מאמר שיטה

תא גלייה לימוד הטרוגניות השפעה על הצמיחה אקסון בשיטה Coculture חדש

16.9K צפיות

DOI:

10.3791/2111

6 בספטמבר 2010

במאמר זה

סיכום

בפרוטוקול זה, אנו תיאר שיטה חדשה ללמוד את השפעת ההטרוגניות תא גליה על צמיחת האקסון עם במבחנה שיתוף התרבות המערכת. קליפת המוח עכברוש ותאי גלייה היו בתרבית כדי מפגש ו cocultured עם מטוהרים מאוד הגבי עכברוש שורש עצב הגרעינים. תאים שונים להשפיע על גליה הידבקות נוירונים וצמיחה האקסון הושווה ישירות באותה תרבות. שיטה זו מספקת דרך חדשה ישירות ללמוד תא גלייה ההטרוגניות השפעה על הידבקות נוירון וצמיחה האקסון.

תקציר

במערכת העצבים המרכזית של כל היונקים, אקסונים ניתק לאחר פציעה אינם מסוגלים להתחדש ליעדים המקוריים שלהם התאוששות תפקודית ירודה מאוד 1. הכישלון של התחדשות האקסון הוא תוצאה משולבת של מספר גורמים, כולל סביבה עוינת תא גלייה, מעכבות מולקולות הקשורות המיאלין וירידה יכולת ההתחדשות הפנימית נוירון 2. האסטרוציטים הם סוג השולט ביותר תא גליה במערכת העצבים המרכזית לשחק תפקיד חשוב בפונקציות האקסון תחת הפיזיולוגיה והפתולוגיה התנאים 3. בניגוד הומולוגיים oligodendrocytes, האסטרוציטים הם אוכלוסייה הטרוגנית תא שהלחין subpopulations astrocyte מורפולוגיות שונות עם מגוון ביטוי גנים 4. משמעות תפקודית של ההטרוגניות הזאת, כמו השפעות על צמיחה האקסון, אינו ידוע ברובו.

כדי לחקור את תא גלייה, בעיקר פונקציה של ההטרוגניות astrocyte בהתנהגות נוירון, הקמנו שיטה חדשה על ידי שיתוף culturing גבוה מטוהרים הגב הגרעינים נוירונים ותאי גלייה עם השורש המתקבל בקליפת חולדה. על ידי טכניקה זו, הצלחנו להשוות ישירות הידבקות נוירון וצמיחה האקסון על subpopulations האסטרוציטים שונים בתנאי אותו.

בדו"ח זה, אנו נותנים את פרוטוקול מפורט של שיטה זו של בידוד האסטרוציטים ותרבות, השורש הגבי הגרעינים נוירונים בידוד וטיהור, ואת שיתוף התרבות של נוירונים עם DRG האסטרוציטים. שיטה זו יכולה גם להיות מורחבת לאזורים אחרים במוח ללמוד אינטראקציה ספציפית הסלולר או אזורית בין נוירונים ותאי גלייה.

פרוטוקול

1. תא גליה תרבות

ותאי גלייה יכול להיות מתורבת מאזורים שונים של מערכת העצבים המרכזית. התהליך כולו מוצג בתרשים התהליך.

תהליך 1

1 יום ציפוי תרבות צלחת coverslips

  1. מיקרוסקופ יבש מעוקרים עגול זכוכית coverslips ב החיטוי.
  2. פלייט coverslips מעוקר לצלחת 24 לעקר גם תרבות.
  3. המעיל coverslips עם פולי-ליזין דגירה למשך 2 שעות תחת טמפרטורה השורש.
  4. 6 גם סמל תרבות צלחות באותה דרך כמו בשלב 3.
  5. שטפו את coverslips ו 6 גם צלחת תרבות פעמיים עם מים מזוקקים ואוויר יבש ברדס תרבות.
  6. הוספת 200 μL בינוני DMEM (עם FBS 10%) היטב כל צלחת 24 היטב 2 מ"ל היטב כל צלחת 6-היטב ולשים אותם לתוך החממה תחת תואר 37 עם 5% CO 2

2 יום קליפת בידוד והתרבות תא גלייה

  1. לעקר את מכסה המנוע לנתיחה תזרים חיובי.
  2. הפעל אור UV במשך 20 דקות.
  3. רסס את כל המשטחים עם אתנול 70% ולחכות 15 דקות לפני השימוש.
  4. השינוי במתח: גורי חולדה הרדימי (P2-P6) על ידי היפותרמיה, ועל לערוף בבסיס מגנום framen באמצעות מספריים ההפעלה.
  5. פתח את הגולגולת לאורך תפר sagittal באמצעות מספריים איריס לקלף את הגולגולת.
  6. הסר את המוח הקדמי והכניס אותם לתוך מדיום L15 צונן, תחת stereomicroscope, בזהירות לנקות את קרום הדורה ופיאה עם כלי דם, לבודד את קליפת לשטוף מספר פעמים עם המדיום L15.
  7. חותכים את הקליפה לחתיכות קטנות עם מספריים microsurgery.
  8. הוסף 0.125% טריפסין-EDTA מוכן עם המדיום L15 לחתיכות קורטקס דגירה של 37 מעלות במשך 15 דקות.
  9. העברת גושי רקמה לתוך מדיום DMEM 20mL עם FBS של 20% שפופרת 50 מ"ל, להוסיף פתרון DNase המניות 10ug/mL הריכוז הסופי, לשאוב את הפתרון הרקמה הלוך ושוב במשך 20 פעמים עם זכוכית מלוטשת אש Pasteure פיפטה, לאסוף את ההשעיה תאים בודדים.
  10. שטפו את ההשעיה תא פעם אחת עם DMEM בינוני, מחדש תאים להשעות DMEM עם 10% FBS, לספור תאים תחת מיקרוסקופ עם תאים hemocytometer הזרע בבית 5000-10000/cm 2. שמור על תאים 37 מעלות באינקובטור 5%, שינוי מחצית 2 פעמים בינוני בשבוע.

2. רוט הגבי הגרעינים בידוד נוירונים, התרבות טיהור

יום 1 הכינו חומר תרבות

  1. המעיל coverslips מעוקר עם פולי-ליזין, coverslips לשטוף פעמיים עם לזקק מים ואוויר יבש, לשים אותם לתוך 24 גם הצלחות.
  2. הוסף בינוני Neurobasal 100μL עם 2% ו - B27 2.5S NGF (50 נ"ג / מ"ל), לשים צלחת לתוך CO 37 מעלות 5% 2.

יום 2 בודד DRGs מעוברים

  1. לעקר את מכסה המנוע לזרום באותו אופן כמו תרבית תאים גליה.
  2. להרדים חולדה בהריון (E15) על ידי מנת יתר עם ​​2 CO, הבטן עיקור על ידי אתנול 70%, עוברים מן הרחם בודדו והכניסו בינוני L15 צונן.
  3. בודד מיתרי השדרה עם הגרעינים מחובר השורש הגבי תחת stereomicroscope ולהעביר מנות 35mm עם המדיום L15 צונן.
  4. איסוף ההשעיה תא בודד ולשטוף פעם עם NBF בינוני (מדיום Neurobasal המכיל 2% B27 ו 2.5S NGF (50 ng / mL)).

יום 3 נוירונים DRG לטהר

  1. 18h-24h לאחר זריעת נוירון, להוסיף 1 FUDR מרוכז mM פתרון מניות לתרבות נוירון לריכוז סופי של 20 מיקרומטר ו נפח סופי של 200 μL.
  2. 72h מאוחר יותר, להחליף חצי בינוני עם בינוני Neurobasal המכיל 2% B27 ו 2.5S NGF (50ng/mL) ללא FUDR. לאחר מכן, שנה את בינונית בכל יום אחר.

3. נוירונים DRG Coculture עם ותאי גלייה

  1. כאשר תרבית תאים גליה הגיע המפגש (בסביבות 20 ימים לאחר זריעה), הם היו מוכנים coculture עם הנוירונים.
  2. 24 שעות לפני הוספת נוירונים מטוהרים, גליה בינוני התאים שונו עד בינוני Neurobasal המכיל 2% B27 ו 2.5S NGF (50 נ"ג / מ"ל).
  3. נוירונים מטוהרים נאספו מבארות תרבות, יחיד ההשעיה תאים התקבלו על ידי העברת מכני באמצעות פיפטה Pasteure מלוטש אש.
  4. לאחר ספירת, נוירונים היו זורעים בבית 500/cm 2 על ותאי גלייה ומחוברות Neurobasal במדיום המכיל 2% B27 ו 2.5S NGF (50ng/mL).
  5. נוירונים הידבקות וצמיחה neurite על ותאי גלייה יכול להיות נרשמו ונותחו בנקודות זמן שונות על ידי תוכנת ניתוח תמונת immunocytochemistry סוג התא באמצעות נוגדנים ספציפיים.

4. נציג תוצאות

  1. תרבית תאים גליה: אחרי זריעה, ותאי גלייה יהפוך ומחוברות סביב 20 ימים. תחת microsc בניגוד שלבאופ, זה היה לזהות בקלות כי אחרת subpopulations מורפולוגית תא גלייה נוצר דפוס שונים substructures הצמיחה האסטרוציטים חיובי GFAP היוו יותר מ -90% כפי שמוצג על ידי טכניקה immuocytochemisty (איור 1, איור 2).
  2. תרבות DRG נוירונים: בשיטה שלנו, לאחר טיפול 72 שעות FUDR, את הטוהר של נוירונים DRG יגיע גבוה ככל 99% תוך 6 ימים, הנוירונים DRG הראה מורפולוגיות הייחודיים שלהם עם צמיחה neurite צפיפות גבוהה (איור 3, איור 4).
  3. Coculture גליה תא עצב: הידבקות נוירונים DRG ו תולדה neurite התרחש בקלות על ותאי גלייה בתוך 4 שעות לאחר זריעה, תצפיות זהיר הראה כי הידבקות נוירון וצמיחה neurite הושפעו subpopulations תא גלייה שהיוו מיוחד דפוס substructures צמיחה, זה יכול להיות מזוהה בקלות תחת מיקרוסקופ לעומת השלב ועל ידי immunocytochemistry (איור 5, איור 6).

איור 1
באיור 1. מורפולוגיה של תאים גליה ומחוברות. ותאי גלייה קליפתיים היו מצופה על coverslip מצופה polylysine ותרבותי עבור 20 ימים, שים לב דפוס צמיחה שונים של תאים גליה, תאים בצד שמאל מסודרים בצורה הקרין.

איור 2
איור 2. ותאי גלייה ומחוברות שכותרתו ידי גליה נוגדן fibrillary חומצי חלבון (GFAP). הערה ההסדר קרנה של GFAP (אדום) תאים חיובי בצד ימין.

איור 3
איור 3. הגב הגרעינים נוירונים שורש צמח חוץ גופית ללא טיפול FUDR. התאים זיהום נוצר DRG רקע "נוירונים.

איור 4
איור 4. הגב הגרעינים נוירונים שורש צמח במבחנה לאחר הטיפול FUDR. התאים רקע זיהום חוסלה לחלוטין.

איור 5
איור 5. הגב בגרעיני הבסיס נוירונים ותאי גלייה גדל על. נוירונים הידבקות וצמיחה neurite היו עצורים על תאים מסודרים הקרין ומוגבל על תאים בצד ימין גליה.

איור 6
איור 6. הגב בגרעיני הבסיס נוירונים ותאי גלייה הגוברת על ידי נוגדן הנקרא neurofilament. Neurite (ירוק) היו עצורים על תאים מסודרים הקרין הצד השמאלי גליה ומוגבלת בצד ימין, כל התאים גליה תויגו על ידי נוגדן GFAP (אדום).

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

דיון

פרוטוקול הניסוי תוכנן להגיע שתי מטרות ללמוד ותאי גלייה, השפעה ההטרוגניות של astrocyte במיוחד על הידבקות נוירון וצמיחה neurite. המטרה הראשונה היתה לשמור על ההטרוגניות astrocyte ככל האפשר, בניסוי הזה, ומחוברות גליה תרבית תאים האסטרוציטים מועשר היה מעורב תרבות ראשוני ללא כל טיפול כימי התפשטות לעיכול, העלולים לגרום נזק נוסף התא ולגרום בתגובה לפציעה של האסטרוציטים. טוהר astrocyte הסופית היא יותר מ 90% GFAP חיובית, עם fibroblasts זיהום פחות מ -1% כפי אומת על ידי fibrobasts FN. צפיפות זר...

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

גילויים

אין ניגודי אינטרסים הכריז.

תודות

מחקר זה נתמך על ידי FMMU חדש למציאת הקרן באופן חלקי במימון NIH.

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

חומרים

רשימת החומרים שנעשה בהם שימוש במאמר זה
שםחברהמספר קטלוגהערות
DMEM (גלוקוזה גבוהה)Invitrogen10313-039
מצע L15Invitrogen11415-114
סרום עגל עוברי (FBS)Invitrogen10437-077
מדיום נוירובזאלי (Neurobasal Medium)Invitrogen21103-049
פולי-ליזיןSigma-AldrichP4832דרגת תרבית
NGF(2.5S)Invitrogen13257-019
תוסף B27Invitrogen17504-044
0.25% trypsin-EDTAInvitrogen25200-056
FUDRSigma-AldrichF0503
נוירופילמנט נוגדןAbcamab24575

מקורות

  1. Rossignol, S., Schwab, M., Schwartz, M., Fehlings, M. G. Spinal cord injury: time to move? J Neurosci. 27 (44), 11782-11792 (2007).
  2. Yiu, G., He, Z. Glial inhibition of CNS axon regeneration. Nat Rev Neurosci. 7 (8), 617-627 (2006).
  3. Barres, B. A. The mystery and magic of glia: a perspective on their roles in health and disease. Neuron. 60 (3), 430-440 (2008).
  4. Matyash, V., Kettenmann, H. Heterogeneity in astrocyte morphology and physiology. Brain Res Rev. , (2009).
  5. Wanner, I. B., Deik, A., Torres, M., Rosendahl, A., Neary, J. T., Lemmon, V. P., Bixby, J. L. A new in vitro model of the glial scar inhibits axon growth. Glia. 56 (15), 1691-1709 (2008).
  6. Kuffler, D. P., Sosa, I. J., Reyes, O. Schwann cell chondroitin sulfate proteoglycan inhibits dorsal root ganglion neuron neurite outgrowth and substrate specificity via a soma and not a growth cone mechanism. J Neurosci Res. 87 (13), 2863-2871 (2009).
  7. Kleitman, N., Wood, P. M., Bunge, R. P. Tissue culture method for the study of myelination. Culturing nerve cells. , P559-P559 (1998).

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

הדפסות חוזרות והרשאות

בקש הרשאה לשימוש חוזר בטקסט או באיורים של מאמר JoVE זה

בקש הרשאה

תגיות

DRGTime lapse

מאמרים קשורים