הרשמה ל-JoVE נדרשת לצפייה בתוכן זה. התחברו או התחילו בגרסת ניסיון בחינם.

מאמר שיטה

יצירת מודל עור פצוע של שחלה Ex Vivo נגוע בפתוגן חיידקי

785 צפיות

⸱

8 ביולי 2025

במאמר זה

תקציר

מקור: Regan, H. C., et al. מודל פצע עור חדשני בתפוקה גבוהה Ex Vivo Ovine לבדיקת אנטיביוטיקה מתפתחת. J. Vis. Exp. (2022).

הסרטון מדגים את הדור של דוגמנית עור שחלות ex vivo נגועה בסטפילוקוקוס זהוב. זה כרוך בטיפול בקטע ביופסיית עור המצח של הטלה עם אנטיביוטיקה, הקמת מיטת פצע, הצבתו על קרום חדיר בצלחת מרובת בארות עם מדיום ללא אנטיביוטיקה, וקביעת זיהום חיידקי בפצע העור.

פרוטוקול

כל הנהלים הנוגעים למודלים של בעלי חיים נבדקו על ידי הוועדה המוסדית המקומית לטיפול בבעלי חיים ועל ידי ועדת הבדיקה הווטרינרית JoVE.

1. עיקור

  1. יש לחטא את המלקחיים לפני איסוף הראשים על ידי לקיחת מלקחיים נקיים וביצוע עיקור בחום יבש בתנור בטמפרטורה של 200°C למשך שעה אחת. יש לחטא את כל כלי הזכוכית בטמפרטורה של 121°C למשך 15 דקות לפני השימוש.
  2. בצע את כל העבודה המתוארת בתוך ארון מיקרוביולוגיה סוג 2. הכינו את כל הריאגנטים בהתאם להוראות היצרן.

2. אוסף דוגמאות

  1. בבית המטבחיים, כבשי סוואלדייל נשחטו על ידי הימום באמצעות חשמל או אקדח בריח שבוי והוחרמו. לאסוף ראשי טלה לא יותר מ 4 שעות לאחר השחיטה.

3. הכנת הראשים

  1. יש לחטא את אזור המצח של הטלה על ידי שפיכת כ-100 מ"ל של תמיסת כלור דו-חמצני בגודל 200 ppm על אזור הדגימה. לגלח את החלק המצח של הראש באמצעות קוצץ חשמלי ולשטוף את האזור עם 200 מ"ל של 200 ppm כלור דו חמצני פתרון.
  2. נגבו את האזור באתנול ובגליל כחול וכסו את אזור הדגימה בקרם להסרת שיער למשך 35 דקות. גרדו בעדינות את הקרם להסרת שיער באמצעות כלי גירוד והעריכו את אזור הדגימה. אם נשארת כמות משמעותית של שיער, חזור על תהליך הסרת השיער.
  3. השתמש 200 מ"ל נוספים של תמיסת כלור דו חמצני כדי לשטוף את האזור, ולאחר מכן לשטוף עם אתנול לנגב עם גליל כחול.
  4. בעזרת ניקוב ביופסיה סטרילי של 8 מ"מ, חותכים דגימות עור של 8 מ"מ מהאזור המוכן. הסר את הדגימות באמצעות מלקחיים סטריליים ואזמל 15 להבים, וודא שכל השומן העורי מוסר.
  5. מניחים את הדגימות בצנצנת סטרילית של 0.5 ליטר מלאה במי מלח סטריליים חוצצים פוספט (PBS), ולאחר מכן מעבירים אותן לצינורות סטריליים של 50 מ"ל עם 50 מ"ל של תמיסת כלור דו-חמצני של 200 ppm, הופכים פעמיים, ומשאירים לעיקור למשך 30 דקות.
  6. הסר את הדגימות מתמיסת כלור דו חמצני ושטוף אותם על ידי הצבתם בצינור 50 מ"ל מלא 40 מ"ל של PBS סטרילי. לאחר השטיפה, הניחו כל דגימת עור בנפרד בבאר נפרדת של צלחת בת 24 בארות.
  7. הוסף 350 μL של תווך מחומם מראש תוך שמירה על הדגימה בממשק אוויר-נוזל. הרכב המדיה הוא כדלקמן: מדיה MK (בינוני 199 עם מלחי הנקס, L-גלוטמט, ו 1.75 מ"ג / מ"ל סודיום ביקרבונט) ו F12 של Ham ביחס של 1: 1, עם תוספת נסיוב בקר עוברי (FBS, 10% v/v), גורם גדילה אפידרמיס (EGF, 10 ng / mL), אינסולין (5 מיקרוגרם / מ"ל), פניצילין-סטרפטומיצין (100 U / mL), ואמפוטריצין B (2.5 מיקרוגרם/מ"ל).
  8. אטמו את הצלחות בנות 24 הבארות עם אטם צלחת חדיר לגז ודגרו בטמפרטורה של 37°C באינקובטור רקמה לח של 5% CO2 למשך עד 24 שעות.

4. שמירה על דגימות עור

  1. לאחר הדגירה, הסר את מדיום התרבית ושטוף את הדגימות ב 500 μL של מלוחים סטריליים חוצצים פוספט (PBS). הוסף מדיה נטולת אנטיביוטיקה לכל דגימה ודגור בטמפרטורה של 37°C באינקובטור רקמה לח של 5% CO2 למשך 24 שעות כדי להסיר שאריות אנטיביוטיקה בדגימה.
  2. אם עכירות או זיהום פטרייתי מתפתחים בתקשורת ללא אנטיביוטיקה לאחר 24 שעות, יש להשליך את הדגימה.

5. הכנת החיסון

  1. הכינו צינור 50 מ"ל עם 10 מ"ל של מרק סויה טריפטי סטרילי. קח צלחת אגר טרי של S. aureus ולהשתמש מטוש להעביר כמה מושבות לתוך המרק. דגירה במשך 18 שעות ב-37°C ב-150 סל"ד.
  2. צנטריפוגה ב 4,000 x גרם למשך 3 דקות. הסר את supernatant ו resuspend את גלולת התא ב 10 מ"ל של PBS סטרילי. יש לחזור על הפעולה פעמיים כדי להבטיח שטיפה נאותה של התאים.
  3. כוונן את החיסון ל- 0.6 OD600 ב- PBS סטרילי. אשר את עומס החיסון על ידי ביצוע ספירת צלחות ידנית.

6. זיהום של דגימות עור

  1. הכינו צלחת טרייה בת 24 בארות עם 400 מיקרוליטר של מדיה נטולת אנטיביוטיקה שחוממה מראש והוסיפו את 24 הבארות באמצעות מלקחיים סטריליים.
  2. הסר את המדיה מדגימות העור, שטוף עם 500 μL של PBS סטרילי, והסר את השטיפה. השתמשו במלקחיים סטריליים כדי להחזיק בעדינות את הדגימה בתחתית הבאר.
  3. השתמש בביופסיית ניקוב 4 מ"מ כדי ליצור דש פצע מרכזי, חודר לעומק גס של 1-2 מ"מ. לאחר מכן, השתמש באזמל בעל 15 להבים ומלקחיים סטריליים של רקמת אליס כדי להסיר את השכבה העליונה של דש הפצע. שונות בממדי הפצע עשויה להשפיע על תוצאות הזיהום ועל יחידות יצירת מושבת הקצה (CFU).
  4. לאחר שכל הדגימות נפגעו, העבירו אותן ל-24 הקידוחים באמצעות מלקחיים סטריליים. פיפטה 15 μL של החיסון החיידקי לתוך מיטת הפצע. לאחר מכן, לדגור במשך 24 שעות ב 37 ° C באינקובטור רקמות לח 5% CO2.
  5. אם יש צורך בתקופות דגירה ארוכות יותר, הסר את המדיה והחלף אותה במדיה טרייה כל 24 שעות ודגרה באותם תנאים.

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

גילויים

לא הוכרז על ניגוד עניינים.

חומרים

רשימת החומרים שנעשה בהם שימוש במאמר זה
שםחברהמספר קטלוגהערות
24 צלחת נלווית היטבSLS353504
ניקוב ביופסיה 4 מ"מוויליאמס מדיקלD7484
50 מ"ל צינורות צנטריפוגהפישר סיינטיפיק10788561
ניקוב ביופסיה 8 מ"מוויליאמס מדיקלD7488
תמיסת אמפוטריצין B, סטריליתסיגמאA2942
גוזז שיער אלחוטי קולור פרו סטיילוואהל9639-2117Xגוזז שיער
אינקובטור תנור כפולSLSOVe1020חיטוי תנור
גורם גדילה אפידרמיסSLSE5036-200UG
אתנולהאניוול458600-2.5 ליטר
F12 חזירסיגמאN4888
סרום בקר עוברילאבטק הבינלאומיCA-115/500
מלקחייםפישר סיינטיפיק15307805
קרם להסרת שיערVeetלא ישים
Heracell VIOS 160iתרמו סיינטיפיק15373212אינקובטור תרביות רקמה
Heraeus Megafuge 16RVWR521-2242צנטריפוגה
הכנס קרום בודד 24 באר 0.4umVWR הבינלאומי353095
אינסולין, רקומביננטי אנושיSLS91077C-1G
בינוני 199 (ח"כ מדיה)סיגמאM0393
Microplate, תרבית תאים Costar 96 בארפישר סיינטיפיק10687551
מולטיטרוןאינפורסלא ישיםאינקובטור חיידקי
טבליות PBSסיגמאP4417-100TAB
פניצילין-סטרפטומיציןSLSP0781
אטמי לוחותפישר סיינטיפיקESI-B-100
בטוח 2020פישר סיינטיפיק1284804ארון בטיחות למיקרוביולוגיה סוג II
להב אזמל מספר 15פישר סיינטיפיקO305
אזמל סוואן מורטוןפישר סיינטיפיק11849002
סודיום ביקרבונטסיגמאS5761-1KG
מלקחיים רקמת אליס עם שינייםRocialleRSPU500-322
מרק סויה טריפטיMerck מדעי החיים בריטניה מוגבלת41298-500G-F
טבליות Vimobaקוויפ לאבסVMTAB75BX

גלה מאמרים נוספים

עור כבשים Ex Vivoמודל פצעStaphylococcus aureusזיהום חיידקיממבנה חדירהפלטת רב-בארותמצע ללא אנטיביוטיקהביופסיית עורמיטת פצעאינוקולום חיידקי