הרשמה ל-JoVE נדרשת לצפייה בתוכן זה. התחברו או התחילו בגרסת ניסיון בחינם.

מאמר שיטה

פלואורסצנטיות immunostaining של פרוסות אורגנואיד cerebellar

849 צפיות

⸱

8 ביולי 2025

במאמר זה

תקציר

מקור: Silva, T. P., et al., Scalable Generation of בוגרים Cerebellar Organoids מתאי גזע פלוריפוטנטיים אנושיים ואפיון על ידי Immunostaining. J. Vis. Exp. (2020)

סרטון זה מדגים את הצביעה האימונופלואורסצנטית של פרוסות אורגנואידים במוח הקטן כדי לזהות אנטיגני מטרה ספציפיים המתבטאים בנוירונים צרבלריים שונים, המעידים על הבשלת אורגנואידים.

פרוטוקול

1. אימונוסטיין של פרוסות אורגנואידים

  1. הניחו את שקופיות המיקרוסקופ המכילות קטעי אורגנואיד בצנצנת קופלינג עם 50 מ"ל של PBS 1x שחומם מראש, ומחזיקים עד 10 שקופיות גב אל גב.
    הערה: כל חלקי האורגנואידים צריכים להיות שקועים בנוזל.
  2. יש לדגור במשך 45 דקות בטמפרטורה של 37°C כדי לבטל את הג'לטין של המגלשות.
  3. שטפו פעם אחת עם 50 מ"ל של 1× PBS במשך 5 דקות ב-RT: העבירו את המגלשות לצנצנת קופלינג המכילה 1× PBS טרי.
  4. מעבירים את המגלשות לצנצנת קופלינג המכילה 50 מ"ל גליצין טרי (טבלה 1) ודגרים במשך 10 דקות ב-RT.
  5. מעבירים את המגלשות לצנצנת קופלינג המכילה 50 מ"ל של 0.1% טריטון (טבלה 1) ומחלחלים למשך 10 דקות ב-RT.
  6. יש לשטוף עם 1× PBS במשך 5 דקות 2x.
  7. הכינו את צלחת החיסון עם נייר 3 מ"מ ספוג 1× PBS. יבשו את השקופיות עם טישו מסביב לפרוסות והניחו אותן על נייר 3 מ"מ. בעזרת פיפטה של פסטר, מכסים את כל פני השטח של המגלשות בתמיסת חסימה (טבלה 1), 0.5 מ"ל לכל שקופית. דגירה במשך 30 דקות ב- RT.
  8. מוציאים את תמיסת החסימה העודפת ומייבשים את המגלשות עם טישו מסביב לפרוסות. מניחים 50 μL של הנוגדן הראשוני (טבלה 2) מדולל בתמיסת חסימה מעל החלקים ומכסים עם הכיסויים. מניחים את הפרוסות בכלי immunostaining מוכן מראש. לדגור לילה ב 4 °C (75 °F).
  9. מעבירים את המגלשות לצנצנת קופלינג עם 50 מ"ל TBST (טבלה 1), נותנים לכיסויים ליפול ושוטפים עם TBST במשך 5 דקות 3x.
  10. מניחים 50 μL של הנוגדן המשני מדולל בתמיסת חסימה מעל החלקים ומכסים עם הכיסויים. מניחים את הפרוסות בצלחת immunostaining מוכן מראש. יש לדגור במשך 30 דקות ב-RT, מוגן מאור.
  11. מעבירים שוב את המגלשות לצנצנת קופלינג ושוטפים עם 50 מ"ל TBST במשך 5 דקות 3x.
  12. יבשו את המגלשות עם טישו מסביב לפרוסות והניחו את הפרוסות בצלחת חיסונית שהוכנה מראש. עם פיפטה פסטר, להוסיף 0.5 מ"ל של פתרון DAPI על כל פני השטח של שקופיות. לדגור במשך 5 דקות ב RT.
  13. חזור על שלב 1.9.
  14. בזהירות לייבש את המגלשות עם טישו. הוסף 50 μL של הרכבה בינונית טיפה אחר טיפה לאורך המגלשה ולאחר מכן הורד בזהירות כיסוי על כל מגלשה, כופף אותה מעט כדי למנוע בועות.

טבלה 1: פתרונות להכנת אורגנואידים להקפאה וצביעה חיסונית. ברשימה מפורטים כל המרכיבים והנפחים המשמשים להכנת התמיסות המשמשות להכנת אורגנואידים להקפאה ו immunostaining.

ג'לטין/סוכרוז<בר/> ריכוז סופי: 7.5%/15% w/w1. שוקלים 15 גרם סוכרוז ו-7.5 גרם ג'לטין בבקבוק זכוכית סטרילי של שוט ומערבבים היטב
2. חממו מראש את PBS 1x בטמפרטורה של 65°C
3. מוסיפים PBS שחומם מראש 1x למשקל סופי של 100 גרם ומערבבים היטב
4. מניחים את בקבוק הזכוכית שוט בצלחת חימום בטמפרטורה של 65°C ומנערים עד שהג'לטין נמס
5. לדגור על 37 מעלות צלזיוס עד לתמיסה מתייצבת
גליצין<בר/> ריכוז סופי: 0.1 מטרהוסף 0.37 גרם גליצין ל 50 מ"ל של PBS טרי מוכן 1x.
פתרון טריטון
ריכוז סופי: 0.1% w/v
1. הכינו 10% מלאי Triton X-100: 5 גרם של Triton X-100 ב-50 מ"ל של PBS 1x
2. הוסף 0.5 מ"ל של מלאי Triton X-100 ל- 50 מ"ל של PBS 1x.
TBST
20 mM Tris-HCl pH 8.0, 150 mM NaCl, 0.05% עם Tween-20
20 מ"ל Tris 1 M
30 מ"ל NaCl 5 M
5 מ"ל Tween-20 (10 % מלאי: 5 גרם של Tween-20 ב 50 מ"ל מים)
ממלאים עד 1 ליטר במים.
פתרון חסימההוסף 5 מ"ל של סרום בקר עוברי (FBS, ריכוז סופי: 10% v/v) ל 50 מ"ל של TBST.
פתרון DAPIהוסף 15 מיקרוליטר של תמיסת ציר DAPI (1 מ"ג/מ"ל) ל-10 מ"ל מים מזוקקים
מוביול1. הוסיפו 2.4 גרם Mowiol ל-6 גרם גליצרול ונערו במשך שעה בצלחת שחוממה מראש ב-50°C
2. מוסיפים 6 מ"ל מים מזוקקים ומנערים במשך שעתיים< חדרים/> 3. מוסיפים 12 מ"ל של Tris 200 mM (pH 8.5) ומנערים במשך 10 דקות
4. צנטריפוגה בעוצמה של 5,000 × גרם למשך 15 דקות5. Aliquot ולאחסן ב -20 °C.

טבלה 2: נוגדנים ראשוניים. הנוגדנים הראשוניים, השיבוט והדילולים האופטימליים המשמשים להצבת מערכת החיסון מפורטים.

נוגדןמינים מארחיםדילול
ברהל1ארנב1/500
קלבינדיןארנב1/500
מפה2עכבר1/1000
נ-קדהריןעכבר1/1000
נסטיןעכבר1/400
אוליג2ארנב1/500
PAX6ארנב1/400
SOX2עכבר1/200
TBR1ארנב1/200
TBR2ארנב1/200
TUJ1עכבר1/1000

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

גילויים

לא הוכרז על ניגוד עניינים.

חומרים

רשימת החומרים שנעשה בהם שימוש במאמר זה
שםחברהמספר קטלוגהערות
נייר 3 מ"מWHA3030861מרק
נוגדן נגד BARHL1HPA004809נוגדנים אטלס
נוגדן אנטי-קלבינדין D-28KCB28מיליפור
נוגדן Anti-MAP2M4403סיגמא
נוגדן אנטי-N-קדהרין610921התמרה BD
נוגדן אנטי-נסטיןMAB1259-SPמו"פ
נוגדן אנטי-OLIG2צרפתמיליפור
נוגדן Anti-PAX6PRB-278Pקובנס
נוגדן אנטי-SOX2MAB2018מו"פ
נוגדן נגד TBR1AB2261מיליפור
נוגדן נגד TBR2ab183991אבקאם
נוגדן Anti-TUJ1801213ביואגדה
כיסויים 24x60 מ"מ631-1575VWR
דאפי10236276001סיגמא
סרום בקר עובריA3840001תרמופישר
ג'לטין מעור בקרG9391סיגמא
צנצנת זכוכית קופלינגE94תרמופישר
גליציןMB014001NZYtech
מונותיוגיצרולM6154סיגמא
מוביול475904מיליפוראמצעי הרכבה
טריטון X-1009002-93-1סיגמא
טווין-20עמ' 1379סיגמא
שקופיות מיקרוסקופ SuperFrost12372098תרמופישרשקופיות מיקרוסקופ הדבקה

גלה מאמרים נוספים

נוגדנים ראשונייםנוגדנים שניונייםחדירה באמצעות Tritonתמיסת חסימהצביעת גרעין ב-DAPIשטיפות TBSTמיקרוסקופיה פלואורסצנטיתהבשלת אורגנואידים