הרשמה ל-JoVE נדרשת לצפייה בתוכן זה. התחברו או התחילו בגרסת ניסיון בחינם.

מאמר שיטה

אינפלציית אגרוז ריאה שלמה: שיטה להכנת ריאות להדמיית Ex vivo Live

2.9K צפיות

30 באפריל 2023

במאמר זה

תקציר

מקור: Van den Bijgaart R.J.E. et al., Ex vivo Live Imaging of Lung Metastasis and Their Microenvironment, J. Vis. Exp. (2016)

סרטון זה מתאר שיטה להכנת ריאות להדמיה חיה ex vivo לחקר אינטראקציות בין תאים סרטניים לתאי סטרומה, תוך שימוש באגרוז לאינפלציה. בפרוטוקול המדגם, הליך ניפוח אגרוז מתואר לפני צפייה באינטראקציות סלולריות חיות.

פרוטוקול

כל ההליכים המערבים בעלי חיים נבדקו על ידי הוועדה המוסדית המקומית לטיפול בבעלי חיים ועל ידי ועדת הבדיקה הווטרינרית JoVE.

1. הכנת ריאות להדמיה חיה Ex vivo

הערה: נסו לעבוד סטרילי וזהיר ככל האפשר כדי למנוע אתגרים מיותרים של תאי החיסון בתוך הריאות.

  1. הזריקו לעכבר מנת יתר קטלנית של חומר הרדמה המותר על פי פרוטוקול בעלי החיים שאושר על ידי IACUC, למשל, 1 מ"ל של 2.5% אברטין. המתן עד שהעכבר יפסיק לנשום ויהיה לחלוטין לא מגיב לגירויים מזיקים (צביטת כף אחורית).
    הערה: יש להימנע מפריקת צוואר הרחם ומהמתת חסד של פחמן דו חמצני מכיוון שהיא עלולה להשפיע לרעה על יכולת הקיום של תאי הריאה.
  2. לשתק את העכבר על לוח דיסקציה ולעקר את העכבר עם 70% אתנול.
  3. השתמש מספריים כירורגיים כדי לבצע תחילה חתך epigastric רוחבי דרך העור, ואחריו חתך דומה דרך הצפק. החזיקו את לוח הדיסקציה במצב אנכי וחתכו את אבי העורקים היורד, כך שהדם יצטבר למטה בבטן ולא בחלל החזה.
  4. חותכים פתח קטן בסרעפת כדי לשחרר ואקום. חותכים לאורך הצלע ה -10 וה -12 כדי להסיר את הסרעפת ולקבל גישה חזותית לריאות.
  5. השתמש מספריים כירורגיים לחתוך את העור עד קנה הנשימה מעל כלוב הצלעות אבל להשאיר את כלוב הצלעות שלם. יש להפריד את העור מכלוב הצלעות. חשפו את קנה הנשימה על-ידי הסרת רקמת החיבור שמסביב, תוך זהירות שלא לפגוע בקנה הנשימה עצמו (איור 1A).
  6. חתכו פתח קטן בקוטר של כ-1 מ"מ בקנה הנשימה החשוף במקביל לטבעות הסחוס, קרוב ככל האפשר לגרון (איור 1B). היזהר לא לחתוך לחלוטין דרך קנה הנשימה.
  7. קחו מחט 20G והכניסו בעדינות את המחט 4-5 מ"מ לתוך קנה הנשימה ללא כל כוח נגדי (איור 1D). קצה המחט צריך להיות גלוי דרך קנה הנשימה (איור 1C). השתמש במלקחיים כדי לייצב את המחט בקנה הנשימה. לחלופין, ניתן לקשור תפר סביב קנה הנשימה כדי להחזיק את המחט במקומה.
    הערה: על ידי החדרה עמוקה מדי, הקרינה עלולה להיות בטראומה או רק צד אחד של הריאות עשוי להיות מנופח.
  8. ממלאים מזרק עם 400 μl של 37 ° C 2% טמפרטורת התכה נמוכה agarose (נלקח ישירות מאמבט טמפרטורה קבועה). ודא שלוח הדיסקציה עומד ולהחדיר לאט לאט את האגרוז החם דרך המחט לריאות, השתמש ~ 400 μl כדי לנפח את הריאות.
    הערה: שימו לב לריאות מתנפחות בתוך כלוב הצלעות. אין לנפח את הריאה יתר על המידה מכיוון שהיא תיקרע.
  9. ברגע שהריאות מנופחות, ממלאים ~ 2/3 מכלוב הצלעות, מנתקים את המזרק ושומרים את המחט בתוך קנה הנשימה כדי למנוע דליפת אגרוז.
  10. שפכו כ-50 מ"ל של PBS בטמפרטורה של 20°C על הריאות המנופחות כדי לאפשר לאגרוז שבתוך הריאות להתייצב ולהתמצק. הסר לאט את המחט וסגור את קנה הנשימה עם מלקחיים כדי למנוע דליפה של אגרוז לא מוצק.
  11. לחשוף את הריאות על ידי ביצוע sternotomy ולאחר מכן הבלו את הריאות. לכריתה של הריאות, להחזיק את קנה הנשימה תוך חיתוך דרך קנה הנשימה לחלוטין. משכו בעדינות את קנה הנשימה כלפי מעלה, חתכו את רקמת החיבור ואת הוושט תוך משיכת הריאות אל מחוץ לחלל החזה עד שהריאות יופרדו מהעכבר (איור 1E).
  12. טבלו את הריאות בסל"ד חם-1640 כדי לשטוף דם מופרז והפרידו בעדינות את האונות באמצעות מספריים ומלקחיים כדי לחתוך את ברונכוס הגבעול הראשי של האונות בהילום (איור 1F).
  13. מקמו את האונות, כשהמשטח השטוח כלפי מטה כדי למקסם את משטח ההדמיה, בתוך באר של לוח הדמיה של 24 בארות (איור 1G). הוסף 100 μl של 37 ° C RPMI-1640 על גבי אונות. הניחו מספר שקופיות כיסוי מיקרוסקופ עגולות בקוטר 15 מ"מ על גבי האונות כדי למנוע מהן לצוף.
  14. שפכו PBS חם לתוך הבארות שמסביב כדי למנוע את המדיה RPMI-1640 מלהתאדות. הכנס את צלחת 24 הבארות לתוך תא האקלים שיווי משקל ולשמור על אונות הריאה ב 37 ° C עם אוויר ו 5% CO2. הכנס את תא האקלים על במת המיקרוסקופ הקונפוקלי.
    הערה: ניתן לשקול גם תערובות גזים אחרות (למשל, 5% O2, 5% CO2 ב-N2 כדי לבחון את התנהגות התאים בתנאים של היפוקסיה/חמצן נמוך יותר).

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

תוצאות

figure-results-1
איור 1. פרוטוקול להכנת ריאות להדמיה חיה.(A) חשיפת קנה הנשימה לאחר הכנת העכבר. (B) חיתוך קטן שנעשה בקנה הנשימה החשוף במקביל לטבעות הסחוס. (C) מחט 20 גרם המוחדרת 4-5 מ"מ לקנה הנשימה. (D) החדרה של 400 μליטר 2% טמפרטורת התכה נמוכה לריאות. (E) ריאות מנופחות המופרדות מהעכבר. (F) האו...

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

גילויים

לא הוכרז על ניגוד עניינים.

חומרים

רשימת החומרים שנעשה בהם שימוש במאמר זה
שםחברהמספר קטלוגהערות
הרדמהנהנההרדמה מאושרת על ידי IACUC, משמשת להרדמה ו / או המתת חסד
PBS, USP סטרילי Amresco INC K813-500ML ציון טהור במיוחד להזרקת i.v.
1X PBS מתקן תרבית תאים UCSFנה
פלטפורמת קלקרנהנהישמש כלוח נתיחה
מספריים עדינים חדים כלים מדעיים משובחים14060-11
20 G x 1 מחט, שיקוע קצר ב.ד. 305178
מלקחיים חנות כירורגית רובוזRS-5135
1 מ"ל מזרק ללא מחט ב.ד. 309659
אגרוז בטמפרטורת התכה נמוכה לונזה 50111כדי להפוך 10 מ"ל של פתרון, לשקול 0.2 גרם של agarose, להוסיף 10 מ"ל 1 x PBS, וחום להתמוסס. האגרוז יתמצק בטמפרטורת החדר, לכן יש לשמור באמבט מים של 37 מעלות צלזיוס עד לשימוש בניפוח.
RPMI-1640 בינוני ללא פנול אדום לייף טכנולוגיות 11835-030
24 באר צלחת הדמיה E&K מדעי EK-42892
מגלשות כיסוי זכוכית, 15 מ"מ פישר סיינטיפיק 22-031-144
CO2 דיגיטלי ובקר טמפרטורה אוקולאב DGTCO2BX http://www.oko-lab.com
תא אקלים אוקולאב נהhttp://www.oko-lab.com
Cell Observer דיסק מסתובב מיקרוסקופ קונפוקלי זיסנה
אוויר UCSF נה
חמצןUCSF נה
פחמן דו חמצניUCSF נה

תגיות

ex vivo