1. אימונוסטיין של פרוסות אורגנואידים
- הניחו את שקופיות המיקרוסקופ המכילות קטעי אורגנואיד בצנצנת קופלינג עם 50 מ"ל של PBS 1x שחומם מראש, ומחזיקים עד 10 שקופיות גב אל גב.
הערה: כל חלקי האורגנואידים צריכים להיות שקועים בנוזל.
- יש לדגור במשך 45 דקות בטמפרטורה של 37°C כדי לבטל את הג'לטין של המגלשות.
- שטפו פעם אחת עם 50 מ"ל של 1× PBS במשך 5 דקות ב-RT: העבירו את המגלשות לצנצנת קופלינג המכילה 1× PBS טרי.
- מעבירים את המגלשות לצנצנת קופלינג המכילה 50 מ"ל גליצין טרי (טבלה 1) ודגרים במשך 10 דקות ב-RT.
- מעבירים את המגלשות לצנצנת קופלינג המכילה 50 מ"ל של 0.1% טריטון (טבלה 1) ומחלחלים למשך 10 דקות ב-RT.
- יש לשטוף עם 1× PBS במשך 5 דקות 2x.
- הכינו את צלחת החיסון עם נייר 3 מ"מ ספוג 1× PBS. יבשו את השקופיות עם טישו מסביב לפרוסות והניחו אותן על נייר 3 מ"מ. בעזרת פיפטה של פסטר, מכסים את כל פני השטח של המגלשות בתמיסת חסימה (טבלה 1), 0.5 מ"ל לכל שקופית. דגירה במשך 30 דקות ב- RT.
- מוציאים את תמיסת החסימה העודפת ומייבשים את המגלשות עם טישו מסביב לפרוסות. מניחים 50 μL של הנוגדן הראשוני (טבלה 2) מדולל בתמיסת חסימה מעל החלקים ומכסים עם הכיסויים. מניחים את הפרוסות בכלי immunostaining מוכן מראש. לדגור לילה ב 4 °C (75 °F).
- מעבירים את המגלשות לצנצנת קופלינג עם 50 מ"ל TBST (טבלה 1), נותנים לכיסויים ליפול ושוטפים עם TBST במשך 5 דקות 3x.
- מניחים 50 μL של הנוגדן המשני מדולל בתמיסת חסימה מעל החלקים ומכסים עם הכיסויים. מניחים את הפרוסות בצלחת immunostaining מוכן מראש. יש לדגור במשך 30 דקות ב-RT, מוגן מאור.
- מעבירים שוב את המגלשות לצנצנת קופלינג ושוטפים עם 50 מ"ל TBST במשך 5 דקות 3x.
- יבשו את המגלשות עם טישו מסביב לפרוסות והניחו את הפרוסות בצלחת חיסונית שהוכנה מראש. עם פיפטה פסטר, להוסיף 0.5 מ"ל של פתרון DAPI על כל פני השטח של שקופיות. לדגור במשך 5 דקות ב RT.
- חזור על שלב 1.9.
- בזהירות לייבש את המגלשות עם טישו. הוסף 50 μL של הרכבה בינונית טיפה אחר טיפה לאורך המגלשה ולאחר מכן הורד בזהירות כיסוי על כל מגלשה, כופף אותה מעט כדי למנוע בועות.
טבלה 1: פתרונות להכנת אורגנואידים להקפאה וצביעה חיסונית. ברשימה מפורטים כל המרכיבים והנפחים המשמשים להכנת התמיסות המשמשות להכנת אורגנואידים להקפאה ו immunostaining.
| ג'לטין/סוכרוז<בר/>
ריכוז סופי: 7.5%/15% w/w | 1. שוקלים 15 גרם סוכרוז ו-7.5 גרם ג'לטין בבקבוק זכוכית סטרילי של שוט ומערבבים היטב
2. חממו מראש את PBS 1x בטמפרטורה של 65°C
3. מוסיפים PBS שחומם מראש 1x למשקל סופי של 100 גרם ומערבבים היטב
4. מניחים את בקבוק הזכוכית שוט בצלחת חימום בטמפרטורה של 65°C ומנערים עד שהג'לטין נמס
5. לדגור על 37 מעלות צלזיוס עד לתמיסה מתייצבת |
| גליצין<בר/>
ריכוז סופי: 0.1 מטר | הוסף 0.37 גרם גליצין ל 50 מ"ל של PBS טרי מוכן 1x. |
פתרון טריטון
ריכוז סופי: 0.1% w/v | 1. הכינו 10% מלאי Triton X-100: 5 גרם של Triton X-100 ב-50 מ"ל של PBS 1x
2. הוסף 0.5 מ"ל של מלאי Triton X-100 ל- 50 מ"ל של PBS 1x. |
TBST
20 mM Tris-HCl pH 8.0, 150 mM NaCl, 0.05% עם Tween-20 | 20 מ"ל Tris 1 M
30 מ"ל NaCl 5 M
5 מ"ל Tween-20 (10 % מלאי: 5 גרם של Tween-20 ב 50 מ"ל מים)
ממלאים עד 1 ליטר במים. |
| פתרון חסימה | הוסף 5 מ"ל של סרום בקר עוברי (FBS, ריכוז סופי: 10% v/v) ל 50 מ"ל של TBST. |
| פתרון DAPI | הוסף 15 מיקרוליטר של תמיסת ציר DAPI (1 מ"ג/מ"ל) ל-10 מ"ל מים מזוקקים |
| מוביול | 1. הוסיפו 2.4 גרם Mowiol ל-6 גרם גליצרול ונערו במשך שעה בצלחת שחוממה מראש ב-50°C
2. מוסיפים 6 מ"ל מים מזוקקים ומנערים במשך שעתיים< חדרים/>
3. מוסיפים 12 מ"ל של Tris 200 mM (pH 8.5) ומנערים במשך 10 דקות
4. צנטריפוגה בעוצמה של 5,000 × גרם למשך 15 דקות5. Aliquot ולאחסן ב -20 °C. |
טבלה 2: נוגדנים ראשוניים. הנוגדנים הראשוניים, השיבוט והדילולים האופטימליים המשמשים להצבת מערכת החיסון מפורטים.
| נוגדן | מינים מארחים | דילול |
| ברהל1 | ארנב | 1/500 |
| קלבינדין | ארנב | 1/500 |
| מפה2 | עכבר | 1/1000 |
| נ-קדהרין | עכבר | 1/1000 |
| נסטין | עכבר | 1/400 |
| אוליג2 | ארנב | 1/500 |
| PAX6 | ארנב | 1/400 |
| SOX2 | עכבר | 1/200 |
| TBR1 | ארנב | 1/200 |
| TBR2 | ארנב | 1/200 |
| TUJ1 | עכבר | 1/1000 |