לתוך מיקרו-צינור של 1.5 מ"ל מלא ב-500 מיקרו-ליטר את תמיסת התיקון (4% פרפורמלדהיד ב-PBS). תקן פחות מ -20 דגימות בו זמנית, אחרת PBS המצורף לדגימות הקבועות עלול לגרום לדילול שלילי של הקיבוע. לדיסקציה של פילה, הסר טיפה של PBS ולאחר מכן הוסף טיפה של fix solution.
NOTE: לתמיסת תיקון, ניתן להשתמש ב-3.7% פורמלדהיד או ב-4% פרפורמלדהיד.
- דגרו על הרקמות המנותחות בתמיסת התיקון למשך 30 דקות בטמפרטורת החדר (RT) או לחילופין למשך שעתיים בטמפרטורה של 4°C.
- החלף את תמיסת התיקון ב- PBS של 500 μL ושטוף במהירות את הדגימות 3 פעמים. שטפו את הדגימות עם 500 μL 0.3% PBT (PBS + 0.3% octylphenol ethoxylate) במשך 15 דקות על נדנדה ב-RT. לדיסקציה של פילה, הסירו את סיכות החרק והעבירו את הדגימות למיקרו-צינור בנפח 1.5 מ"ל.
NOTE: להגדלת החדירות של נוגדנים לרקמות, הדגימות מטופלות עם 500 μL 2.0% PBT במשך 1-2 שעות על נדנדה ב RT.
- החלף PBT בתמיסת חסימה של 500 μL (אלבומין בסרום בקר 2% ב-PBT). דגרו על הדגימות במשך 1.5 שעות על נדנדה ב-RT.
- החלף את הפתרון החוסם ב- 50 μL תמיסת הנוגדנים העיקרית, כלומר נוגדנים מדוללים בתמיסת החסימה.
- לדגור את הדגימות לילה על נדנדה ב 4 ° C.
- החלף את תמיסת הנוגדנים העיקרית ב- 500 μL 0.3% PBT ושטוף במהירות את הדגימות 5 פעמים. שטפו את הדגימות 3 פעמים עם 500 μL 0.3% PBT במשך 15 דקות כל אחת על נדנדה ב-RT.
- החלף 0.3% PBT ב- 50 μL את תמיסת הנוגדנים המשנית (נוגדנים מצומדים בצבע המדוללים בתמיסת החסימה). עבור צביעה גרעינית, 0.5 μL 4',6-diamidino-2-phenylindole (DAPI, 0.1 מ"ג / מ"ל תמיסת מלאי) מתווסף לתמיסת 50 μL. דגרו את הדגימות על נדנדה במשך שעתיים ב-RT או לחילופין ב-4°C למשך הלילה.
NOTE: שמור את הדגימות בחושך.
- יש להחליף את תמיסת הנוגדנים ב-500 μL 0.3% PBT ולשטוף 5 פעמים. שטפו את הדגימות 3 פעמים עם 500 μL 0.3% PBT למשך 15 דקות כל אחת ב-RT.
- דיסקציה עדינה של קומפלקס המוח-RG המכיל את PG והרכבה
- השתמש פיפט חד פעמי כדי להעביר את הדגימות immunostained לצלחת מלאה 0.3% PBT.
NOTE: כדי למנוע בועות לא נוחות במהלך דיסקציה והרכבה, ניתן להחליף 0.3% PBT ב- PBS.
- תחת מיקרוסקופ מנתח, החזיקו את הקוטיקולה או את וו הפה עם זוג אחד של מלקחיים. באמצעות מחט 27 גרם המחוברת מזרק 1 מ"ל כמו "סכין", לחתוך את הקצה הקדמי של הוושט ואת דיסקי העיניים כדי להסיר את המוח RG-עין דיסק מורכב מן הקוטיקולה הגוף.
- להפריד את הוושט ואת המעי מן המוח RG-עין דיסק מורכב עם מלקחיים. מכיוון שהוושט עובר דרך המוח מעל חוט העצב הגחוני (VNC), משוך את המעי לצד האחורי.
NOTE: כדי להסיר דיסקים דמיוניים נוספים מהדגימות, חתכו את הקשרים בין המוח, דיסקי העיניים ודיסקיות הרגליים בעזרת סכין מחט.
- חזור על השלבים 1.4.1-1.4.4 עבור דגימות אחרות.
NOTE: כדי למנוע הידבקות של פסולת רקמות לדגימות, העבירו כל דגימה שהושלמה לצלחת נקייה אחרת מלאה ב-0.3% PBT או PBS.
- מעבירים את הדגימות למרכז שקופית זכוכית נקייה עם מיקרופיפטה.
NOTE: עבור זחלי כוכב 2או 3, קצה קצה מיקרופיפטה צריך להיות חתוך עם סכין גילוח.
- תחת מיקרוסקופ מנתח, יישרו דגימות בודדות עם הצד הגבי שלהן כלפי מעלה באמצעות מלקחיים.
NOTE: ה-RG ממוקם בצד הגבי של המוח (איור 2A). יישור זה מאפשר אפיון של דגימות בודדות במהלך ההדמיה.
- הטו מגלשת זכוכית ונגבו כמה שיותר PBT עודף. שים טיפה של מגיב הרכבה בצד של השקופית. מניחים את קצה החלקת הכיסוי מהצד השני של הטיפה ומניחים את החלקת הכיסוי על הדגימות באיטיות בעזרת מלקחיים.
NOTE: הליך זה מונע מהדגימות לנוע מחוץ לחלקת הכיסוי.
- אחסנו את הדגימות בטמפרטורה של 4°C. שמרו את הדגימות בחושך.