כל ההליכים המערבים בעלי חיים נבדקו על ידי הוועדה המוסדית המקומית לטיפול בבעלי חיים ועל ידי ועדת הבדיקה הווטרינרית JoVE.
1. הכנת ריאות להדמיה חיה Ex vivo
הערה: נסו לעבוד סטרילי וזהיר ככל האפשר כדי למנוע אתגרים מיותרים של תאי החיסון בתוך הריאות.
- הזריקו לעכבר מנת יתר קטלנית של חומר הרדמה המותר על פי פרוטוקול בעלי החיים שאושר על ידי IACUC, למשל, 1 מ"ל של 2.5% אברטין. המתן עד שהעכבר יפסיק לנשום ויהיה לחלוטין לא מגיב לגירויים מזיקים (צביטת כף אחורית).
הערה: יש להימנע מפריקת צוואר הרחם ומהמתת חסד של פחמן דו חמצני מכיוון שהיא עלולה להשפיע לרעה על יכולת הקיום של תאי הריאה.
- לשתק את העכבר על לוח דיסקציה ולעקר את העכבר עם 70% אתנול.
- השתמש מספריים כירורגיים כדי לבצע תחילה חתך epigastric רוחבי דרך העור, ואחריו חתך דומה דרך הצפק. החזיקו את לוח הדיסקציה במצב אנכי וחתכו את אבי העורקים היורד, כך שהדם יצטבר למטה בבטן ולא בחלל החזה.
- חותכים פתח קטן בסרעפת כדי לשחרר ואקום. חותכים לאורך הצלע ה -10 וה -12 כדי להסיר את הסרעפת ולקבל גישה חזותית לריאות.
- השתמש מספריים כירורגיים לחתוך את העור עד קנה הנשימה מעל כלוב הצלעות אבל להשאיר את כלוב הצלעות שלם. יש להפריד את העור מכלוב הצלעות. חשפו את קנה הנשימה על-ידי הסרת רקמת החיבור שמסביב, תוך זהירות שלא לפגוע בקנה הנשימה עצמו (איור 1A).
- חתכו פתח קטן בקוטר של כ-1 מ"מ בקנה הנשימה החשוף במקביל לטבעות הסחוס, קרוב ככל האפשר לגרון (איור 1B). היזהר לא לחתוך לחלוטין דרך קנה הנשימה.
- קחו מחט 20G והכניסו בעדינות את המחט 4-5 מ"מ לתוך קנה הנשימה ללא כל כוח נגדי (איור 1D). קצה המחט צריך להיות גלוי דרך קנה הנשימה (איור 1C). השתמש במלקחיים כדי לייצב את המחט בקנה הנשימה. לחלופין, ניתן לקשור תפר סביב קנה הנשימה כדי להחזיק את המחט במקומה.
הערה: על ידי החדרה עמוקה מדי, הקרינה עלולה להיות בטראומה או רק צד אחד של הריאות עשוי להיות מנופח.
- ממלאים מזרק עם 400 μl של 37 ° C 2% טמפרטורת התכה נמוכה agarose (נלקח ישירות מאמבט טמפרטורה קבועה). ודא שלוח הדיסקציה עומד ולהחדיר לאט לאט את האגרוז החם דרך המחט לריאות, השתמש ~ 400 μl כדי לנפח את הריאות.
הערה: שימו לב לריאות מתנפחות בתוך כלוב הצלעות. אין לנפח את הריאה יתר על המידה מכיוון שהיא תיקרע.
- ברגע שהריאות מנופחות, ממלאים ~ 2/3 מכלוב הצלעות, מנתקים את המזרק ושומרים את המחט בתוך קנה הנשימה כדי למנוע דליפת אגרוז.
- שפכו כ-50 מ"ל של PBS בטמפרטורה של 20°C על הריאות המנופחות כדי לאפשר לאגרוז שבתוך הריאות להתייצב ולהתמצק. הסר לאט את המחט וסגור את קנה הנשימה עם מלקחיים כדי למנוע דליפה של אגרוז לא מוצק.
- לחשוף את הריאות על ידי ביצוע sternotomy ולאחר מכן הבלו את הריאות. לכריתה של הריאות, להחזיק את קנה הנשימה תוך חיתוך דרך קנה הנשימה לחלוטין. משכו בעדינות את קנה הנשימה כלפי מעלה, חתכו את רקמת החיבור ואת הוושט תוך משיכת הריאות אל מחוץ לחלל החזה עד שהריאות יופרדו מהעכבר (איור 1E).
- טבלו את הריאות בסל"ד חם-1640 כדי לשטוף דם מופרז והפרידו בעדינות את האונות באמצעות מספריים ומלקחיים כדי לחתוך את ברונכוס הגבעול הראשי של האונות בהילום (איור 1F).
- מקמו את האונות, כשהמשטח השטוח כלפי מטה כדי למקסם את משטח ההדמיה, בתוך באר של לוח הדמיה של 24 בארות (איור 1G). הוסף 100 μl של 37 ° C RPMI-1640 על גבי אונות. הניחו מספר שקופיות כיסוי מיקרוסקופ עגולות בקוטר 15 מ"מ על גבי האונות כדי למנוע מהן לצוף.
- שפכו PBS חם לתוך הבארות שמסביב כדי למנוע את המדיה RPMI-1640 מלהתאדות. הכנס את צלחת 24 הבארות לתוך תא האקלים שיווי משקל ולשמור על אונות הריאה ב 37 ° C עם אוויר ו 5% CO2. הכנס את תא האקלים על במת המיקרוסקופ הקונפוקלי.
הערה: ניתן לשקול גם תערובות גזים אחרות (למשל, 5% O2, 5% CO2 ב-N2 כדי לבחון את התנהגות התאים בתנאים של היפוקסיה/חמצן נמוך יותר).