הרשמה ל-JoVE נדרשת לצפייה בתוכן זה. התחברו או התחילו בגרסת ניסיון בחינם.

מאמר שיטה

ביצוע ניסויים אישית microarray MicroRNA

19.4K צפיות

DOI:

10.3791/3250

28 באוקטובר 2011

במאמר זה

סיכום

הליך פשוט של ביצוע ניסויים אישית microarray microRNA מתואר. הצעדים כוללים בידוד RNA, תיוג RNA ו-DNA התייחסות, והכלאה דגימות כדי microarrays, סורקת את microarrays, כימות וניתוח אותות הכלאה.

תקציר

רנ"א (miRNAs) הם משפחה גדולה של ~ 22 נוקלאוטידים (NT) זמן מולקולות RNA אשר באים לידי ביטוי נרחב אאוקריוטים 1. הגנום מורכב לקודד לפחות מאות miRNAs, אשר בראש ובראשונה לדכא את הביטוי של מספר רב של גני מטרה שלאחר transcriptionally 2, 3. miRNAs לשלוט במגוון רחב של תהליכים ביולוגיים 1. בנוסף, הביטוי מירנה שינה נמצא קשור מחלות אנושיות, כגון סרטן, ואת miRNAs עשוי לשמש סמנים למחלות הפרוגנוזה 4, 5. חשוב, אפוא, להבין את הביטוי פונקציות של miRNAs בתנאים שונים.

שלוש הגישות העיקריות היו מועסקים לביטוי פרופיל מירנה: PCR בזמן אמת, microarray, וסדר עמוק. הטכניקה של microarray מירנה יש את היתרון של להיות תפוקה גבוהה, בדרך כלל פחות יקר, ורוב הפעולות הניסוי וניתוח ניתן קארied החוצה במעבדה לביולוגיה מולקולרית במרבית האוניברסיטאות, בתי ספר לרפואה ובתי חולים הקשורים. כאן, אנו מתארים שיטה לביצוע אישית microarray ניסויים מירנה. מערכת בדיקה מירנה יודפסו על שקופיות זכוכית כדי לייצר microarrays מירנה. רנ"א הוא מבודד באמצעות שיטה או מגיב ששומרת קטן מינים RNA, שכותרתו אז עם צבע פלואורסצנטי. כמו שליטה, DNA התייחסות oligonucleotides המקביל משנה של miRNAs מסומנים גם עם צבע פלואורסצנטי שונים. ה-DNA התייחסות ישמש כדי להדגים את האיכות של השקופית ואת ההכלאה ואת ישמש גם לנורמליזציה נתונים. רנ"א ודנ"א הם מעורבים הכלאה לשקופית המכילה microarray בדיקות עבור רוב miRNAs במסד הנתונים. לאחר הכביסה, להחליק את נסרק להשיג תמונות, בעוצמות של מקומות מסוימים לכימות. אותות אלה הגלם יעובדו נוסף ניתח את הנתונים ביטוי miRNAs המקביל. Microaמגלשות rray ניתן הפשיטו מחדש כדי להפחית את העלות של microarrays כדי לשפר את העקביות של ניסויים microarray. אותם עקרונות ונהלים החלות על סוגים אחרים של ניסויים microarray אישית.

פרוטוקול

1. הדפסה של microarrays מירנה אישית

  1. הדפס את השקופיות microarray באמצעות מתקן הגרעין שירותי microarray באוניברסיטה או חברה. איכות ייצור microarray היא אחד הגורמים הקריטיים ביותר להצלחה של הניסוי microarray. נסו כמה שירותים במידת האפשר. באופן אידיאלי, אפשר היה להדפיס שקופיות 5-10 בכל פעם, ואת כל השקופיות ייראה זהה, עם כתמים בודדים מופרדים היטב.
  2. לקבלת תמיכה microarray, אנו משתמשים פערים שקופיות השנייה מצופה.
  3. עבור בדיקות מירנה, אנו משתמשים NCode Multi-Species מירנה microarray בדיקה קבע V2.
  4. ממיסים את כל oligonucleotides ב 3 x SSC ב 10 מיקרומטר ו quadruply להדפיס אותם על השקופיות. תקן את השקופיות על ידי הקרנה אולטרה סגולה על פי הוראות השקופיות II GAAPS. לייבל השקופית באמצעות עט יהלום לסמן את האזור לצד בדיקות מודפס. חנות ב 22 ° C.

2. לדוגמה הכנה

  1. כל שיטהאו מגיב יכול לשמש כדי לבודד RNA, כל עוד היא שומרת RNA קטנים. אנו משתמשים בדרך כלל Trizol (Invitrogen) כדי לחלץ RNA בסך הכל, עם כמות איכות משביעת רצון של ההכנות RNA, כפי שנמדד על ידי 260nm ו 280nm קריאות.
  2. עבור RNA תיוג, לערבב ~ 25 מיקרוגרם של רנ"א מוחלטת עם 0.5 מיקרוגרם של 5'-PCU-DY547-3 "6 במאגר x 1 (50 HEPES מ"מ, pH 7.8, 20 מ"מ MgCl 2, 10 מיקרוגרם / מ"ל BSA, 10% DMSO) המכיל ~ 20 יחידות T4-RNA האנזים 1, בתוספת ~ 10 mM DTT ו ~ 0.02-0.03 נפח הסופי של 10 x T4 חיץ RNA האנזים 1 עבור ה-ATP.
  3. אפשר תיוג להמשיך על הקרח בתוך המקרר במשך 2-24 שעות. המשקע RNA עם אצטט 0.3 M נתרן 3 כרכים של אתנול. עבור קשירת משקעים יעיל, לפזר RNA סך של מעל 2 מ"ג / מ"ל, ולשמור את נפח קשירת הכולל ב μl 20 ~.
    1. אם RNA פחות זמין, כמות קלט 5'-RNA ו-PCU DY547-3 "יכול להיות scaled למטה.
    2. אם RNA הוא מאוד דליל, להוסיף המוביל כגון tRNA שמרים לסייע משקעים.
  4. שלב ו התווית מיקרוגרם 1 סך של DNA oligonucleotides התייחסות המקביל משנה של miRNAs יונקים באמצעות Ulysis אלקסה פלואוריד 647 חומצות גרעין תיוג קיט 6 כביקורת על תהליך ההכלאה. לטהר את ה-DNA מסומן באמצעות טור CentriSep ולשמור בחושך ב -20 ° C.

3. Microarray הכלאה

  1. כדי להשתמש שקופיות בפעם הראשונה, לפני להכליא את השקופיות בפתרון מסונן של 3 x SSC, 0.1% SDS, BSA 0.2% במשך 30-60 דק 'ב 37 ° C. להטביע אותם במים כמה פעמים, אז isopropanol. יבש את השקופיות בעזרת צנטריפוגה עם מתאם שקופיות ב 100 גרם במשך 5 דק 'ב 22 ° C.

הערה: אנו משתמשים בתאי קורנינג microarray הכלאה ו mSeries אירי של המדעית של Lifterslips לבצע הכלאה microarray.

  1. שוטפים את lifterslips במים, אז אתנול, לפני ייבוש באוויר. המקום שקופיות בתוך בסיס קאמרית הכלאה microarray, וכן lifterslip על גבי השקופית. Lifterslip יכסה את אזור הבדיקה, עם רצועות לבן שלה לפנות את השקופית.
  2. בחושך, ספין למטה זירז, רנ"א מסומן. לשטוף את זה פעם אחת עם 70% אתנול, ו אוויר יבש גלולה. גלולה צריך להיות אדמדם.
  3. הכן פתרון הכלאה המכיל 400 mM Na 2 HPO 4 pH 7.0, 0.8% BSA, 5% SDS, לפוראמיד 12% עם 6 μl 1/15-1/100 של מטוהרים, שכותרתו התייחסות DNA (2.4) לדגימה RNA. כמות ה-DNA התייחסות הוסיף תלוי כמה oligonucleotides שונים מסומנים (2.4). אם יש מעל 100, אז דילול פחות נחוץ.
  4. ממיסים את גלולה RNA היטב עם μl 60 ~ הפתרון הכלאה.
  5. הוסף 20 μl של מים לכל אחד בארות humidifying על בסיס microarray קורנינג קאמרית הכלאה.
  6. הוסף tהוא תערובת של RNA ו-DNA שכותרתו הפניה לשקופית. השתמש טיפ pipet דק, לגעת בעדינות את קצה lifterslip, ולאפשר פתרון להיכנס רווח בין lifterslip והחלק דרך יניקה.
  7. הנח את מכסה תא הכלאה מעל לבסיס, ואז לאטום את החדר עם קליפים מתכת.
  8. שים את החדר כולו בתוך שקית הפלסטיק שמגיע עם קלטת הקאמרית של קורנינג.
  9. מניחים את קלטת קאמרית (ים) בתוך מכולה עם מגבת נייר הרטובות; לכסות את המיכל בניילון נצמד ומניחים אותו בתוך 37 ° C לחות, תא תרבות חממה ~ 24 שעות. אלו אמצעי זהירות (3.6, 3.9, 3.10) להבטיח כי הפתרון הכלאה לא להתייבש במהלך הדגירה.

4. פוסט הכלאה עיבוד

  1. לפרק את קלטות תא אחד אחד. שקופית לצלול lifterslip שלה 2 x SSC ב 22 ° C. Lifterslip באופן טבעי ליפול השקופיות. המקום בו 0.8 x SSC. לשטוףאת השקופיות ב 0.8 x SSC פעמיים, ואז שלוש פעמים 0.4 x SSC, 1-2 דקות בסך הכל. יבש את השקופיות בעזרת צנטריפוגה עם מתאם שקופיות. שטפו את lifterslips במים ולשמור לשימוש חוזר מאוחר יותר.
  2. סרוק את השקופיות עם סורק כל מתאים, למשל, פרקין אלמר ScanArray 5000 או מולקולרית התקנים אקסון GenePix סורק 4000B microarray. סריקה באורכי גל קרובים 547 ננומטר 647 ננומטר כדי להשיג את קבצי התמונה המתאימה.
  3. שימוש תוכניות כגון BlueFuse לכמת בעוצמות פיקסל קלט, קבצי תמונה מ 4.2). בדוק מקומות מסוימים עם התוכנית להוציא נקודות חריגות על microarrays מתוך שיקול נוסף. אלה כתמים נורמלי בדרך כלל נובעים הדפסה מחליקים מחליקים עניים או טיפול לאחר ההכלאה.
  4. שימוש תוכניות כגון GeneSpring ו-Excel לניתוח נתונים והצגה. שיקולים כלליים לנורמליזציה נתוני microarray חלים, המהווה מעבר להיקף של מאמר זה.
  5. לאחר אותות משביע רצון מתקבלים after 4.3), רצועת שקופיות microarray לשימוש חוזר 7. יש לשטוף את השקופיות במים, לטבול אז מראש חימם, 1 mM NaOH ו 0.1 x SSC בצלחת מכתים ב 62 מעלות צלזיוס במשך 10-20 דקות. חזור על דגירה פעם אחת. לשטוף את השקופיות כמה פעמים במים עד 60 דקות עם רעד עדין על 22 ° C. יבש את השקופיות באמצעות צנטריפוגות, ולאחסן על 22 ° C.
  6. כדי להשתמש מחדש בשקופיות, אין צורך לאשר מראש את להכליא אותם שוב. פשוט לשטוף אותם במים ואחריו isopropanol, ויבש השקופיות ממש לפני ההכלאה.

5. נציג תוצאות:

יש לנו בעיקר בעקבות ההליכים המתוארים לפרופיל ביטוי מירנה העולמי אלפי דגימות, כלומר RNAs מבודד דג הזברה כדי הדגימה האדם בתנאים שונים. איור 1 מציג תמונה סרוקה של microarray להפגין אותות הכלאה מדויקת מאוד חזק על שקופית. פירסון correlatiעל מקדמי בין טכני משכפל של הכלאה microarray הם ~ 0.99 7, המציין reproducibility מעולה.

איור 1
איור 1 תמונה Composite של שקופיות microarray סרוקים מירנה לאחר ההכלאה. כתמים אדומים נבעה הכלאות על ידי ה-DNA התייחסות, כתמים ירוקים מן המדגם RNA DY547 שכותרתו, בעוד כתמים צהובים היו הכלאות על ידי ה-DNA ו-RNA הן על בדיקות זהה.

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

דיון

למרות ההתקדמות עמוק טכנולוגיות רצף, microarray נשאר בחירה מעשית עבור ניתוח תפוקה גבוהה של DNA ו-RNA. בהשוואה רצף עמוק, ניסויים microarray זולים, וכן מעבדה לביולוגיה מולקולרית טיפוסי יכול לבצע את רוב הניסויים ניתוח נתונים בתוך הבית, אשר מאפשר גמישות חוסך זמן. בעתיד, סביר להניח microarrays היטב המותאם באופן אינטנסיבי לחקור קבוצות הגנים, למשל, או כל קבוצת משנה של גורמי תעתוק בגנום או miRNAs, ואת אותם עקרונות ונהלים שהוצגו כאן ניתן להשתמש בניסויים microarray מנהג ללמוד הגן משפחות מלבד...

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

גילויים

אין ניגודי אינטרסים הכריז.

תודות

העבודה נתמכה בחלקה על ידי המכון הלאומי לשימוש בסמים מרכז (P50 התובע 011,806) ו צבא ארצות הברית מחלקת ההגנה (W81XWH-07-1-0183).

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

חומרים

רשימת החומרים שנעשה בהם שימוש במאמר זה
שםחברהמספר קטלוגהערות
פריטים מוכר מספר קטלוגי תגובות
NCode Multi-Species מירנה microarray בדיקה קבע V2 Invitrogen MIRMPS201 עיצוב המבוסס על miRBase שחרור 9.0 (אוקטובר 2006). הוא מכיל ~ 1140 ללא שינוי, 34-44 oligonucleotides nt עוד בדיקות עבור להטיס תולעת, דג הזברה, עכבר, חולדה, ו miRNAs אדם, ומספר בדיקות בקרה פנימית כגון snoRNAs. בדיקות מירנה הן כפילויות של רצפי משלים miRNAs בוגרת, ומכאן גודל של ~ 44 NT. ניתוח אחד יכול להתמקד miRNAs מן הגנום מסוים (ים) של עניין.
Trizol Invitrogen 15596018 יש לנו גם השתמשו מועשר, חלק קטן RNA תיוג, למרות הכל דגימות רנ"א הם מהירים יותר, קל יותר להכין לכמת מתאים ליישומים במורד כגון ניתוח ה-mRNA.
T4-RNA האנזים 1 ניו אינגלנד Biolשרירי הבטן M0204L
Ulysis אלקסה פלואוריד 647 ערכת גרעין תיוג חומצה Invitrogen U21660 ערכה זו או מוצרים דומים ניתן להשתמש בתווית ניסיוני דגימות RNA או RNA השליטה (במקום ה-DNA שליטה) גם כן.
5'-PCU-DY547-3 " Dharmacon מותאמים ללקוח חלק קטן RNA יכול להיות מתויג באופן דומה על ידי קשירת.
CentriSep עמודות פרינסטון הפרדות CS-901
GAPSII מצופה שקופיות קורנינג 40004 סוגים אחרים של שקופיות ניתן להשתמש גם.
Microarray לתאי הכלאה קורנינג 2551 או 40080 סוגים אחרים של תאים הכלאה ו coverslips צריך גם לעבוד. באמצעות מכונות הכלאה זמינים מסחרית יכולה להפחית באופן משמעותי את זמן הכלאה, למשל, ל ~ 2 שעות.
Lifterslips ה 'ermo / אירי מדעי 25X60I-M5439-001-LS
BlueFuse BlueGenome
GeneSpring Agilent

מקורות

  1. Ambros, V. The functions of animal microRNAs. Nature. 431, 350-355 (2004).
  2. Friedman, R. C., Farh, K. K., Burge, C. B., Bartel, D. P. Most mammalian mRNAs are conserved targets of microRNAs. Genome Res. 19, 92-105 (2009).
  3. Chekulaeva, M., Filipowicz, W. Mechanisms of miRNA-mediated post-transcriptional regulation in animal cells. Curr. Opin. Cell Biol. 21, 452-460 (2009).
  4. Farazi, T. A., Spitzer, J. I., Morozov, P., Tuschl, T. miRNAs in human cancer. J. Pathol. 223, 102-115 (2011).
  5. Small, E. M., Olson, E. N. Pervasive roles of microRNAs in cardiovascular biology. Nature. 469, 336-342 (2011).
  6. Thomson, J. M., Parker, J., Perou, C. M., Hammond, S. M. A custom microarray platform for analysis of microRNA gene expression. Nat. Methods. 1, 47-53 (2004).
  7. Zhang, X., Xu, W., Tan, J., Zeng, Y. Stripping custom microRNA microarrays and the lessons learned about probe:slide interactions. Anal. Biochem. 386, 222-227 (2009).
  8. Griffiths-Jones, S., Saini, H. K., van Dongen, S., Enright, A. J. miRBase: tools for microRNA genomics. Nucl. Acids. Res. 36, D154-D158 (2008).
  9. Landgraf, P. A mammalian microRNA expression atlas based on small RNA library sequencing. Cell. 129, 1401-1414 (2007).
  10. Chiang, H. R. Mammalian microRNAs: experimental evaluation of novel and previously annotated genes. Genes. Dev. 24, 992-1009 (2010).

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

הדפסות חוזרות והרשאות

תגיות

בידוד RNAסימון פלואורסצנטיהליך היברידיזציהחידוש שקופיותסריקת מיקרומערךנורמליזציה של נתוניםמיקרומערך מותאם אישיתתכנון גששיםסימון חומצות גרעיניות