1. הכנת תרביות ליסוגן שאינן מושראות ותרביות מושראות להפקת RNA (חומצה ריבנוקלאית)
- הכינו תרבית לילה רעננה על ידיe-inoculation של מושבה בודדת של הליסוגן ל-5 mL של LB, ודגרו ב-37 °C עם ניעור (180 rpm (סל"ד)) למשך 18–24 שעות.
- בצעו תת-תרבית (Subculture) לתרבית הלילה ב-80 mL של LB (Lysogeny broth) ביחס של 1:100 בשמונה בקבוקים של 250 mL.
- סמנו את הבקבוק הראשון כ-"un-induced" (לא מושרה) ואת השאר כ-"induced" (מושרים), יחד עם נקודות הזמן שבהן יש לאסוף כל דגימה (למשל, "induced t = 0", "induced t = 10 min", "induced t = 20 min" וכו'; (איור 1).
- לאחר 90 דקות של דגירה, כאשר ה-OD (צפיפות אופטית) 600 היא בין 0.1–0.2, או בזמן של השראה ספונטנית מינימלית (ראו את הדיון), הוסיפו 4 µL של חומצה אצטית קרחית 1% (v/v) לבקבוק ה-un-induced (איור 1).
הערה: מכיוון שחומר ההשראה בעבודה זו הוכן תוך שימוש בחומצה אצטית קרחית 1% כממס, נוספה אותה כמות של ממס לבדו כשלב בקרה. ניתן לשקול בקרות חלופיות בהתאם להכנת חומרי השראה שונים. - הוסיפו את תרבית ה-80 mL מהבקבוק ה-un-induced ל-720 mL של LB סטרילי, והוסיפו מיד את תמיסת העצירה (פנול 5% [v/v] קר, pH 4.3, אתנול 95% [v/v]) בנפח המהווה 20% מנפח התרבית (160 mL), ודגרו על קרח למשך מינימום 30 דקות ולא יותר מ-2 שעות כדי לייצב את תמלילי ה-RNA. זוהי הדגימה הבלתי-מושרהה.
- השרו את שאר התרביות בשבעה בקבוקים של 250 mL (איור 1) באמצעות ה-FMIC (ריכוז עיכוב מינימלי סופי) של חומר השראה מתאים (במקרה זה, 25 mg·mL−1 norfloxacin, שהוכן בחומצה אצטית קרחית 1% [w/v], שנעשה בו שימוש בריכוז סופי של 1 µg·mL−1), ערבבו היטב, ודגרו ב-37 °C עם ניעור ב-180 rpm למשך שעה אחת.
הערה: שלב זה יאלץ את תרבית הליסוגן למצב מתואם יותר של רפליקציה ליטית. רוב התאים בתרבית יתחילו לעבור ייצור ליטי של חלקיקי פאג זיהומיים. - אפשרו לתאים להתאושש על ידי הוספת 80 mL של תרבית מהבקבוק המושרה ל-720 mL של LB סטרילי, מה שמדלל ביעילות את חומר ההשראה. אספו את התאים הבקטריאליים מכל בקבוק כל 10 דקות מזמן 0 ועד שעה אחת על ידי הוספת תמיסת עצירה, כפי שצוין בשלב 1.5.
הערה: תמיסת העצירה מייצבת את ה-RNA למשך עד שעתיים. עם זאת, כדי לשפר את יציבות הדגימה, בצעו את כל השלבים הבאים ב-4 °C. - אספו את התאים על ידי סבוב (centrifugation) ב-10,000 x g למשך 15 דקות ב-4 °C בהקדם האפשרי, ולאחר זמן שלא יעלה על שעתיים מהטיפול כדי למנוע פירוק של ה-RNA.
- שפכו את הנוזל העליון (supernatant), ותלו את משקעי הבקטריות בעדינות בנוזל שנותר באמצעות פפיטה אוטומטית מתכווננת לפני העברת כל דגימה למיקרו-צנטריפוגה של 1.5 mL.
- סובבו את מבחנות המיקרו-צנטריפוגה במהירות גבוהה (13,000 x g) במיקרו-צנטריפוגה ב-4 °C למשך דקה אחת, ושפכו את הנוזל העליון שנותר.
- הקפיאו במהירות (Flash-freeze) את המשקעים על ידי טבילת כל מבחנת מיקרו-צנטריפוגה אטומה בחנקן נוזלי. דבר זה יסייע לליזיס יעיל של התאים לצורך מיצוי RNA.
- הוסיפו TRIzol (1 mL) לכל משקע קפוא, והומוגניזו את התרחיף באמצעות פפיטה (אין להשתמש ב-vortex). אחסנו ב-−80 °C עד למועד ביצוע מיצוי ה-RNA עבור כל הדגימות.
הערה: ניתן להשהות את הפרוטוקול בנקודה זו. - חזרו על שלבים 1.1–1.13 עם שלוש חזרות ביולוגיות.