מאמר שיטה

צביעת אימונופלואורסצנטיות להדמיית תאי גזע עצביים מתרבים באזורי מוח עכבר

8 ביולי 2025

במאמר זה

תקציר

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

מקור: Quintanilla, L. J., et al. Assay Circuit Specific Regulation of Adult Hippocampal Neural Precursor cells. J. Vis. Exp. (2019)

סרטון זה מדגים את ההליך להכתמת תאי גזע עצביים חדשים במקטעי רקמת מוח באמצעות שילוב EdU, ואחריו immunofluorescence כדי לדמיין חלבונים ספציפיים, שיפור ההבנה של דינמיקה התא והתפשטות.

פרוטוקול

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

כל ההליכים הנוגעים לדגימות בעלי חיים נבדקו ואושרו על ידי הוועדה המתאימה לבדיקה אתית של בעלי חיים.

1. אימונוהיסטוכימיה

  1. צביעה אנלוגית של תימידין
    1. מניחים מקטעי רקמה ב-PBS (מלח חוצץ פוספט) ומרכיבים 5-8 מקטעים על שקופית טעונה חיובית, תוך שמירה על סדר טורי מהקדמי לאחורי ובאותו כיוון. הניחו לחלקי הרקמה להתייבש כדי להיצמד לחלוטין לשקופיות, ולאחר מכן ציירו גבול באמצעות עט הידרופובי או עט PAP.
    2. חדיר מקטעים עם חיץ חדירה (0.5% TBS (תריס מלח חוצץ) -טריטון) למשך 20-30 דקות. לאחר מכן שטפו חלקים 2x באמצעות TBS-triton במשך 5 דקות כל אחד.
      הערה: חדירות מסייעת לחדירת נוגדנים תוך תאיים. ניתן להתאים את זמן החדירות בהתאם לעובי הרקמה וליעילות הנוגדנים. לחלופין, ניתן להגדיל את ריכוז חומרי הניקוי כדי להגביר את עוצמת החדירה. עם זאת, יש להקפיד לא לחלחל במשך זמן רב מדי, שכן שבריריות הרקמה עולה עם זמן חדירות ממושך.
    3. הכינו תמיסת תגובה של Edu (5-ethynyl-2'-deoxyuridine) לפי טבלה 1. הריכוז הסופי של Alexa488-azide הוא 15 מיקרומטר ב 1 מ"ל של תמיסת תגובת אדו.
    4. יש לדגור על מקטעים בתמיסת תגובת Edu למשך 30 דקות עד שעה ולאחר מכן לשטוף 3x ב-TBS-טריטון למשך 5 דקות כל אחד. לאחר שלב זה, כסו את המגלשות ברדיד אלומיניום כדי להגן עליהן מפני אור. בשלב זה, בדוק אם תגובת Edu פועלת באמצעות מיקרוסקופ פלואורסצנטי. תאים המסומנים ב-Edu יפלואורסצנטי תחת מיקרוסקופ אפיפלואורסצנטי.
  2. פרוטוקול קטע רקמות רכובות
    1. חסום קטעי רקמות שהורכבו על שקופית משלב 1.1.4 באמצעות חיץ חוסם שגדל באותן חיות כמו הנוגדן המשני, למשל נסיוב חמורים, למשך 30 דקות עד שעה ולאחר מכן שטף 2x ב- TBS-טריטון במשך 5 דקות כל אחד.
    2. הכינו תמיסת נוגדנים ראשונית (כלומר, אנטי-נסטין עוף) במהלך שלב החסימה על ידי ערבוב נוגדנים ראשוניים בתמיסת חיץ חוסמת בשעה 1:200. 250 μL לכל שקופית מספיקים כדי להבטיח שהרקמה שקועה לחלוטין בתמיסה.
    3. יש לדגור על חלקי רקמה בתמיסת נוגדנים ראשונית למשך הלילה ב-RT לאחר חסימת שטיפות. שנה שלב זה בהתאם לנוגדן העיקרי בשימוש.
      הערה: אם לנוגדנים יש רקע גבוה או קשירה לא ספציפית, דגירה ב-4°C במקום RT (טמפרטורת החדר) עשויה לשפר את התוצאות. נוגדנים עם חדירה לקויה לרקמות ניתן להשאיר לדגור במשך 2 ימים במידת הצורך.
    4. יש לדגור על מקטעי רקמה 3x ב-TBS-טריטון למשך 5 דקות כדי להסיר עודפי נוגדנים ראשוניים. לאחר מכן, לדגור על קטעי רקמה בנוגדנים משניים מצומדים פלואורופור (למשל, Alexa 647 נגד עוף בשעה 1:200) שהוכנו בתמיסת חיץ חוסמת למשך שעתיים ב- RT.
    5. יש לדגור על מקטעי רקמה 3x ב-TBS-טריטון למשך 5 דקות כדי להסיר עודפי נוגדנים משניים ולמרוח תמיסת DAPI (4′,6-diamidino-2-phenylindole) ב-1:100 ב-PBS למשך 15 דקות ב-RT.
    6. יש לדגור על חלקי רקמה 3x ב-PBS למשך 5 דקות כדי להסיר עודפי DAPI ולהסיר את עיגול עט הפאפ מרחבי הרקמה באמצעות צמר גפן או מגבון משימה עדין. הניחו למקטעים להתייבש ולאחר מכן מרחו את מדיית ההרכבה ואת הכיסוי. הניחו למדיית ההרכבה להתייבש לפני החלקות ההדמיה.

טבלה 1: פתרונות המשמשים לאימונוהיסטוכימיה

תמיסת נוגדי הקפאהאתילן-גליקול 150 מ"ל + סוכרוז 150 גרם + מילוי עד 500 מ"ל 0.1 מ"ל PB לתמיסה של 500 מ"ל
מאגר ציטראט9 מ"ל של ציר חומצת לימון + 41 מ"ל של מאגר טרי-נתרן ציטראט + 450 מ"ל של ddH2O
ציר חומצת לימון[0.1 מטר] חומצת לימון 21 גרם/1 ליטר ddH2O
ציר טרי-נתרן ציטראט[0.1 מטר] טרי-נתרן ציטראט 29.4 גרם/1 ליטר ddH2O
טריס חוצץ מלוחים -טריטון (TBS -טריטון)0.05% 100-x טריטון ב-TBS
מאגר חדירות0.5% 100-x טריטון ב-TBS
מאגר חוסם0.33 מ"ל סרום חמורים ב-10 מ"ל TBS-Triton
פתרון תגובת Eduהכינו תמיסת CuSO4·5H2O על ידי הוספת 1 מ"ג של CuSO4·5H2O בתמיסת 4 מ"ל של [0.1 מ'] Tris pH 8.5. לאחר מכן יש להוסיף 1:40 של תמיסת Alexa488-azide בגודל 600 מיקרומטר ו-10 מ"ג/מ"ל של L-Na+ ascorbate לתמיסת CuSO4·5H2O לפני החלתה על רקמות.

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

גילויים

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
לא הוכרז על ניגוד עניינים.

חומרים

רשימת החומרים שנעשה בהם שימוש במאמר זה
שםחברהמספר קטלוגהערות
5-אתיניל-2'-דאוקסיורידין (Edu)קרבוסינתוסNE08701
Alexa-488 אזידתרמו פישר סיינטיפיקA10266
נסטין נגד עוףAvesנס; RRID: AB_2314882
DCX נגד עיזיםסנטה קרוזחתול# SC_8066; RRID: AB_2088494
Tbr2 נגד עכברתרמו פישר סיינטיפיק14-4875-82; RRID: AB_11042577
תוכנה קונפוקלית (זן שחור)מיקרוסקופ ZeissZen 2.3 SP1 FP1 (שחור)
נחושת (II) סולפט פנטהידראטתרמו פישר סיינטיפיקAC197722500
קוורסליפדנוויל סיינטיפיקM1100-02
פלוס מגלשה טעונהדנוויל סיינטיפיקM1021
תמיסת אגירה של פוספט (PBS)תרמו פישר סיינטיפיק10010031
Super PAP Pen 4 מ"מ קצהמדעי הפולי24230
פתרון חוצץ Tris (TBS)סיגמא-אולדריץ'T5912
טריטון X-100סיגמא-אולדריץ'93443

הדפסות חוזרות והרשאות

בקש הרשאה לשימוש חוזר בטקסט או באיורים של מאמר JoVE זה

בקש הרשאה

תגיות

Immunofluorescence StainingNeural Stem CellsEdU IncorporationFluorescence MicroscopyConfocal MicroscopyPrimary AntibodiesSecondary AntibodiesDAPI StainingHydrophobic MarkingMounting Media

מאמרים קשורים