Method Article

גרימת אוטם פונס חריף במודל חולדה באמצעות גירוי חשמלי

July 8th, 2025

In This Article

Abstract

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

מקור: Luo, M., et al. הקמת אוטם פונטיני חריף בחולדות על ידי גירוי חשמלי. J. Vis. Exp. (2020)

סרטון זה מדגים הליך לגרימת נזק לרקמות או אוטם בפונס של חולדה מורדמת באמצעות גירוי חשמלי.

Protocol

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

כל הנהלים הנוגעים למודלים של בעלי חיים נבדקו על ידי הוועדה המוסדית המקומית לטיפול בבעלי חיים ועל ידי ועדת הבדיקה הווטרינרית JoVE.

1. הקמת אוטם בפונס

  1. חממו מראש את כרית החימום מיד לפני ההרדמה.
  2. חבר את מקדחת הגולגולת למחזיק על המסגרת הסטריאוטקסית.
  3. הזריקו תוך צפקית לחולדות 50 מ"ג/ק"ג קטמין ו-5 מ"ג/ק"ג קסילזין. בדוק את חוסר התגובה צביטת הבוהן.
  4. הרכיבו את החולדה על המסגרת הסטריאוטקסית במצב נוטה. מקמו את מוטות האוזניים מעל תעלת האוזן כדי לאבטח את הראש. ודא כי הגולגולת נשמרת אופקית כדי למנוע כל הטיה של ההזרקה.
  5. יש לשמור על הרדמה על ידי איזופלורן (100% חמצן, 2.5% איזופלורן) באמצעות חיבור חרוט אף סטריאוטקסי לחולדות עם יציאות כניסה ויציאה. השתמש כרית חימום כדי לשמור על הטמפרטורה ב 37 ° C ולפקח על זה לאורך כל ההליך.
  6. יש להשתמש במשחת עיניים למניעת התייבשות הקרנית. השתמש במלקחיים כדי לצבוט את הכפות כדי להבטיח שלא תהיה תגובה קלה לכאב.
  7. לגלח את שיער הגולגולת עם מיקרו מכונת גילוח. יש למרוח באופן מעגלי את הפילינג הכירורגי כלורהקסידין החל מאתר החתך הניתוחי ומסתובב כלפי חוץ.
  8. בצע חתך קו אמצע של 3 ס"מ עם אזמל מקו הקנטוס הצידי הדו-צדדי עד 0.5 ס"מ מאחורי הפונטנלה האחורית, שעט סמן כירורגי צריך לסמן.
  9. השתמש צמר גפן כדי להסיר דם.
  10. פיסת סרט כירורגי צריכה להיות מונחת על כל צד של דש העור כדי לחשוף את הקרקפת (איור 1).
  11. הסר בעדינות את רקמות החיבור מעצם הגולגולת עם צמר גפן טבול ב -0.9% NaCl. אם לא יוסרו, רקמות החיבור ייתפסו במקדחה.
  12. זהה את הברגמה. בחרו את הנקודה המרכזית של הברגמה כנקודת המוצא וסמנו אותה באמצעות עט טוש כירורגי שחור בעל קצה עדין.
  13. מקמו מקדחה בנקודת גישה של 6.0 מ"מ, 2.0 מ"מ ML (טווח בין 0.5 ל-3.0 מ"מ, איור 2A).
  14. ביצוע קרניוטומיה (קוטר 1 מ"מ) באמצעות מקדחה אוטומטית. המשך בזהירות כי נקודה זו קרובה לסינוס הוורידי.
  15. הסר את המקדחה מהמסגרת הסטריאוטקסית.
  16. הניחו גשושית 22G עם נדן מבודד במסגרת הסטריאוטקסית (איור 3A). קצה הגשושית צריך להיות ממוקם 2 מ"מ מעל הקצה הפרוקסימלי של הנדן (איור 3A, B; איור 2B).
  17. ודא שהנדן נכנס למוח 7 מ"מ (7 מ"מ DV, איור 2B; איור 1C).
  18. תקדמו את הגשושית לאורך הנדן (איור 1D) עד שקצה הגשושית נמצא 9 מ"מ מתחת לפני השטח של המוח (איור 2D).
  19. חברו את האלקטרודות לממריץ חשמלי (איור 3C). חברו את האנודה לגשושית כפי שמוצג באיור 1D. חברו את הקתודה לחולדות (בדרך כלל לאוזן של החולדות).
  20. הפעל את הממריץ החשמלי והגדר את הפרמטרים הבאים: רוחב פולס יחיד = 4,050 אלפיות השנייה; מתח = 50 וולט; וזרם = 4 mA (איור 3C). במהלך גירוי חשמלי, החולדה תפגין רעד. במחקר זה, המכשיר לא הופעל עבור חולדות קבוצת ביקורת ששימשו למבחני התנהגות, MRI ו-TTC.
  21. השאירו את הבדיקה במקומה למשך 5 דקות לאחר הגירוי.
  22. הסירו את הגשושית מהמוח (איור 1F).
  23. השתמש מלט עצם כדי לכסות את craniotomy. הניחו לצמנט להתייבש לפני תפירת הפצע.
  24. תפרו את הפצע עם 4-0 חוטי תפר פוליאמיד. לאחר שלושה או ארבעה תפרים, לקשור 2-1-1 קשרים כירורגיים סטנדרטיים.
  25. הזריקו לחולדות פניצילין (0.25 מ"ל, 80 יחב"ל מדולל ב -4 מ"ל מלח) תוך צפקית כדי למנוע זיהום.
  26. הזריקו לחולדות מלוקסיקם תת עורית במינון של 2 מ"ג/ק"ג ולאחר מכן חזרו על כך כל 24 שעות.
  27. עקבו אחר החולדות כל 15 דקות עד שהן ערות לחלוטין והחזירו אותן לכלוב עם כרית חימום. לספק גישה חופשית למזון ומים עד להקרבה.
    הערה: כל ההליכים צריכים לעקוב אחר עקרונות כירורגיים אספטיים. לפני הניתוח יש ללבוש משטח קרצוף, מסכה כירורגית וכפפות סטריליות לאחר קרצוף כירורגי של הידיים. יש לשמור תמיד על חומר תפר סטרילי בתוך השדה הסטרילי.

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Results

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

figure-results-1
איור 1: הקמת אוטם. (A) חור שנעשה בגולגולת. (B) הנדן מועבר לחור. (ג) הזרקת הנדן. (ד) הזרקת הבדיקה. (E) האנודה (חץ אדום) מחוברת. (ו) הבדיקה מוסרת. (G) חור (חץ אדום) שנותר בפני השטח של המוח.

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Disclosures

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
לא הוכרז על ניגוד עניינים.

Materials

List of materials used in this article
NameCompanyCatalog NumberComments
4-0 סוכהשנגחאי ג'ינז'ונגכלי ניתוח
סרט הדבקהשנגחאי ג'ינז'ונגכלי ניתוח
מערכת הרדמה לבעלי חייםRWDיש לעטות מסכה בעת השימוש במערכת
מלט עצםשנגחאי ג'ינז'ונגכלי ניתוח
מהדק נרפאשנגחאי ג'ינז'ונגכלי ניתוח
מספריים כלליים לרקמותשנגחאי ג'ינז'ונגכלי ניתוח
אינדופורסGuoyao של סיןעיקור
איזופלורןRWD217181101
מכשיר להכנת נגעיםשנגחאי יויאןביצוע נגע
מערכת MRIברוקר ביוספיןאישור אוטם in vivo
מחזיק מחטיםשנגחאי ג'ינז'ונגכלי ניתוח
פניציליןGuoyao של סיןמניעת זיהומים
בדיקהאנונימיצריך קצת שינוי
עצות Qשנגחאי ג'ינז'ונגכלי ניתוח
גזירת מספרייםשנגחאי ג'ינז'ונגכלי ניתוח
מנגנון סטריאוטקסיRWD
מחט תפירהשנגחאי ג'ינז'ונגכלי ניתוח
רקמות אוחזות מלקחייםשנגחאי ג'ינז'ונגכלי ניתוח
TTCסיגמא-אולדריץ'BCBW5177לאישור אוטם במבחנה

Reprints and Permissions

Request permission to reuse the text or figures of this JoVE article

Request Permission

Tags

Pons InfarctionElectrical StimulationRat ModelStereotaxic SurgeryCraniotomy ProcedureBrain StimulationTissue Damage InductionNeurological AnalysisBone Cement SealingSurgical Suturing

Related Articles