1. בדיקת שחרור LDH
הערה: עבור בדיקת שחרור LDH, זרעו את התאים בצלחת של 96 בארות. אין להסיר את המדיום לאחר הפריימינג.
- החלף את המדיום בתווך טרי (DMEM-5: 10 מ"ל של DMEM נטול פנול-אדום + 5 מ"מ HEPES + 0.2 מ"ג/מ"ל L-גלוטמין + 0.05 מ"מ 2-מרקפטואתנול + 5% FBS) המכיל LPS של 100 ננוגרם/מ"ל בבארות המכילות תאי מקרופאגים דבקים (500 מיקרוליטר עבור לוחות 24 בארות או 50 מיקרוליטר עבור לוחות 96 בארות).
הערה: ישנם מגוון שינויים מבניים ב- LPS, המשפיעים על היכולת לעורר פרימינג בתיווך TLR4. LPS מסלמונלה מינסוטה R595 (Re) מומלץ.
- לדגור על הצלחת במשך 3 שעות ב 37 ° C ו 5% CO2.
- הוסף 50 μL של DMEM-5 המכיל 10 μM nigericin לבארות הניסוי ו 50 μL DMEM-5 לבארות הבקרה הספונטניות ו -100% ליזיס. יש לדגור במשך 60 דקות בטמפרטורה של 37°C ו-5% CO2.
- לאחר 30 דקות, הוסף 10 μL של חיץ ליזיס 10x לבארות בקרת ליזה 100% והוסף 10 μL של DMEM-5 לבארות האחרות. במהלך הדגירה הזו, הסר בקבוקון אחד של תערובת המצע (1.5 מ"ל של מצע מיובש בהקפאה) ו 1 aliquot של חיץ assay (~ 12 מ"ל) מהמקפיא ולתת להם להפשיר מוגן מאור לטמפרטורת החדר.
הערה: תערובת המצע מכילה מלח טטרזוליום (יודוניטרוטטרזוליום סגול), המומר למוצר פורמזן אדום.
- לאחר הדגירה הכוללת של 60 דקות, צנטריפוגו את הצלחת למשך 5 דקות ב 500 x גרם ב 10 ° C. מעבירים 50 μL של supernatant לצלחת שטוחה שקופה. במהלך תקופה זו, יש להוסיף 12 מ"ל של חיץ בדיקה לבקבוקון תערובת המצע ולדגור בטמפרטורת החדר למשך 5 דקות לפני השימוש.
- מוסיפים 50 מיקרוליטר מצע לכל באר ודגרים במשך 30 דקות בחושך. כלול בארות בינוניות בלבד עבור ערכים ריקים. בדוק את הצלחת לאחר 15 דקות כדי לוודא שהאות לא יחרוג ממגבלת הזיהוי של קורא הלוחות.
- לאחר 30 דקות, הוסף 50 μL של תמיסת עצירה (1 M חומצה אצטית) ולמדוד OD490 באמצעות קורא לוחות.
- חשב את אחוז ליזה התא באמצעות הנוסחה הבאה:
% ציטוטוקסיות = ((ניסיוני - ספונטני)/(מקסימום - ספונטני))×100
ניסיוני: תאים שטופלו בניגריצין; ספונטני: תאים לא מטופלים; מקסימום: תאים שנחשפו לחיץ ליזיס.