1. הכנת תמיסות באפר וריאגנטים
- הכינו 500 mL של ציר סויה טריפטי (TSB) (15 g של אבקת TSB ו-500 mL של מים אולטרה-טהורים) ועקרו באוטוקלאב.
הערה: ניתן לאחסן את התמיסה בטמפרטורת החדר למשך עד 3 חודשים או ב-4 °C למשך עד 6 חודשים. - הכינו 500 mL של אגר סויה טריפטי (TSA) (20 g של אבקת TSA ו-500 mL של מים אולטרה-טהורים) ועקרו באוטוקלאב.
הערה: ניתן לאחסן את התמיסה ב-4 °C למשך עד 3 חודשים. - הכינו 500 mL של פוספט בופר מלוחי (PBS; 4 g של NaCl, 0.1 g של KCl, 0.77 g של Na2HPO4, ו-0.12 g של KH2PO4, 500 mL של מים אולטרה-טהורים), מדדו והתאימו את ה-pH ל-7.2 ± 0.2 ב-25 °C ועקרו באוטוקלאב.
הערה: ניתן לאחסן את התמיסה ב-4 °C למשך עד 6 חודשים. - הכינו 200 mL של 1 M MgSO4 (49.294 g ו-200 mL של מים אולטרה-טהורים) ועקרו באמצעות מסנן פוליאתרסולפון של 0.22 µm.
- הכינו 500 mL של TSB עם 10 mM MgSO4 (mTSB; 15 g של אבקת TSB, 500 mL של מים אולטרה-טהורים, ו-5 mL של 1 M MgSO4) ועקרו באוטוקלאב; הניחו למצע שעוקר באוטוקלאב להתקרר לטמפרטורת החדר. השתמשו בטכניקה אספטית. בעזרת פיפט סרולוגית, העבירו בזהירות 5.0 mL של 1 M MgSO4; ערבבו בעדינות בתנועות סיבוביות.
2. הכנת תרבית חיידקים
- להכנת תרבית מעבדה למחקר חיידקים (BRLC), הוצא את מבחנות מאגר הגליצרין מהמקפיא והעבר אותן למעבדה.
- השתמש בלולאת הזרקה חד-פעמית או במקבילה לה, טבול אותה במבחנה, קח מעט מהאינוקולום (עיסה קפואה), ובצע מריחה על צלחת TSA או מקבילה לה בתוך קבינה לבטיחות ביולוגית ברמה II. דגרי את הצלחת בטמפרטורה של 37 ± 2 °C למשך 15−18 שעות.
- הכנס את צלחות ה-BRLC שהוכנו לשקיות ואחסן בטמפרטורה של 4 °C.
הערה: תקופת תפוגה כללית ל-BRLC: 14 ימים ב-4 °C לאחר ההכנה. - הזרק מושבה בודדת של כל זן E. coli O157 מתוך צלחות ה-BRLC המיועדות לבדיקה לתוך 10 mL של TSB, ודגרי באופן סטטי ב-37 °C למשך 18 שעות כדי להגיע לריכוז של 9 log10 CFU/mL.
- הכן דילול סדרתי של תרביות הלילה (בבוקר למחרת), עבור כל זן E. coli O157, תוך שימוש ב-mTSB המכיל 10 mM של MgSO4 כדי להגיע ל-4-5 log10 CFU/ml (או לרמת אינוקולום רצויה אחרת).
- ערבב נפחים שווים של תרבית לילה מכל זן כדי להגיע לסך כולל של 4-5 log10 CFU/mL (או לפי הרצוי) להכנת התערובת החיידקית.
- הצב מיד את התרבית החיידקית המדוללת בטמפרטורה של 4 °C עד לשימוש.
- דלל את תרבית האינוקולום פי 10 או 100, ופזר מנות של 0.1 mL מדילול זה על צלחות TSA כדי לקבל מושבות מבודדות.
3. הכנת תמיסות עבודה של פאגים
- הרבה מלאי עבודה בריכוז גבוה עבור כל פאג שיועמד לבדיקה (≥108 PFU/mL) בהתאם לשיטות הסטנדרטיתות4.
הערה: תקופת התפוגה הכללית עבור מלאי הפאגים היא 3 חודשים בבקבוק פלסטיק ב-4 °C לאחר ההפקה. - כדי להגיע לריכוז הרצוי, למשל, ~108 PFU/mL עבור קינטיקה של ליזיס, דללו תכשירי פאג בודדים עם mTSB המכיל 10 mM של MgSO4. הכינו תערובות פאגים (cocktails) על ידי ערבוב של נפחים שווים מכל מלאי עבודה בעל ריכוז זהה בכל השילובים האפשריים.
4. הכנת in-vitro קינטיקת ליזיס עבור פאג'ים בודדים ותערובות פאג'ים
- הכינו דילולות סדרתיות של פי 10 עבור כל פאג בעמודות 1-8 בלוחות מיקרו-פלייט סטריליים בעלי 96 בארות להקמת בדיקת המיקרו-פלייט.
הערה: ניתן לבחון ארבעה פאגים נגד זן חיידקי אחד בכפילות, בעמודות סמוכות, בכל לוח. ארבעת העמודות הנותרות משמשות כביקורות, ללא פאג, וכן כביקורת ריק של mTSB (איור 1). - העבירו 180 µL של mTSB לבארות בעמודות 1 עד 12 בלוח המיקרו-פלייט בעל 96 הבארות.
- הוסיפו 20 µL של פאגים בודדים מדוללים או תערובות פאגים (~108 PFU/mL) לבארות 1-8 בשורה העליונה של לוח המיקרו-פלייט (שורה A).
- עבור ביקורת ללא פאג וביקורת הריק, הוסיפו 20 µL של mTSB לבאר העליונה של עמודות 9, 10 ו-11.
- בבעזרת פפיטה בעלת 12 ערוצים, בצעו את דילול הלוח. העבירו 20 µL משורה לשורה. ערבבו היטב את התוכן באמצעות שאיבה ופליטה חוזרת ועדינה (לפחות חמש פעמים), והחליפו טיפים בין הדילולות. הסירו 20 µL מהשורה האחרונה (שורה H).
הערה: מומלץ להשתמש בטיפים עם מסננים כדי למנוע זיהום צולב. - הכינו מיכל (reservoir) עבור כל זן. השתמשו בפפיטה של 1 mL כדי להעביר 2-3 mL של התרבית המדוללת למיכל. עבור עמודות 1-10, השתמשו בפפיטה רב-ערוצית כדי להוסיף 20 µL של התרבית החיידקית המדוללת לכל בארה. החליפו טיפים בין כל הוספה.
- כסו והדגירו את לוח המיקרו-פלייט בתנאים הרצויים (למשל, 37 °C למשך 10 h או 22 °C למשך 22 h).
- בנקודת זמן של 2 h או במרווחי זמן רצויים אחרים, הוציאו את לוחות המיקרו-פלייט מהאינקובטור.