מאמר שיטה

בידוד וטיהור של נגיפים מגופי חרקים נגועים

66 צפיות

⸱

30 בספטמבר 2026

במאמר זה

תקציר

מיצוי נגיף שלם הומגניזציה של גופים שלמים של *H. vitripennis* חיוביים לנגיף בבופר פוספט, pH ~7.2, עם 0.02% sodium diethyldithiocarbamate trihydrate (DETCA), באמצעות וורטקס במרווחי זמן של כ-10 שניות עד שלא יישארו גושי רקמה גדולים. מיצוי הנגיף יתבצע באמצעות סנטריפוגה במהירות גבוהה (superspeed centrifugation) ב-124,500 x g למשך 4 שעות ב-4 °C או ב-22,000 x g למשך 16 שעות ב-4 °C. אם נוצר משקע בחלק העליון, יש להסירו באמצעות מקלון צמר סטרילי. יש להשליך את הנוזל העליון (supernatant). איסוף המשקע (pellet) והמסתו ב-5 מ"ל בופר פוספט 10 mM (ללא DETCA), pH ~7.2, המכיל 0.4% Na-deoxycholic acid ו-4% polyethylene glycol hexadecyl ether (Brij 52). כדי לערבב את המשקע היטב, יש להסיר אותו מדופן המבחנה ולמעוך אותו עד להמסתו בתמיסה, במידת הצורך. יש להוסיף בופר פוספט 10 mM נוסף במרווחים של כ-5 מ"ל כדי לסייע להמסת המשקע במידת הצורך, ולחלק את התוצאה לשתי מבחנות. סנטריפוגה של התמיסה ב-300 x g למשך 15 דקות. יש להסיר את הנוזל העליון ולהעביר את התמיסה דרך מסנן של 0.45 μm, ולאסוף את התסנין (filtrate) למבחנת איסוף גדולה. העברת התסנין לממברנת דיאליזה עם סף חיתוך של משקל מולקולרי (MWCO) של 3.5 kD, תוך שימוש בכמויות קטנות של בופר פוספט 10 mM (pH 7) ללא DETCA במידת הצורך. יש להניח את ממברנת הדיאליזה בכלי זכוכית (beaker) גדול מלא ב-ddH2O בטמפרטורה של 4 °C. יש להחליף את ה-ddH2O מדי שעה למשך 5 עד 6 שעות, עד להיווצרות משקע לבן בממברנה. איסוף הנגיף המזוקק מתוך הממברנה, וביצוע סדרת דילול של פי 10 לתמיסת הנגיף (100%) על ידי הוספת 10 μl מהתמיסה ל-90 μl של ddH2O. לאחר מכן, יש להוסיף 10 μl מהדילול ל-90 μl נוספים של ddH2O עד להגעה לדילול של 1:100,000. יש לאחסן את תמיסת הנגיף בטמפרטורה של -80 °C. Biesbrock, A. M. ועמיתיהם התרבות של Homalodisca coagulata virus-01 באמצעות Homalodisca vitripennis תרבית תאים. .J. Vis. Exp (2014)

סרטון זה מדגים את ההרבייה במעבדה (in vitro) של Homalodisca coagulata Virus-01 באמצעות תאי מאכסן ממקור חרקי. הוא מפרט את השלבים של טיהור הווירוס, החדרתו ושכפולו בתוך תאי חרקים בתרבית.

פרוטוקול

1. מיצוי נגיף שלם

  1. בצעו הומוגנציה של גופים שלמים של H. vitripennis חיוביים לנגיף בבופר פוספט, pH ~7.2, עם 0.02% sodium diethyldithiocarbamate trihydrate (DETCA) באמצעות וורטקס במרווחי זמן של ~10 sec עד שלא יישארו גושים גדולים של רקמה. הוציאו את הנגיף באמצעות סנטריפוגה במהירות גבוהה (superspeed centrifugation) ב-124,500 x g למשך 4 hr ב-4 °C או ב-22,000 x g למשך 16 hr ב-4 °C. אם נוצר משקע בחלק העליון, הסירו אותו בעזרת מקלון צמר סטרילי.
  2. שפכו את הנוזל העליון (supernatant).
  3. אספו את המשקע (pellet) והמיסו אותו ב-5 ml של בופר פוספט 10 mM (ללא DETCA), pH ~7.2, המכיל 0.4% Na-deoxycholic acid ו-4% polyethylene glycol hexadecyl ether (Brij 52).
    1. כדי לערבב את המשקע היטב, הסירו אותו מדופן המבחנה ומעכו אותו עד להמסה מלאה, במידת הצורך.
    2. הוסיפו בופר פוספט 10 mM נוסף במנות של ~5 ml כדי לסייע להמסת המשקע במידת הצורך, וחלקו את התמיסה לשתי מבחנות.
  4. סנטריפוגו את התמיסה ב-300 x g למשך 15 min.
  5. הסירו את הנוזל העליון והעבירו את התמיסה דרך מסנן של 0.45 μm, ואספו את התסנין (filtrate) למבחנת איסוף גדולה.
  6. העבירו את התסנין לממברנת דיאליזה עם סף משקל מולקולרי (MWCO) של 3.5 kD, תוך שימוש בכמויות קטנות של בופר פוספט 10 mM (pH 7) ללא DETCA במידת הצורך.
  7. הניחו את ממברנת הדיאליזה בכלי כימי גדול מלא ב-ddH2O ב-4 °C. החליפו את ה-ddH2O בכל שעה למשך 5 - 6 hr, עד להיווצרות משקע לבן בממברנה.
  8. אספו את הנגיף המזוקק מתוך הממברנה והעבירו את תמיסת הנגיף בריכוז 100% לסדרת מהלולים של פי 10, על ידי הוספת 10 μl של תמיסה ל-90 μl של ddH2O. לאחר מכן, הוסיפו 10 μl מהמהול ל-90 μl נוספים של ddH2O עד להשגת מהילה של 1:100,000.
  9. שמרו את תמיסת הנגיף ב- -80 °C.

חומרים

רשימת החומרים שנעשה בהם שימוש במאמר זה
שםחברהמספר קטלוגהערות
Corning cell culture flasksSigma AldrichCLS430168שטח פנים 25 cm², צוואר נטוי, פקק (אטם פקק)
Olympus DP30BW, IX2-SP, IX71Olympus מיקרוסקופ הפוך ומצלמה
Greiner CELLSTAR multiwell culture platesSigma AldrichM893748 בארות (טיפול TC עם מכסה)
DETCASigma Aldrich228680Sodium diethyldithiocarbamate trihydrate
Corning bottle-top vacuum filter systemSigma AldrichCLS431206ממברנת Cellulose acetate, גודל נקבוביות 0.45 μm, שטח ממברנה 54.5 cm², קיבולת סינון 500 ml
Brij 52Sigma Aldrich388831Polyethylene glycol hexadecyl ether
Phosphate buffer solutionSigma AldrichP5244התקבל בריכוז 100 mM ודולל ל-10 mM עם מים סטריליים
PBSSigma AldrichP5368Phosphate buffered saline
Bovine serum albumin (BSA)Sigma AldrichA2153 
Grace’s Insect medium (supplemented, 1x)Sigma AldrichG8142רכיב למצע גידול H2G+ לקצירנים
L-histidine monohydrateSigma AldrichH8125רכיב למצע גידול H2G+ לקצירנים
Medium 199 (10x)Sigma AldrichM4530רכיב למצע גידול H2G+ לקצירנים
Medium 1066 (1x)Sigma AldrichC0422רכיב למצע גידול H2G+ לקצירנים
Hank’s Balanced Salts (1x)Sigma Aldrich51322Cרכיב למצע גידול H2G+ לקצירנים
L-Glutamine (100x)Sigma AldrichG3126רכיב למצע גידול H2G+ לקצירנים
MEM, amino acid mix (50x)Sigma Aldrich56419Cרכיב למצע גידול H2G+ לקצירנים
1 M MgCl solutionSigma AldrichM8266רכיב למצע גידול H2G+ לקצירנים
Pen-StrepSigma AldrichG6784רכיב למצע גידול H2G+ לקצירנים
NystatinSigma AldrichN6261רכיב למצע גידול H2G+ לקצירנים
GentamycinSigma Aldrich46305רכיב למצע גידול H2G+ לקצירנים
DextroseSigma AldrichD9434רכיב למצע גידול H2G+ לקצירנים
Fetal Bovine SerumSigma AldrichF2442רכיב למצע גידול H2G+ לקצירנים

גלה מאמרים נוספים

טיהור נגיפיםתרבית תאי חרקיםבידוד נגיפיםאולטרה-צנטריפוגציהטכניקת הומוגניזציהממברנת דיאליזההשבת חלקיקים נגיפייםמיצוי באמצעות דטרגנטבופר פוספטשיטת סינון