הרשמה ל-JoVE נדרשת לצפייה בתוכן זה. התחברו או התחילו בגרסת ניסיון בחינם.

מאמר שיטה

תגובת שרשרת של Multiplex Droplet Polymerase לזיהוי מתילציה של DNA בלויקוציטים

941 צפיות

8 ביולי 2025

במאמר זה

תקציר

מקור: Malic, L., et al. Methylation Specific Multiplex Droplet PCR באמצעות מכשיר מחולל טיפות פולימרי לאבחון המטולוגי.J. Vis. Exp. (2020)

סרטון זה מדגים את טכניקת תגובת השרשרת של פולימראז טיפות מרובות לכימות סימולטני של אזורי DNA מתילציה באוכלוסיות תאי דם לבנים שונות כסמן ביולוגי מוקדם לאבחון קליני ופרוגנוזה.

פרוטוקול

1. יצירת טיפות ו-PCR

הערה: טבלה 1 מתארת מידע על פריימרים קדימה ואחורה יחד עם בדיקות הידרוליזה מרוות כפולה עבור הגנים C-LESS, CD3Z ו- Foxp3, הנדרשים להגברה מרובת המולטיפלקסים של מטרות גנים שעברו דה-מתילציה.

  1. הכן את תערובת האב כמתואר בטבלה 2.
  2. הפשירו את כל מרכיבי תערובת האב למעט תערובת האנזימים. מערבבים היטב את תערובת המאסטר על ידי פיפטציה מעלה-מטה, ומסובבים מטה לזמן קצר.
  3. הוסף את הנפח המתאים (1 μL) של DNA מומר ביסולפיט לתערובת האב בצינור PCR. ערבבו את התגובה על ידי פיפטציה מעלה-מטה וסחרור מטה לזמן קצר.
  4. חבר צינורות נוזלים חד פעמיים (ת.ז. 0.25 מ"מ, קוטר חיצוני 1.6 מ"מ) לשני מזרקי זכוכית מדויקים (נפח 250 מיקרוליטר) באמצעות אביזרי PEEK.
  5. מלאו מזרק זכוכית מדויק אחד ב-250 מיקרוליטר שמן נשא המכיל 5% פלואורו-פעילי שטח.
  6. מלאו מזרק זכוכית מדויק נוסף ב-50 מיקרוליטר שמן נשא לפני טעינת 100 מיקרוליטר של תערובת ה-PCR כדי להבטיח ניפוק של כל נפח הדגימה במהלך התחלוב.
  7. הגדר מכשיר מיקרופלואידי טיפתי על במה של מיקרוסקופ אור זקוף המצויד במצלמה במהירות גבוהה כדי לצפות ולתעד היווצרות טיפות בזמן אמת.
  8. הניחו את המזרקים הממולאים מראש על משאבת המזרק הניתנת לתכנות ובאמצעות איחוד PEEK עם אביזרים (ראו טבלת חומרים), חברו את הצינורית של המזרקים לצינורות של תעלות הכניסה המתאימות של המכשיר המיקרופלואידי הטיפתי.
  9. מקם את הצינור מהשקע של מחולל הטיפות בתוך צינור PCR של 0.5 מ"ל.
  10. התאימו את קצב הזרימה של משאבת המזרק ל-2 מיקרוליטר/דקה ואפשרו לגודל הטיפה להתייצב לפני איסוף התחליב שנוצר.
  11. לאסוף את תחליב ולהעביר 75 μL לצינור PCR 0.2 מ"ל עבור מחזור תרמי.
  12. ודא שתכולת השמן בצינור ה-PCR תואמת היטב את נפח הפאזה המפוזרת על מנת למנוע התלכדות של הטיפות במהלך מחזור תרמי.
  13. הניחו את צינור ה-PCR בנפח 0.2 מ"ל במחזור תרמי ובצעו את פרוטוקול המחזור באופן הבא: חימום מקדים ב-95°C למשך 5 דקות, לאחר מכן 45 מחזורי דנטורציה ב-95°C למשך 15 שניות, וחישול/הארכה ב-60°C למשך 30 שניות.

טבלה 1: תכנון בדיקות פריימר והידרוליזה.

FOXP3 קדימהGGG TTT TGT TGT TAT AGT TTT TG
FOXP3 הפוך TTC TCT TCC TCC ATA ATA TCA
CD3Z קדימה GGA TGG TTG TGG TGA AAA GTG
CD3Z הפוך CAA AAA CTC CTT TTC TCC TAA CCA
C-LESS קדימה TTG TAT GTA TGT GAG TGT GGG AGA GA
C-LESS הפוך TTT CTT CCA CCC CTT CTC TTC C
בדיקת FOXP3 /56-FAM/CA ACA CAT C/ZEN/C AAC CAC CAT /3IABkFQ/
בדיקת CDZ3 /56-HEX/CC AAC CAC C/ZEN/A CTA CCT CAA /3IABkFQ/
גשושית ללא C /56-CY5/CT CCC CCT C/ZEN/T AAC TCT AT/3IABkFQ/

טבלה 2: מתכון מאסטר למיקס עבור mdPCR.

מגיב פתרון מלאי נפח מיקס מאסטר ריכוז עבודה
Tris-HCl1 מטר2 μL20 מ"מ
KCl1 מטר10 מיקרוליטר100 מ"מ
MgCl225 מ"מ16 מיקרוליטר4 מ"מ
פריימרים C-LESS10 מיקרומטר10 מיקרוליטר1 מיקרומטר כל אחד
פריימרים CD3Z10 מיקרומטר10 מיקרוליטר1 מיקרומטר כל אחד
פריימרים FOXP310 מיקרומטר10 מיקרוליטר1 מיקרומטר כל אחד
גשושית C-LESS10 מיקרומטר5 מיקרוליטר500 נאנומטר
בדיקת CD3Z10 מיקרומטר5 מיקרוליטר500 נאנומטר
בדיקת FOXP310 מיקרומטר5 מיקרוליטר500 נאנומטר
HotStarTaq DNA פולימראז5 יחידות/μL8 מיקרוליטר0.4 יחידות/μL
יעד DNA שטופל בביסולפיטמשתנהמשתנהמשתנה
מים ללא Nucleaseמשתנה
נפח כולל100 מיקרוליטר

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

גילויים

לא הוכרז על ניגוד עניינים.

חומרים

רשימת החומרים שנעשה בהם שימוש במאמר זה
שםחברהמספר קטלוגהערות
צינור PCRBio-Rad, מיסיסוגה, ONTFI0201
פלואורו-פעילי שטחרן ביוטכנולוגיות, בוורלי, מסצ'וסטס008-פלואורופעילי שטח
צינורות נוזלים חד פעמייםדולומיט3200063
צינורות נוזלים חד פעמייםדולומיט3200302
אביזרי הצצהIDEX בריאות ומדע, אוק הארבור, WAP-881
שמן נשא3M , סנט פול, מינסוטה
מיקרוסקופ אור זקוףNikon, Melville, NY

תגיות

Multiplex Droplet PCRDNA