מאמר שיטה

לכידה חיסונית וציטומטריית זרימה של שלפוחיות חוץ-תאיות לאפיון אנטיגני

8 ביולי 2025

במאמר זה

תקציר

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

מקור: Arakelyan, A. et al., וירומטריית זרימה לניתוח ספקטרום אנטיגני של נגיפים ושלפוחיות חוץ-תאיות.J. Vis. Exp. (2017)

סרטון זה מדגים את הלכידה החיסונית של שלפוחיות חוץ-תאיות באמצעות צימודים של ננו-חלקיקים מגנטיים עם תווית פלואורסצנטית. התהליך כולל היווצרות מורכבת, צביעה בנוגדני זיהוי מסומנים פלואורסצנטית, הפרדה מגנטית וניתוח ציטומטרי זרימה לאפיון אנטיגני.

פרוטוקול

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

1. צימוד של ננו-חלקיקים מגנטיים (MNPs)

  1. השתמש בהליך צימוד מסחרי וריאגנטים כדי להתאים MNPs עם נוגדנים (ABS) (בדרך כלל 1 מ"ג). ננו-חלקיקים של תחמוצת ברזל עם חומצה קרבוקסילית כקבוצות תגובתיות משמשים.
    1. אם הנוגדנים נמצאים בנפח גבוה מ-0.5 מ"ל, יש להתרכז באמצעות רכז 100K. סבבו במהירות של 2,000 x גרם במשך 3-5 דקות.
  2. בסוף ההליך, לאחר הוספת 10 μl של חיץ מרווה, להעביר MNPs לצינור 12 מ"מ x 75 מ"מ ולהוסיף 3 מ"ל חיץ כביסה/אחסון. הניחו את הצינור בחור המרכזי של מפריד מגנטי והשאירו למשך הלילה בטמפרטורה של 4°C.
  3. ודא כי MNPs נאספו כולם לצד הצינור, ולאחר מכן בזהירות צינור החוצה את כל הנוזלים. הוסיפו 3 מ"ל של חיץ כביסה/אחסון טרי והחזירו למגנט.
  4. לאחר מספר שעות, בדוק אם MNPs נאספים לצד הצינור ולאחר מכן צינור את הנוזל. יש להשתמש ב-2 מ"ל של מאגר כביסה/אחסון כדי להשעות מחדש את ה-MNPs ולאחסן בטמפרטורה של 4°C.
  5. ודא ששרירי הבטן מצומדים ל-MNPs על-ידי תיוג שלהם עם מקטע נוגדן Fab פלואורסצנטי רלוונטי (לדוגמה, אנטי-עכבר עז אם אתה משתמש בעכבר חד-שבטי Ab ללכידה כמתואר בסעיף 2) והפעל על ציטומטר זרימה.

2. תיוג נוגדנים המוצמדים ל-MNPs

  1. ערבבו 60 μl (3.9 x 1012 חלקיקים) של MNPs (לכל מצב) ו-5 μl (של תמיסה מסחרית של 200 מיקרוגרם/מ"ל) המסומנים כמקטעי Fab, ספציפיים לאיזוטיפ של לכידת Ab בצינור מיקרוצנטריפוגה של 1.5 מ"ל.
  2. יש לדגור בטמפרטורת החדר (RT) במשך 30 דקות עם ערבוב רציף.
  3. הרטיבו מראש רכז 100K עם 300 μl של מלח חוצץ פוספט (PBS) וסחררו במיקרוצנטריפוגה במהירות של 1,500 x גרם למשך 5 דקות.
  4. מטהר קומפלקסים מסומנים בעמודת 100K. סובבו את התערובת משלב 2.2 במיקרו-צנטריפוגה במהירות של 1,500 x גרם במשך 5 דקות, שטפו עם PBS של 200 μl והתאוששו בנפח התחלתי.

3. שימוש בקומפלקסים מסומנים של Ab-MNP כדי ללכוד חלקיקים מעניינים (שלפוחיות חוץ-תאיות, EVs)

  1. יש לדגור על MNPs מסומנים מראש 60 μl (3.9 x 1012 חלקיקים) עם הכנת EV (100 μl).
    1. הכינו תכשירים לרכב חשמלי בשיטות שונות. כאן, לטהר EVs על שיפועים סוכרוז, לאסוף אותם פלזמה ענייה טסיות באמצעות ריאגנטים משקעים exosome או לבודד ישירות פלזמה.
      הערה: יש לקבוע יחסים אופטימליים לכל ניסוי והם תלויים בריכוז הרכב החשמלי בהכנה. מקטע MNP-Ab צריך להיות ~ 106 עודף בהשוואה לריכוז של חלק EV.
  2. יש לדגור שעה אחת בטמפרטורה של 4°C עבור כלי רכב חשמליים.
  3. הוסף 2.5% IgG עכבר / IgG אנושי כדי לחסום קשירת Fc, מערבולת עדינה, לדגור 3-5 דקות ב RT.
  4. הוסף ריכוזים מומלצים או מצופים על-ידי היצרן של כל ABS לגילוי ודגור 20 דקות נוספות ב-RT.

4. הפרדת כלי הרכב החשמליים שנלכדו ב-MNP מנוגדנים לא מאוגדים באמצעות עמודים מגנטיים

  1. הכינו עמוד הפרדה מגנטית לשימוש על ידי הצבתו במגנט מפריד.
  2. הרטיבו מראש את העמוד עם 500 מיקרוליטר של חיץ כביסה (2 מ"מ חומצה אתילאנדיאמיןטטראצטית (EDTA), 0.5% אלבומין בסרום בקר (BSA) ב-PBS). אפשרו למאגר הכביסה לזרום דרך העמוד.
  3. הוסף את מתחמי MNP-EV לעמודה ואפשר לכל הנוזל לזרום דרכם. הוסף 500 μl של חיץ כביסה לעמודה, ואפשר לכל הנפח לעבור.
  4. יש לחזור על הכביסה עם חיץ הכביסה פעמיים נוספות.
  5. הסר את העמוד מהמגנט והנח בצינור 12 מ"מ x 75 מ"מ לאיסוף מתחמי MNP-EV שנשמרו. תנו לעמוד בצינור מחוץ למגנט למשך 3 דקות. הוסף 200 μl של PBS ותן לחרוזים לזרום למטה על ידי כוח הכבידה, להוסיף עוד 200 μl של PBS, ולתקן עם 200 μl 4% paraformaldehyde לאחר elution.
    הערה: Paraformaldehyde הוא חומר החשוד כמסרטן ויש לטפל בו במכסה מנוע מאוורר וללבוש כפפות.
  6. כדי לכמת כלי רכב חשמליים בודדים, השתמש בהגדרות נפחיות ב- High Throughput Sampler (HTS) או ממש לפני הרכישה, הוסף חרוזי ספירת ציטומטריה של זרימה מעורבת היטב.

5. ניתוח של כלי רכב חשמליים שנלכדו על ידי MNPs באמצעות ציטומטר זרימה

  1. חיממו את ציטומטר הזרימה למשך 30 דקות.
  2. הפעל חרוזי בקרת איכות.
  3. הגדר סף פלואורסצנטיות של MNPs או של כלי רכב חשמליים מסומנים. השתמש PBS מסונן 0.22 מיקרומטר עבור סף כדי להפחית את "רעש" הרקע. הגדר את הסף על-ידי התאמת מתח PMT לרמה שבה PBS מסונן אינו נותן אירועים, או מעט מאוד.
  4. הפעל דוגמאות במצב נמוך. (השתמש במסנן מוטבע נוסף של 0.04 מיקרומטר עבור נוזל נדן הממוקם בסדרות מאחורי מסנן המעטפת הסטנדרטי של 0.2 מיקרומטר כדי למנוע עוד יותר אירועים שגויים).

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

גילויים

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
לא הוכרז על ניגוד עניינים.

חומרים

רשימת החומרים שנעשה בהם שימוש במאמר זה
שםחברהמספר קטלוגהערות
חומרים
ערכות צימוד ננו-חלקיקים של תחמוצת ברזל מגנטית קרבוקסילאוקיינוס ננוטקICK-15-005
יחידת סינון צנטריפוגלית Amicon Ultra-4 עם קרום Ultracel-100מיליפורUFC810024
5mL מבחנה PP תחתונה עגולה, ללא מכסהבז352002
מים מטופלים DEPCאיכות ביולוגית 351-068-131
מפריד מגנטי SuperMAG-01 אוקיינוס ננוטקסופרמג-01
Zenon R-Phycoerythrin עכבר IgG1 ערכת תיוגתרמו פישר סיינטיפיקZ25055
Nanosep התקנים צנטריפוגליים עם אומגה ממברנה 100kפאל קורפOD100C34
EDTA 0.5Mקורנינג סלגרו46-034-CI
תמיסת אלבומין בסרום בקרסיגמא-אולדריץ'A9576-50ML
PBSגיבקו10010-23
Paraformaldehyde, EM Grade, מטוהרEMS15710
123count eBeads eBioscience01-1234-42
חרוזי CytoCountדקוS2366
AccuCheck לספור חרוזיםInvitrogenPCB100
ערכת הגדרת ציטומטר וחרוזי מעקב (CST)BD Bioscience642412
ציוד
עמודת μMACS Miltenyi ביוטק130-042-701
מגנט מפריד OctoMACSMiltenyi ביוטק130-042-108
ננודרופתרמופישרללא
ננוסייט NS300מלוורןללא
ציטומטר זרימה BD LSRIIBD Bioscienceללא
תוכנה
תוכנת Flowjoפלוג'ו
תוכנת BD FACSDivaב.ד.

הדפסות חוזרות והרשאות

בקש הרשאה לשימוש חוזר בטקסט או באיורים של מאמר JoVE זה

בקש הרשאה

תגיות

Flow Virometry

מאמרים קשורים