הרשמה ל-JoVE נדרשת לצפייה בתוכן זה. התחברו או התחילו בגרסת ניסיון בחינם.

מאמר שיטה

ניטור בזמן אמת של הפעלת קולטני ריח בתאים רקומביננטיים

702 צפיות

28 באפריל 2025

במאמר זה

תקציר

מקור: de March, C. A. et. al., ניטור בזמן אמת במבחנה של הפעלת קולטני ריח על ידי ריח בשלב האדים. J. Vis. Exp. (2019)

סרטון זה מדגים את השיטה לניטור הפעלה בזמן אמת של קולטני ריח בתאי יונקים רקומביננטיים באמצעות מדידת לומינסנציה. קשירת ריח מפעילה הפעלת חלבון G וייצור cAMP, ומפעילה חלבוני גלו-סנסור הפולטים זוהר בעת קשירת המצע, ומספקים מדד כמותי לתגובת הקולטן.

פרוטוקול

1. Hana3A Cells Culture

  1. Prepare M10 (Minimum Essential Medium (MEM) בתוספת 10% v/v סרום בקר עוברי (FBS)) ו-M10PSF (M10 בתוספת 100 מיקרוגרם/מ"ל פניצילין-סטרפטומיצין ו-1.25 מיקרוגרם/מ"ל אמפוטריצין B).
  2. תרבית התאים ב-10 מ"ל של M10PSF בצלחת תרבית תאים של 100 מ"מ באינקובטור המוגדר ל-37 מעלות צלזיוס ו-5% פחמן דו חמצני (CO2).
  3. חלקו את התאים כל יומיים ביחס של 20%: כאשר נצפה מפגש של 100% של תאים (כ-1.1 x 107 תאים) תחת מיקרוסקופ ניגודיות פאזה, שאפו את המדיה ושטפו את התאים בעדינות עם 10 מ"ל של מי מלח עם חוצץ פוספט (PBS).
  4. שאפו PBS והוסיפו 3 מ"ל של 0.05% חומצה טטראצטית טריפסין-אתילן דיאמין (EDTA, 0.48 מ"מ). מניחים לפעול כדקה, עד שהתאים מתנתקים מהצלחת.
  5. הוסף 5 מ"ל של M10 כדי לנטרל את הטריפסין ובסופו של דבר לנתק את התאים שעדיין מחוברים לצלחת על ידי פיפטינג למעלה ולמטה.
  6. העבירו את הנפח (8 מ"ל) לצינור של 15 מ"ל וצנטריפוגה ב-200 x g למשך 5 דקות. שאפו את הסופרנטנט והשעו מחדש את התאים ל-5 מ"ל של M10PSF על ידי פיפטינג למעלה ולמטה כדי לשבור כל מסת תא. הימנע מיצירת בועות בצינור.
  7. העבירו 1 מ"ל מתמיסת התאים המרחפים בצלחת תרבית תאים חדשה של 100 מ"מ והוסיפו 9 מ"ל של M10PSF טרי. דגירה בטמפרטורה של 37 מעלות צלזיוס ו-5% CO2.

2. הכנת התאים לטרנספקציה

  1. הערך את המפגש, או את מספר התאים, על ידי התבוננות בהם תחת מיקרוסקופ ניגוד פאזה. יש צורך לפחות 10% מפגש (כ -1.1 x 106 תאים) לצלחת אחת.
  2. שאפו את המדיה ושטפו את התאים בעדינות עם 10 מ"ל PBS. שאפו PBS והוסיפו 3 מ"ל של EDTA. מניחים לפעול כדקה בטמפרטורת החדר, עד שהתאים מתנתקים מהצלחת.
  3. הוסף 5 מ"ל של M10 כדי לנטרל את הטריפסין ובסופו של דבר לנתק את התאים שעדיין מחוברים לצלחת על ידי פיפטינג למעלה ולמטה. העבירו את הנפח (8 מ"ל) לצינור של 15 מ"ל וצנטריפוגה ב -200 x גרם למשך 5 דקות.
  4. שאפו את הסופרנטנט והשעו מחדש את התאים ל-5 מ"ל של M10PSF על ידי פיפטינג למעלה ולמטה כדי לשבור כל מסת תא. הימנע מיצירת בועות בצינור.
  5. בהתאם למספר הלוחות שיש להעביר, העבר כמות מתאימה של תאים במאגר עם הנפח המתאים של M10PSF. יש לצפות צלחת אחת של 96 בארות ב-1/10 של צלחת 100% 100 מ"מ (כ-1.1 x 106 תאים) מדוללת ב-M10PSF כדי להגיע לנפח כולל של 6 מ"ל. עבור צלחת אחת של 96 בארות המתחילה בצלחת 100% מפגש של 100 מ"מ, הוסף 500 מיקרוליטר מ-5 מ"ל של תאים תלויים ל-5.5 מ"ל של M10PSF טרי. מערבבים את התאים ו- M10PSF מבלי ליצור בועות אוויר.
  6. פיפטה 50 מיקרוליטר של התאים התלויים לכל באר של צלחת 96 הבארות באמצעות פיפטה רב-ערוצית. דגירה למשך הלילה ב-37 מעלות צלזיוס ו-5%CO2.

3. Plasmid Transfection

  1. התבונן בלוח 96 הבארות תחת מיקרוסקופ ניגודיות פאזה כדי להבטיח מפגש תאים בין 30% ל-50%.
  2. הכן תערובת טרנספקציה ראשונה המכילה את הפלסמידים המשותפים לכל הצלחת (גרסה קצרה יותר של חלבון מעביר קולטן 1 (RTP1S), קולטן ריח (OR) וחלבון Glosensor; ראה טבלת חומרים) בעקבות הנפחים בטבלה 1. שים לב שיש לחלק את כמות ה-OR המתויג במספר ה-OR אם מספר OR.
    הערה: אנו ממליצים בחום להוסיף בקרה שלילית וקטורית ריקה (כאן Rho-pCI) וכל בקרה חיובית (OR ידוע כמגיבה לריח שנבדק) לתוכנית הניסוי.
  3. הכינו תערובת טרנספקציה שנייה המכילה 500 מיקרוליטר של MEM ו-20 מיקרוליטר של מגיב ליפופקטמין 2000 (תקף לצלחת אחת של 96 בארות, ראה טבלת חומרים). מוסיפים את התערובת השנייה לראשונה, ומערבבים בעדינות על ידי פיפטינג למעלה ולמטה ודוגרים במשך 15 דקות בטמפרטורת החדר. מוסיפים 5 מ"ל M10 ומערבבים בעדינות.
  4. החלף את ה-M10PSF בלוח 96 הבארות המצופה קודם לכן ב-50 מיקרוליטר של מדיית הטרנספקציה הסופית. דגירה בחממה המוגדרת ל-37 מעלות צלזיוס ו-5% CO2 ושואב את תא הלומינומטר למשך הלילה.

4. Substrate Incubation

  1. התבונן בלוח 96 הבארות תחת מיקרוסקופ ניגודיות פאזה כדי להבטיח מפגש תאים בין 60% ל-100%. הכן תמיסת סימולציה של תמיסת המלח המאוזנת של האנק (HBSS) המכילה 10 מ"מ של חומצה הידרוקסיאתיל פיפרזינאתנסולפונית (HEPES) ו-5 מ"מ של D-גלוקוז.
  2. לדלל 75 מיקרוליטר של תמיסת המגיב המחזורי אדנוזין מונופוספט (cAMP) (ראה טבלת חומרים) ל-2.75 מ"ל של תמיסת הגירוי. הסר את מדיום הטרנספקציה מצלחת 96 הבארות ושטוף את התאים על ידי הוספת 50 מיקרוליטר של תמיסת גירוי טרייה לכל באר.
  3. הסר את תמיסת הגירוי והוסף 25 מיקרוליטר של תמיסת ריאגנט cAMP שהוכנה בשלב 4.2 לכל באר. דגרו את צלחת 96 הבארות בטמפרטורת החדר בסביבה חשוכה ונטולת ריחות (למשלample, מגירה ריקה ונקייה הרחק מכימיקלים או כל מקור ריח) למשך שעתיים.

5. Odorant Stimulation

  1. ראשית, יש לאזן את תא הלומינומטר עם מולקולות ריח נדיפות. לדלל את הריח לריכוז הרצוי ב-10 מ"ל שמן מינרלי (איור 1A). לפני תום זמן הדגירה של מגיב cAMP, הוסף 25 מיקרוליטר מתמיסת הריח לצלחת חדשה של 96 בארות (לא זו המכילה את התאים). דגרו על צלחת ריח זו בטמפרטורת החדר בתא הלומינומטר למשך 5 דקות (איור 1B) (אין צורך ברישום לומינומטר כאן).
  2. הגדר את הלומינומטר כך שיתעד את הזוהר עם עיכוב של 0 שניות במהלך 20 מחזורים של מדידת צלחת של 90 שניות עם מרווח של 0.7 שניות בין מחזורים.
  3. ממש לפני קריאת הצלחת, הסר את לוחית הריח מהתא. הוסיפו 25 מיקרוליטר של ריח בין הבארות של צלחת 96 הבארות שמכילה את התאים (אל תוסיפו את הריח בבארות שמכילות את התאים) והתחילו במהירות את מדידת הזוהר של כל הבארות במשך 20 מחזורים בתוך 30 דקות (איור 1C).

Table 1: Mix for transfection. כמויות של פלסמידים (חלבון Glosensor, RTP1S ו-OR) להוסיף ל-MEM כדי להעביר לצלחת אחת של 96 בארות.

לכל צלחת 96 באר

MEM

500 μL

pGlosensor

10 ng

RTP1S

5 ng

OR

75 ng

 

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

תוצאות

figure-results-1

איור 1: פרוטוקולים סכמטיים לניטור בזמן אמת של הפעלת קולטני ריח על ידי ריח מאודה. הריח (סגול) דולל בריכוז הרצוי בשמן מינרלי (A). לאחר מכן התמיסה צופה לתוך צלחת חדשה של 96 בארות, שה...

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

חומרים

רשימת החומרים שנעשה בהם שימוש במאמר זה
שםחברהמספר קטלוגהערות
0.05 % trypsin-EDTAGibco25300-0540.05% Trypsin - EDTA (1x), פנול אדום - אחסן ב-4 °C
100 מ"מ צלחת תרבית תאיםBD Falcon353003100 מ"מ x 20 מ"מ צלחת
15 מ"ל tubeBD Falcon35209917 מ"מ x 120 מ"מ צינורות חרוטיים
96-well plateCorning384396 well, עם מכסה LE לבן עם תחתית שקופה מצופה פולי-D-lysine Polystyrene
AmphotericinGibco15290-018Amphotericin B 250 μg/mL - יש לאחסן ב-4 °C
מכונת צנטריפוגהJouanC312מכונת צנטריפוגה עם רוטור דלי מתנדנד ל-15 מ"ל
Class II סוג A/B3 fumehoodNUAIRENU-407-500vaporhood for cell culturing
FBSGibco16000-044סרום בקר עוברי - אחסן ב-20 °C
GloSensor cAMP ReagentPromegaE1290GloSensor cAMP Reagent מצע חלבון זוהר - יש לאחסן ב-20 מעלות צלזיוס
Incubator 37°C; 5% פחמן דו-חמצניFisher Scientific11-676-604Incubator for Cell culturation
Lipofectamine 2000 reagentInvitrogen11668-019Lipofectamine 2000 Reagent 1mg/ml transfection Reagent - אחסן ב-4 ° C
Luminometer POLARstar OPTIMABMG LABTECHdiscontinued96 באר קורא צלחות לזוהר
שמן מינרליSigmaM8410ממס לריח - יש לאחסן בטמפרטורת החדר
Minimum Essential Medium (MEM)Corning cellgro10-010-CVMinimum Essential Medium Eagle with Earle's Salts & L-glutamine - יש לאחסן ב-4 מעלות צלזיוס
Penicillin/StreptomycinSigma AldrichP4333תמיסת פניצילין-סטרפטומיצין מיוצבת עם 10,000 יחידות של פניצילין ו-10 מ"ג סטרפטומיצין - יש לאחסן ב-20 מעלות צלזיוס
pGlosensorPromegaE2301pGloSensor-22F cAMP פלסמיד חלבון זוהר - אחסן ב-4 °C
Phase contrast microscopeLeica090-131.001מיקרוסקופ ניגודיות פאזה עם x4, x10, x20 מטרות
RTP1SH. Matsunami lab-100 ng/μL פלסמיד - יש לאחסן בטמפרטורה של 4 מעלות צלזיוס
תרבית תאים

תגיות

מדידת לומנסנסחלבוני Glosensorייצור cAMP (AMP מעגלי)הפעלת חלבון Gריח בשלב האדיהמכשיר לומנומטרסובסטרט לוסיפריןריאגנט cAMP