1. אמצעי זהירות
הערה: שיטה זו ישימה הן לנגיף הכלבת החי (RABV) והן לחיסון מומת.
- השתמש בנוהלי מעבדה ובטיחות נאותים.
- יש ללבוש ציוד הגנה אישי (PPE) מתאים, כולל מעיל חד פעמי, כפפות, מסכות, משקפיים וכו'.
- כאשר הנגיף החי הוא titrated, להשתמש בארון בטיחות ביולוגי סוג II.
- שקול כל חומר במגע עם הדגימות (ריאגנטים, פתרונות כביסה, וכו ') כחומר זיהומיות.
- טפל בחומר המזוהם על ידי טבילתו בתמיסת אקונומיקה (2,5% של נתרן היפוכלוריט) למשך 30 דקות לטיהור.
- לטפל בכימיקלים בהתאם לנוהלי מעבדה טובים.
2. הכנה
- השתמש בריאגנטים ברמה אנליטית במידת האפשר.
- הכינו תמיסות טריות של חיץ הציפוי/חיץ הקרבונט, חיץ הפסיבציה, המדלל וחיץ הציטראט (טבלה 1), סננו דרך מסננים של 0.45 או 0.22 מיקרומטר ואחסנו בטמפרטורה של 4°C למשך יום אחד לפני השימוש כדי לשמור על טוהר אנליטי שלהם.
- אפשר לריאגנטים להגיע לטמפרטורת החדר (+18 ° C עד +25 ° C) 30 דקות לפני השימוש והומוגניזציה על ידי ערבוב עדין לפני השימוש.
3. רגישות מיקרו-פלטה
הערה: השתמש ב-96 לוחות ספיחת היטב המותאמים לקשירת כמויות גבוהות של אימונוגלובולינים (למשל, ראה טבלת חומרים).
- לכל באר, להוסיף 200 μL של נוגדן חד שבטי (mAb-D1) מדולל במאגר פחמתי.
הערה: ריכוז אופטימלי של כ-1 מק"ג/מ"ל נקבע בניסוי ומתאים לדילול משוער של 1/2000 של mAb-D1 המטוהר. ריכוז מומלץ זה מצוין עבור כל אצווה mAb-D1 ויש לאמת אותו מעת לעת עם הבקרה החיובית.
- מכסים את הצלחת בסרט דבק ודגרים על המיקרו-צלחת במשך 3 שעות בטמפרטורה של 37°C באווירה לחה.
- בזהירות לשאוף ולהעביר את תוכן הבאר לתוך נמען המכיל 2,5% נתרן hypochlorite פתרון.
- הפכו את צלחת המיקרו והניחו לה להתייבש על נייר סופג בטמפרטורת החדר למשך 5 דקות.
4. פסיבציה של Microplate
- לכל באר, להוסיף 300 μL של חיץ פסיבציה.
- מכסים את הצלחת בסרט דבק ודגרים במשך 30 דקות בחום של 37°C.
- שאפו בזהירות והעבירו את תכולת הבאר לנמען המכיל 2,5% תמיסת נתרן היפוכלוריט.
- הפכו את צלחת המיקרו והניחו לה להתייבש על נייר סופג בטמפרטורת החדר למשך דקה אחת
הערה: ניתן להשתמש במיקרו-צלחת באופן מיידי או לאחסן אותה אטומה בטמפרטורה של -20°C למשך עד 3 חודשים עד לשימוש.
5. בדיקת ELISA
הערה: לביסוס עקומת הבקרה של חיסון הייחוס, שלב 5.3 אינו נדרש; כדי לבצע טיטרציה של החיסון הנבדק יש צורך בכל השלבים 5.1 עד 5.6.
- שטיפת צלחת המיקרו הרגישה
- לכל באר, להוסיף 300 μL של חיץ הכביסה.
- שאפו בזהירות והעבירו את תכולת הבאר לנמען המכיל 2,5% תמיסת נתרן היפוכלוריט.
- חזור על שלבים 5.1.1 ו- 5.1.2 חמש פעמים נוספות כדי לשטוף את הצלחת הרגישה באופן נרחב.
- הפוך את צלחת המיקרו ותן לה להתייבש על נייר סופג בטמפרטורת החדר במשך 1 דקות.
- דילולים של חיסון הייחוס לעקומת הבקרה
- יש להרכיב מחדש את חיסון הייחוס (אנטיגן תיקוף לוט 09) ב-1 מ"ל מים מזוקקים המתאים לריכוז של 10 מיקרוגרם/מ"ל של גליקופרוטאין של נגיף הכלבת.
- הכינו דילול פי עשרה של חיסון הייחוס המשוחזר במדלל כדי להגיע ל -1 מיקרוגרם / מ"ל של גליקופרוטאין וירוס הכלבת.
- הכינו 6 דילולים סדרתיים כפולים של חיסון ייחוס זה במדלל כמצוין בטבלה 1.
- מפזרים 200 μL של המדלל בכפילות (בארות 1H/2H) כדי לשמש כבקרה ריקה.
- להפיץ 200 μL לכל באר של כל דילול חיסון ייחוס כפול (בארות G1/G2 עד A1/A2).
- דילולים של החיסון הנבדק לטיטרציה שלו
- הכינו דילול פי עשרה של החיסון הנבדק במדלל.
- הכינו 7 דילולים סדרתיים כפולים של החיסון הנבדק בדילול כמצוין בטבלה 2.
- יש להפיץ 200 מיקרוליטר לכל באר של כל דילול חיסון שנבדק בכפילות (בארות H3/H4 עד A3/A4).
- דגירה/שטיפה של צלחת ELISA
- מכסים את צלחת המיקרו בסרט דבק ודגרים במשך שעה אחת ב 37 מעלות צלזיוס.
- הסר את הסרט, שאפו בזהירות והעבירו את התוכן של כל באר לנמען המכיל 2,5% תמיסת נתרן היפוכלוריט.
- לכל באר, להוסיף 300 μL של חיץ כביסה.
- שאפו בזהירות והעבירו את התוכן של כל באר לנמען המכיל 2,5% תמיסת נתרן היפוכלוריט.
- חזור על שלבים 5.4.3 ו- 5.4.4 חמש פעמים כדי להסיר את האנטיגן הלא מאוגד ולשמר את טרימרים חלבון G הקשורים לנוגדן המצופה (mAb D1).
- הפכו את צלחת המיקרו והניחו לה להתייבש על נייר סופג בטמפרטורת החדר למשך דקה.
- קשירה של mAb-D1 מצומד peroxidase
- יש לפזר 200 μL לכל באר של הדילול המומלץ (1/2000) של mAb-D1 המסומן בפרוקסידז בדילול (ריכוז משוער של 1μg/mL). ריכוז מומלץ מצוין עבור כל אצווה mAb-D1 ויש לאמת אותו מעת לעת עם הבקרה החיובית.
- מכסים את צלחת המיקרו בסרט דבק ודגרים במשך שעה אחת ב 37 מעלות צלזיוס.
- הסר את הסרט, שאפו בזהירות והעבירו את התוכן של כל באר לנמען המכיל 2,5% תמיסת נתרן היפוכלוריט.
- מוסיפים לכל באר, 300 μL של חיץ הכביסה.
- שאפו בזהירות והעבירו את התוכן של כל באר לנמען המכיל 2,5% תמיסת נתרן היפוכלוריט.
- חזור על שלבים 5.5.4 ו- 5.5.5 חמש פעמים כדי להסיר נוגדן לא קשור המסומן בפרוקסידז (mAb D1).
- הפכו את צלחת המיקרו והניחו לה להתייבש על נייר סופג בטמפרטורת החדר למשך דקה.
- התגלות באמצעות כרומוגן-מצע
- פיזור 200 μL לכל באר של תמיסת כרומוגן-מצע.
- אוטמים את צלחת המיקרו עם סרט ודגרים בחושך בטמפרטורת החדר למשך 30 דקות. מתפתח צבע צהוב-כתום שעוצמתו פרופורציונלית לכמות נוגדנים קשורים המסומנים בפרוקסידז (mAb D1).
- עצור את התגובה על ידי הוספת 50 מיקרוליטר של תמיסה עוצרת לכל באר.
- נגב בזהירות את תחתית צלחת המיקרו והנח אותה בספקטרופוטומטר כדי לקבוע את הצפיפות האופטית (OD) ב 492 ננומטר של כל הבארות בשימוש: בקרה שלילית (ריקה), חיסון ייחוס וחיסון נבדק.
- אסוף נתוני OD בתבנית קובץ .xls או .xlsx לצורך ניתוח.
טבלה 1. חוצצים המשמשים בבדיקה.
| מאגרים וריאגנטים | הכנה |
חיץ ציפוי
(חיץ קרבונט 50mM pH=9.6) | הוסף נתרן פחמתי 50 mM (Na2CO 3-10H 2O) לסודיום ביקרבונט 50 mM (NaHCO3) עד pH הרצוי (כ 1/10 נפח של סודיום ביקרבונט) |
| חיץ פסיבציה | 0.3% אלבומין בסרום בקר (BSA, חלק V), 5% סוכרוז במאגר פחמתי 50 mM pH 9.6 |
| 10x פוספט חוצץ מלוחים pH=7 (PBS 10x) | NaCl 80 גרם, KCl 2 גרם, Na2PO 4-12H 2O 11.33 גרם, KH2PO4 2g ב 1L מים מזוקקים. כוונן pH=7 עם 4N NaOH |
| חיץ כביסה | 0.05% טווין ב 1x PBS |
| מדלל | 0.5% אלבומין בסרום בקר (חלק V), 0.05% טווין ב-1x PBS (התאמת pH ל-7 בגלל החמצה על ידי BSA) |
מאגר ציטראט pH-5.6
(למצע פרוקסידז) | 11.67 גרם Tri-sodium citrate-2H2O (Na3C6H5O 7-2H20), 2.17 גרם חומצת לימון-1H20 בליטר מים מזוקקים |
| תמיסת מצע-כרומוגן | 50 מ"ג טבלית דיאמין אורתו-פנילן, 0.1% מי חמצן 30% (110 כרכים) ב-25 מ"ל חוצץ ציטראט pH 5.6 |
פתרון עצירה
(4N חומצה גופרתית) | 10 מ"ל H2SO4 36N ב-80 מ"ל מים מזוקקים מקוררים. דילול חייב להתבצע באמבט קרח |