כל ההליכים הכרוכים באיסוף דגימות בוצעו בהתאם להנחיות IRB של המכון.
1. בידוד PBMCs והעשרה/טיהור תאי NK
הערה: ניתן לבצע גם שיטות אחרות לבידוד תאי דם חד-גרעיניים היקפיים (PBMCs) ולהעשרה/טיהור.
- לשאוב 200 מ"ל של דם בתנאים מוסדרים לתוך צינור המכיל הפרין.
- הוסף 15 מ"ל של מדיום שיפוע הצפיפות לתוך צינור 50 מ"ל עם מחסום נקבובי משולב. סובב את הצינור ב 1000 x גרם במשך 30 שניות.
- הוסף 12.5 מ"ל דם לתוך הצינור, ואחריו עוד 12.5 מ"ל של PBS, והפוך בעדינות 3x. סובב את הצינור ב 800 x גרם במשך 15 דקות בטמפרטורת החדר (RT) ללא הפסקות.
- הכינו צינור חרוטי 50 מ"ל עם 40 מ"ל PBS לכל צינור עם מחסום נקבובי בזמן שהתאים מסתובבים.
- בזהירות להסיר את הצינורות ולבדוק לאחר צנטריפוגה. בדוק אם קיימת שכבה דקה ולבנה של PBMCs מעל המחסום הנקבובי, בין התיחום של 20 מ"ל ל-25 מ"ל בצינור של 50 מ"ל.
- יש להסיר בזהירות כמה שיותר נוזלים מהחלק העליון באמצעות פיפטה מבלי להפריע לשכבת PBMC הדקה והלבנה.
- עם פיפטה סרולוגית נקייה של 10 מ"ל, הסר בעדינות את שכבת PBMC בנוסף לשכבה הנוזלית השקופה והצהבהבה עד לפילטר של הצינור.
- יש לגרש את ה-PBMCs והנוזל לתוך החרוט 50 מ"ל המכיל PBS שהוכן בשלב 1.4. סובב צינורות ב RT ו 300 x גרם במשך 5 דקות.
- שאפו לשטוף PBS ולהוסיף 40 מ"ל נוספים של PBS. סובב צינורות ב RT ו 300 x גרם במשך 5 דקות.
- לאחר השטיפה, ספרו את התאים והשהו אותם מחדש ב-40 μL של 2% BSA/PBS לכל 1 x 107 תאים.
- המשך לבידוד של תאי NK באמצעות שיטת הבחירה. האפשרויות כוללות מיון ידני או אוטומטי מבוסס חרוזים מגנטיים. ניתן לבצע גם מיון תאים המופעל על ידי פלואורסצנטיות.
- הסר aliquot קטן של תאים כדי לקבוע את הטוהר של תאי NK על ידי ציטומטריית זרימה. אסטרטגיית Gating כוללת את הדברים הבאים: שער על תאים חיים בהתבסס על פרופיל פיזור קדימה לעומת צד, ולאחר מכן להעריך את הטוהר בהתבסס על סמני NK (למשל, CD3, CD56) באוכלוסייה החיה הספציפית. טוהר אופייני הוא >95%.
- לאחר השלמת הבידוד, סובבו תאים ב-RT וב-300 x g במשך 5 דקות כדי לשאוף ולשאוף.
- השהה מחדש את גלולת התא ל 1 x 107 תאים / מ"ל בסל"ד 1640 עם חומרים מזינים, 10% FBS מומת חום, 1 mM נתרן פירובט, 55 mM 2-ME, ו 10 mM HEPES (pH = 7.2).
2. הפעלה בתיווך נוגדנים של תאי NK באמצעות FcγRIIIa
- הגדר מיקרוצנטריפוגה בקירור ל 4 ° C.
- יש להוציא 1 x 106 (100 μL של) תאי NK מרחפים לתוך צינור(ות) 1.5 מ"ל ולהניח על ice.
הערה: תאים ניתן לחלק לתוך צלחת 96 באר U-תחתית אם יש דגימות רבות.
- הכן 1 μL של 100 מיקרוגרם / מ"ל rituximab (או נוגדן עניין) לכל דגימה ולהוסיף 1 μL לתאים לריכוז סופי של 1 מיקרוגרם / מ"ל נוגדן.
הערה: מולקולות אחרות ניתן להוסיף לתאים בשלב זה או מוקדם יותר להערכת השפעות משולבות. כאן, ritixumab שימש לגירוי. במחקרים קודמים נוספו מעכבי מולקולות קטנות לגירויים.
- לדגור את הדגימה על קרח במשך 30 דקות. במהלך הדגירה, להכין 50 μL של 50 מיקרוגרם / מ"ל נוגדן שרשרת אור κ אנטי אנושי לכל דגימה במדיה וחם ל 37 ° C על בלוק חום או באמבט מים.
- לאחר הדגירה של תאים על קרח, להוסיף 1 מ"ל של מדיה קרה כקרח ולהסתובב ב 135 x גרם במשך 5 דקות ב 4 ° C. לשטוף שוב עם 1 מ"ל של מדיה קרה כקרח.
- שאפו את הסופרנאטנט לאחר השטיפה האחרונה והוסיפו 50 μL של תערובת שרשרת האור κ אנטי-אנושית שהוכנה בשלב 2.4.
- יש לדגור מיד על דגימות עבור נקודות הזמן שנקבעו על-ידי משתמש הקצה ב-37°C בבלוק חום או באמבט מים.
- עצור את הגירוי על ידי הוספת 1 מ"ל של מדיה קרה כקרח ומיד סובב דגימות בצנטריפוגה מקוררת ב 135 x גרם במשך 5 דקות. לשטוף פעם נוספת עם 1 מ"ל של מדיה קרה כקרח.