הסרטון מדגים את הבידוד של פלסטוגלובולות מציאנובקטריה. זה מתחיל בתרבית של ציאנובקטריה וממשיך דרך שיבוש תאים באמצעות כוח מכני. שחרור פיגמנטים פוטוסינתטיים מעיד על ליזה מוצלחת. לאחר מכן משתמשים בשיפוע צעד סוכרוז כדי להפריד רכיבים תאיים לפי צפיפות, מה שמאפשר לפלסטגלובולות בצפיפות נמוכה ליצור פס מובהק בחלקו העליון. חלק זה נאסף ונשמר להמשך ניתוח.
פרוטוקול
1. בידוד פלסטוגלובול גולמי
מיצוי פלסטוגלובול גולמי מציאנובקטריה
גדל תרבית של 50 מ"ל של Synechocystis sp. PCC 6803 לשלב הנייח (כ-7-10 ימים) והתאם את צפיפות התאים לצפיפות אופטית ב-750 ננומטר (OD750) של 2.0 באמצעות ספקטרופוטומטר. בתנאי תרבית, השתמש במדיה BG-11 וגידול באינקובטור בעוצמת אור של 150 מיקרומול פוטונים/מ"ר לשנייה, 2% CO2, 32 מעלות צלזיוס, ועם טלטול מתמשך ב-150 סיבובים לדקה (סל"ד).
כדי להסיר את הפוליסכרידים, שטפו את התאים על ידי צנטריפוגה של תרבית 50 מ"ל ב-6,000 × גרם למשך 45 דקות ב-4 מעלות צלזיוס ולאחר מכן הסרת הסופרנטנט. המשך בשטיפת התאים פעמיים ב-50 מ"ל של מאגר A (טבלה 1). הסר אליקווט של התא הומוגנאט והניח אותו בצד לפני הצנטריפוגה כדי לאחסן כדגימת תא כוללת מייצגת
השעו מחדש את הגלולה השטופה ב-25 מ"ל של מאגר A ושברו את התאים באמצעות תא לחץ צרפתי ב-1,100 פאונד לאינץ' רבוע (psi), וחזרו על התהליך 3× (הניחו את הדגימה על קרח בין כל מחזור כדי למנוע דנטורציה של חלבון) עד שהצבע הליזי משתנה מירוק לאדום-כחול-ירוק באור לבן. השתמש בתא מקורר מראש ובצע שלב זה בחדר הקירור.
מחלקים את ההומוגנאט המתקבל בין שמונה צינורות אולטרה-צנטריפוגה של 3 מ"ל מלאים עד למקסימום של 2.5 מ"ל בכל צינור ולאחר מכן מכסים בזהירות 400 מיקרוליטר של מדיום R, ויוצרים שיפוע מדרגה.
אזנו בזהירות את הצינורות על ידי הוספת מדיום R נוסף, לפי הצורך, וצנטריפוגה למשך 30 דקות ב-150,000 × גרם ב-4 מעלות צלזיוס. התילקואיד ואברונים כבדים אחרים (כולל כל גופי הפוליהידרוקסיאלקנואטים) יתגלו, בעוד שפלסטוגלובולים ייראו בקלות כפד צהוב ושמנוני על החלק העליון של שיפוע הסוכרוז או בסמוך לו (איור 1C).
קצרו את הכרית הצפה המתקבלת של פלסטוגלובולים גולמיים בעזרת מזרק ומחט 22G והפקידו בצינור של 2 מ"ל. מגרדים פלסטוגלובולות מהצד של דופן צינור האולטרה-צנטריפוגה עם קצה המחט במידת הצורך.
המשך לשלב 2.2. לחלופין, אחסן פלסטוגלובולות גולמיות בטמפרטורה של -80 מעלות צלזיוס וטהר מאוחר יותר.
טבלה 1: מתכוני חיץ לבידוד פלסטוגלובול מרקמת עלי צמח או ציאנובקטריה.
קומפוזיציות חיץ א
מאגר שחיקה
50 מ"מ hepes-koh (pH 8.0)
5 מ"מ מגנזיום כלוריד (MgCl2)
סורביטול 100 מ"מ
5 מ"מ חומצה אסקורבית b
5 מ"מ ציסטאין b מופחת
0.05 % (w/v) סרום בקר אלבומין (BSA) b
בינוני ר
50 מ"מ hepes-koh (pH 8.0)
5 מ"מ MgCl2
בינוני R 0.2
50 מ"מ hepes-koh (pH 8.0)
5 מ"מ MgCl2
0.2 מ סוכרוז
בינוני R 0.7
50 מ"מ hepes-koh (pH 8.0)
5 מ"מ MgCl2
0.7 מ סוכרוז
מאגר א
25 מ"מ hepes-koh (pH 7.8)
250 מ"מ סוכרוז
a. ריכוזים סופיים של כל רכיב חיץ מסופקים.
b. יש להוסיף טרי ביום הבידוד. אמנם ניתן להכין בופר יום לפני הבידוד, אך יש להוסיף מרכיבים מסוימים טריים ביום הבידוד, כמו גם מעכבי פוספטאז ופרוטאז.
2. קציר פלסטוגלובולים טהורים
עיבוד ציאנובקטריה
לייצר שיפוע סוכרוז בארבעה צינורות אולטרה-צנטריפוגות של 2.5 מ"ל, בשכבות ראשונות עם 500 מיקרוליטר של הפלסטגלובולות הגולמיות משלב 1.3 מעורבב עם 750 מיקרוליטר של בינוני R 0.7, ולאחר מכן כיסוי עם 750 מיקרוליטר של בינוני R 0.2.
צנטריפוגה את שיפוע הסוכרוז ב-150,000 × גרם למשך 90 דקות ב-4 מעלות צלזיוס. אסוף את הפלסטגלובולות הטהורות (איור 1C) עם מזרק ומחט 22 גרם מהשלב העליון של שיפוע הסוכרוז והעביר לצינור של 1.5 מ"ל.
הקפיא את הפלסטגלובולות הטהורות והקפיא בזק בחנקן נוזלי. יש לאחסן ישירות בטמפרטורה של -80 מעלות צלזיוס או ליופיליז לאבקה יבשה.
הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.