מאמר שיטה

הדמיה פרומון חישה ב תכשיר Vomeronasal עכבר רקמות חריפה Slice

DOI:

10.3791/3311

⸱

6 בדצמבר 2011

 ,  ,  ,  , 
1Department of Pharmacology and Toxicology, University of Lausanne, 2Department of Genetics and Evolution, University of Geneva

במאמר זה

סיכום

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

בעכברים, היכולת לזהות פרומונים מתווכת בעיקר על ידי האיבר vomeronasal (VNO). כאן, רקמה חריפה פרוסה הכנת VNO לביצוע הדמיה סידן מתואר. גישה זו מאפשרת פיזיולוגיים תצפיות subpopulations ו / או נוירונים בודדים ברקמה חיה נוח זיהוי קולטן ליגנד.

תקציר

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

פיטר Karlson ומרטין Lüscher השתמשו פרומון המונח לראשונה בשנת 1959 1 לתאר כימיקלים המשמשים לתקשורת תוך מינים. פרומונים הם נדיפים או בלתי נדיף קצרת מולקולות 2 מופרשים ו / או הכלול 3,4 נוזלים ביולוגיים, דוגמת שתן, נוזל ידוע להיות המקור העיקרי של פרומונים 3. תקשורת המושכת הוא מעורב במגוון רחב של שיטות חיה מפתח כגון אינטראקציות 5,6 קרובי משפחה, ארגוני היררכי 3 ואת האינטראקציות המיניות 7,8 ו - וכתוצאה מכך הם בקורלציה ישירה עם להישרדות המין נתון 9,10,11. בעכברים, היכולת לזהות פרומונים מתווכת בעיקר על ידי האיבר vomeronasal (VNO) 10,12, מבנה לזווג הממוקמת בבסיס של חלל האף, וגם מוקף כמוסת סחוסי. VNO לכל צורה צינורי עם לומן 13,14 המאפשר קשר עם חיצוניעולם כימי. Neuroepithelium חושית מורכבת בעיקר של נוירונים חושיים vomeronasal דו קוטבית (VSNs) 15. VSN כל משתרע דנדריט יחיד לומן שהסתיימו ידית הדנדריטים גדול נושאת עד 100 microvilli מעורב זיהוי כימי 16. Subpopulations רבים של VSNs נוכחים. הם מובחנים על ידי chemoreceptor שהם מבטאים, ובכך ככל הנראה על ידי ליגנד (ים) הם מכירים 17,18. שתי משפחות עיקריות קולטן vomeronasal, V1Rs ו V2Rs 19,20,21,22, מורכבים בהתאמה על ידי 240 23 120 24 חברים באים לידי ביטוי שכבות נפרדות של neuroepithelium. קולטני הריח (מחדרי) 25 ו קולטנים פפטיד formyl (FPRs) 26,27 באים לידי ביטוי גם VSNs.

בין אם אלה subpopulations העצבית להשתמש באותו מסלול איתות במורד הזרם עבור פרומונים חישה אינו ידוע. למרות התפקיד המרכזי של ערוץ הסידן חדיר-(TRPC2) נוכח microvilli של נוירונים בוגרים 28 TRPC2 ערוצי התמרה עצמאי הוצעו 6,29. בשל המספר הגבוה של תת עצב את המורפולוגיה המיוחדת של האיבר, חקירות פרמקולוגיות ופיזיולוגיות של אלמנטים איתות נוכח VNO מורכבים.

כאן, אנו מציגים רקמות חריפה פרוסה הכנה של VNO העכבר לביצוע הדמיה חקירות סידן. גישה זו מאפשרת פיזיולוגיים תצפיות בסביבה הטבעית של רקמה חיה, של subpopulations כללית או בודדים של VSNs נטען בעבר עם Fura, 02:00, צבע סידן. שיטה זו היא גם נוח לומד כל קולטן ה-GFP-tagged פרומון ו ניתנת להתאמה לשימוש אחר בדיקות סידן ניאון. כדוגמה, אנו משתמשים כאן עכבר VG קו 30, שבו תרגום של הקולטן פרומון V1rb2 קשורה הביטוי של ה-GFP על ידי אסטרטגיה polycistronic.

פרוטוקול

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

1. Dissection של העכבר VNO

  1. השתמש עכברים בוגרים. כמו פרומון חישה הוא מעורב multimodalities, הבחנה זהירה בין זנים, גנוטיפים, המינים והגילאים חשובה ישפיעו התוצאות. כאן, אנו בוחרים מבוגר בעכברים VG 30 השתמשו בעבר לצורך זיהוי של זוג פרומון קולטן (2-heptanone-V1rb2) 31 (איור 1A).
  2. לפני תחילת הניתוח, להכין טרי קר נוזל מלאכותי cerebro-השדרה (ACSF; NaCl 118 מ"מ, 25 מ"מ NaHCO 3, D-גלוקוז 10 מ"מ, 2 מ"מ KCl, MgCl 2 2 מ"מ, לאא 2 PO 4 1.2 מ"מ, CaCl 2 2 מ"מ; pH 7.4) רווי oxycarbon (95% O 2: 5% CO 2). לשם כך, לערבב את כל המרכיבים למעט ACSF CaCl 2. להרוות את הפתרון ישירות על ידי מבעבע עם oxycarbon. בסופו של דבר, להוסיף את 2 CaCl ולהתאים עם DDH 2 0 לנפח הרצוי. שמור את הפתרון ACSF על הקרח עד use.
  3. המתת חסד של העכבר צריך להיעשות מעדיפים בדיוק לפני הניסוי על ידי נקע בצוואר הרחם או משאיפת CO 2.
  4. חותכים את הראש העכבר. מקום בו תחת מיקרוסקופ הביתור ACSF קר oxycarbonated ברציפות.
  5. חותכים את הלסת התחתונה ואת המיקום הראש כדי להמחיש את החיך (איור 1B).
  6. בצע חתך אופקי בחלק העליון של החיך (איור 1B) במספריים מיקרו להסיר את הקרום החיך עם מלקחיים לנתח מיקרו. מימה ולנקות את חלל חשוף עם ACSF (איור 1C).
  7. גזור העליון והחלק התחתון של מחיצת האף (איור 1C). בעדינות לחלץ את מחיצת האף המכיל את VNO ולמקם אותו ישירות ACSF על הקרח (1D איור).
  8. הפרד אנכית את שני החלקים של VNO באמצעות מלקחיים לנתח מיקרו בעדינות להסיר את הקפסולה סחוסי של VNO (איור. 1E). ודא כי כל החלקים סחוסי יוסרו.

2. פרוסה VNO רקמות הכנה

פרוסת רקמה VNO הכנה המתואר בסעיף זה 2) הוא בעיקר לחקירות הדמיה סידן. פרוסות VNO יכול לשמש גם עבור immunohistostainings על פרוסות צף לאמת את השלמות המבנית של הרקמה (ראה סעיף 3) לפרוטוקול).

  1. הכן נמוכה ההיתוך אגר (3% ברמת PBS) וכן מקום העבודה שלך. יהיה עליך ACSF, microtome ותומך, מלקחיים לנתח מיקרו, הטמעת תבניות (22 x 22 x 20 מ"מ), מגבונים דיוק, מברשות, תרבות צלחות רקמות, cyanacrylat דבק, קרח, מדחום.
  2. ממלאים את התבנית עם הטבעה אגר התכה נמוכה של 3%. ודא כי הטמפרטורה אינה עולה על 41 מעלות צלזיוס לפני הצבת אנכית VNO מחה זמן קצר (איור 2 א) כדי להיות מסוגל לקבל פרוסות העטרה.
  3. מניחים את התבנית הטבעה על הקרחדקות 1 עד התמצקות ואז נפרד ממנה לחסום את אגר. חותכים את גוש אגר בצורת פירמידה ולמקם אותו עם דבק על התמיכה microtome (איור 2 ב).
  4. חותכים פרוסות העטרה VNO עם microtome, עם מהירות של 0.5 מ"מ / s, משרעת של 0.7 מ"מ עובי ו 100 מיקרומטר ACSF קר לאסוף את פרוסות רקמה עם מברשת לפני הכנסתם צלחת רקמה תרבות מלאים קר ACSF.
  5. אם פרוסות שלך מכילים הקרינה אנדוגני כמו GFP (בגן במיקוד נוירונים) אתה יכול לבחור אותם תחת stereomicroscope ניאון (איור 2C).

3. אימונוהיסטוכימיה על פרוסות VNO צף

מטרת הליך זה היא לוודא את תקינות של פרוסות רקמה VNO שהושג בסעיף 2). טובולין Acetylated, הוא סמן microtubule / cytoskeleton לידי ביטוי דנדריטים של נוירונים microvilli VNO חושית. עבור ניסויים הדמיה סידן, ללכת directly סעיף 4) של הפרוטוקול. השיטה immunohistostaining צף על פרוסות VNO ניתן להתאים הערכה של הביטוי של חלבון כלשהו של עניין. למטרה זו, אנו ממליצים לתקן את VNO עבור 1h ב 4 ° C בתמיסה מקבע (paraformaldehyde 4% ב-PBS, pH 7.6) לאחר הנקודה 1.7) של פרוטוקול ולהשתמש מזה PBS נקודה ב-pH 7.6 מאשר ACSF פתרון.

  1. בצלחת בתרבית רקמה, לתקן את פרוסות העניין שלך בפתרון מקבע (paraformaldehyde 4% ב-PBS, pH 7.6) 1h ב 4 ° C.
  2. בלוק פרוסות הרקמה לילה בשעה 4 שלך ° C בתמיסה המכילה PBS NGS (עז נורמלי סרום) 10% טריטון X-100 ב -0.5%.
  3. דגירה פרוסות עם הנוגדן הראשוני (אנטי acetylated-טובולין, עכבר, 1:2000) עבור 16h בטמפרטורת החדר (RT) בתמיסה המכילה PBS NGS 5% טריטון X-100 ב% 0.25.
  4. לשטוף 3 פעמים במשך 5 דקות בתמיסת PBS NGS המכיל 2%.
  5. דגירה בחושך עם הערוץנוגדן ndary (Cy5-מצומדות עיזים אנטי מאוס, 1:200) בתמיסה המכילה PBS NGS 2% עבור 1h ב RT.
  6. לשטוף 3 פעמים במשך 5 דקות עם PBS NGS המכיל 2%, PBS NGS 1% ו-PBS בלבד.
  7. הר פרוסות שלך תקשורתי גובר ניאון (המכיל DAPI או לא) על ידי הצבתם במרכז אזורי מופרד הידרופובי (להשתמש בעט הידרופובי) ולכסות את פרוסות עם coverslips.
  8. לבצע תצפיות ורכישות עם מיקרוסקופיה confocal ואת תוכנה המאפשרת 3D שחזורים (איור 2D-F).

4. סידן הדמיה על פרוסות VNO

  1. ההליכים הבאים יתקיימו בחושך. דגירה VNO פרוסות עבור 1h ב 37 ° C בתמיסה טעינת מורכב ACSF קר עם Fura, 02:00 (7 מיקרומטר; פתרון מלאי של 1 מ"מ ב DMSO) ו pluronic 0.1% (w / v; פתרון המניה ב -20% ב DDH 2 O).
  2. שמרו את הפרוסות טעון על הקרח עם oxycarbonation עד לשימוש. פרוסות טעון יכולים להישמר עבור3-4H.
  3. מניחים את פרוסות טעון עם מברשת בתא המכיל זלוף ACSF ולשמור את הפרוסות עם עוגן רקמות פרוסה (איור 3A).
  4. הנח את תא זלוף על הבמה של מיקרוסקופ סידן הדמיה (איור 3B) ומתמשך perfuse עם ACSF oxycarbonated ב RT. טמפרטורה ניתן להתאים את השימוש של בקר טמפרטורה דו קוטבית.
  5. תצפיות של פרוסות טעון VNO (איור 3C-E) מבוצעים עם מיקרוסקופ פלואורסצנטי הפוכה, במטרה 25x או 63x ומצלמה מגניב SNAP-HQ. תאורה נעשית ברצף (340/380 ננומטר) עם מכשיר polychromator והקליט בשיעור של 5Hz. פליטת מסוננים נעשית על 510 ננומטר. יחס סידן שינויים תאיים (= ΔF nm/380 340 ננומטר) מנוטרים עם תוכנה מתאימה.
  6. Chemostimulation יש לבחור בהתאם לצורך הניסוי שלך. כאן, perfusions של ACSF המכיל מ פרומוןix (isobutylamine, 2-heptanone, 4-heptanone, 2-heptanol, pentylacetate, dimethylpyrazine, α / β-farnesene, 10 -6 M), 2-heptanone (10 -6 M) או שנאספו טרי זכר ונקבה (1: 1) שתן העכבר (1:100) מבוצעות 32. זלוף של ה-ATP (125 מיקרומטר) משמש מבחן הכדאיות בסוף הניסויים (איור 3F) וצריך להצביע על שיעור של כ 80% נוירונים קיימא. בתנאים אלה, פרוסות יכול לשמש עד 2 שעות.
  7. Subpopulations GFP-tagged של נוירונים חושיים הם דמיינו ידי תאורה ספציפית (כאן הנוירונים להביע V1rb2) וכן ניתן לנתח במדויק (איור 3G-I).

5. נציג תוצאות:

כדי להקים assay פונקציונלי לחקור את התמרה רב המסלולים מתרחש VNO העכבר, או לזהות חדש פרומון קולטן זוגות, אנחנו מנצלים את העכבר VG קו (איור 1A (איור 1E), אנו מכינים חריפה פרוסות VNO (איור 2C). אנו לתקן חלק מהם, כדי לבדוק ולאמת את תקינות tissular של התכשיר על ידי ביצוע immunohistostainings נגד החלבון טובולין acetylated-(איור 2D-F). שבריר השנייה של פרוסות משמש ניסויים הדמיה סידן. לשם כך, פרוסות נטענים עם Fura, 02:00 (איור 3C-E) ורמת סידן תוך תאי של כל נוירון מנוטר כיחס ΔF (איור 3F). הכדאיות של נוירונים הוא מוערך על ידי טפטוף של ה-ATP (125 מיקרומטר), לאחר עלייה מהירה וחולפת יחס ΔF צפוי (איור 3F). שתן להיות המקור העיקרי של פרומונים, זלוף של טריאסף ly עכבר שתן (1:100) משמש לשלוט אנדוגני. זה מעורר הארעיים סידן כ -50% של נוירונים מוקלט (תא 1 ו -2, איור. 3F). תחת ה-GFP תאורה, V1Rb2 נוירונים החיוביים הם נצפים, ו זלוף של ליגנד המושכת הידוע שלה, 2-heptanone, יוזם הפעלה סלולרית (תא 1, איור. 3I). מעניין, הפעלות נוירונים הם הנצפה גם בשבריר של נוירונים אינם מבטאים את הקולטן V1Rb2 (נוירונים GFP שלילי) (2 תאים, איור. 3I), הוכחת את המורכבות של פרומון קידוד VNO.

איור 1
באיור 1. Dissection האיבר עכבר vomeronasal. (א) עכבר מקו VG. (ב) לאחר המתת חסד של העכבר, ראש מלא ממוקם תחת מיקרוסקופ המשקפת את הלסת התחתונה מוסרת כדי להמחיש את החיך. חתך אופקי קטן נעשה(קו מקווקו שחור). (ג) לאחר סילוקו של החיך, מחיצת האף מצופה VNO הוא חתך בחלק העליון והחלק התחתון (קווים מקווקווים לבן) כדי להקל על החילוץ VNO. (ד) VNO ממוקמת בפתרון ACSF ומופרד (הכנס: תצוגת כוח עליון של שני החלקים). (ה) הכמוסה סחוסי של VNO מוסר בעדינות, ואת VNO ללא סחוס הקפסולה שלה משמש להמשך הניסויים. ברים סולם הם: BE, 1 מ"מ.

איור 2
2. איור עכבר vomeronasal הכנה חריפה פרוסה ויושרה tissular. (א) VNO העכבר מוטבע אנכית פתרון אגר 3%. הטמפרטורה של אגר חייב להיות נמוך מ 41 ° C. (ב) לחסום אגר הוא חתך בצורת פירמידה ו 100 מיקרומטר סעיפים VNO (קו מקווקו שחור) נוצרות ACSF. (ג) פרוסות VNO ניתן לבחור תחת stereomicroscope ניאון כדי להמחיש מסויםאוכלוסיה של נוירונים חושיים מתויג. (DF) יושרה Tissular ניתן להעריך על ידי immunohistostainings נגד החלבון טובולין acetylated-, תצוגה של כוח עליון V1rb2 גן במיקוד נוירונים להדגים את שימור מושלם של התכשיר. נוירונים עם דנדריטים הארוכה שלהם להגיע לפני השטח של לומן (E), כמו גם את הביטוי של החלבון המבני הבליטות microvilli הדנדריטים ניתן לצפות (F). ברים סולם הם: B, 5 מ"מ; C, 60 מיקרומטר; ד ', 40 מיקרומטר; EF, 20 מיקרומטר.

איור 3
3. איור סידן הדמיה זיהוי פרומון ב vomeronasal פרוסות הרקמה חריפה. (א) לאחר שלב Fura 02:00-loading, פרוסות VNO ממוקמים בתא זלוף ומתוחזקים עם עוגן מותאם (תצוגת מתח גבוה). (ב) ניסויים מבוצעים את פרוסות כהה VNO הם perfused ברציפות ב RT עם ACSF עם מערכת ואקום. הטמפרטורה יכולה להיות chosen באמצעות בקר טמפרטורה המערכת מורכבת על ידי אלמנט דו קוטבית פלטייה ו בדיקה תרמית. ניסוי זה בפרט בוצע ב RT. (CE) פרוסות VNO הם הנצפה תחת בניגוד שלב הופמן (C, HV) או Fura 380 ננומטר תאורה לפני (ד ') במהלך ההפעלה העצבית (E, כאן עם ה-ATP). (F) הכדאיות העצבית מוערך עם טפטוף של ה-ATP (125 מיקרומטר). כאן, chemostimulation נעשה עם שתן (שתן, 1:100) או בתערובת של פרומונים העכבר (ph לערבב., 10 -6 M) בשיעור זרם בלתי פוסק של 165 מ"ל / h. רמות הסידן תאיים (ΔF) ניתן להקליט בנפרד עבור כל תא (Cell 1-3). (G) נוירון V1Rb2 הוא מדמיין תחת GFP תאורה (1). (H) העמסה של זה נוירון (1), כמו גם אי - נוירון V1rb2 להביע (2) מוצג. (אני) נוירון V1rb2 הוא מסוגל להגיב 2-heptanone עם עלייה סידן תוך תאי. זה נוירון מסוים שאינו V1rb2 להביע גם מגיב 2-heptanone (תא 2). ברים סולם הם: CE, 20 מיקרומטר; GH,15 מיקרומטר; ΔF = 340 ננומטר / 380 ננומטר. (F ו-I) משך היישום גירוי מסומן על ידי סורגים תחת כל עקבות. היקף צבע שרירותי מייצג את עוצמת הקרינה.

דיון

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

הדמיה סידן השיטה המוצגת כאן מאפשרת להקליט, כהכנה פרוסה חריפה, המושכת את התגובות של נוירונים עכבר VNO. עם גישה זו, דיסקציה מן החיה אל הנוירונים vomeronasal היא, עם קצת תרגול, השגה בקלות ומספק הכנה ארוך רקמה חיה. זה מאפשר זמן רב ניסויים כמו חקירות תרופתי או לימוד של קידוד המושכת. בעזרת טכניקה זו פיזיולוגיים, אוכלוסיות גדולות, כמו גם subpopulations העצבית מדויק ניתן לנתח באופן ספציפי. בנוסף, בשיטה זו ניתן להתאים בקלות לגישות או ניסויים immunohistochemical המבוססת על צבעים סידן אחרים. השימוש בשיטות אלה בשילוב בוודאי לאפשר זיהוי של ligands המושכת חדש עבור chemoreceptors יתום רבים הביעו באיבר העכבר vomeronasal.

גילויים

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

אין ניגודי אינטרסים הכריז.

תודות

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

אנו רוצים להודות במיוחד מוניק Nenniger Tosato לקבלת תמיכה טכנית מעולה שלה, כמו גם ז'אן איב Chatton עבור עצות המדעי שלו ואת פלטפורמת CIF הדמיה של UNIL עבור הציוד מיקרוסקופ. המימון ניתן על ידי השוויצרי הקרן הלאומית למדע.

חומרים

רשימת החומרים שנעשה בהם שימוש במאמר זה
שםחברהמספר קטלוגהערות
שם מגיב חברה מספר קטלוגי תגובות
אדנוזין 5'-טריפוספט disodium מלח פתרון (ATP) Sigma-Aldrich A6559-25UMO
אגר Sigma-Aldrich A7002-100 גרם מועדף עבור אימונוהיסטוכימיה
אגר (התכה נמוכה) Sigma-Aldrich A0701-25 גרם מעדיפים הדמיה סידן
CL-100 דו קוטבית בקר טמפרטורה וורנר מכשירים W64-0352
Confocal מיקרוסקופ Leica Microsystems SP5 AOBS
Cy5 AffiniPure-Anti-IgG עכבר עיזים ג'קסון ImmunoResearch 115-175-071 הגנה מן האור
DMSO (Sulfoxide דימתיל) מרק 317,275, 100 מ"ל
הטבעת תבניות, פיל-A-Way Polysciences 18646A-1 22 x 22 x 20 מ"מ
פלורסנט הרכבה מדיה (Vectashield עם DAPI, 10 מ"ל) Rectolab H-1200
FURA, 02:00 Teflabs 0103 הגנה מן האור
Glisseal N (גריז ואקום, 60 גר ') בורר Chemie Glisseal N
אמבטיה גדולה הקלטה קאמרית (RC-26G) וורנר מכשירים 64-0235
MetaFluor (תוכנת הדמיה סידן; v.7.6.5.0) Visitron מערכות
חד שבטיים אנטי טובולין, acetylateד נוגדן עכבר Sigma-Aldrich T6793-.2ML
עז בסרום רגיל (NGS, 10 מ"ל) Interchim UP379030
פלטפורמה לתאי (P-1) וורנר מכשירים 64-0277
Pluronic F-127, 2 גרם Invitrogen P-6867
רוטי קול (בקבוק מינון, 10 גר ') קרל רוט 0,258.1
SC-20 תנור Dual In-line הפתרון / Cooler וורנר מכשירים W64-0353
פורסים עוגן (SHD-26GKIT) וורנר מכשירים 64-0266
Stereofluorescence מיקרוסקופ Leica Microsystems MZ16FA
סופר PEN PAP (הידרופוביעט) Pelco הבינלאומי 22309
טריטון X-100 Fluka 93420-250 מ"ל
רטט להב microtome VT 1200S Leica Microsystems 14048142066
VisiChrome מהירות גבוהה polychromator מערכת Visitron מערכות
3D ויזואליזציה נתונים (Imaris; v.6.3.1) Bitplane מדעי תוכנה

מקורות

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
  1. Karlson, P., Lüscher, M. "Pheromones" a new term for a class of biologically active substances. Nature. 183, 55-56 (1959).
  2. Cavaggioni, A., Mucignat-Caretta, C., Redaelli, M., Zagotto, G. The scent of urine spots of male mice, Mus musculus: Changes in chemical composition over time. Rapid Commun. Mass Spectrom. 20, 3741-3746 (2006).
  3. Novotny, M., Harvey, S., Jemiolo, B. Chemistry of male dominance in the house mouse, Mus domesticus. Experientia. 46, 109-113 (1990).
  4. Leinders-Zufall, T. Ultrasensitive pheromone detection by mammalian vomeronasal neurons. Nature. 405, 792-796 (2000).
  5. Leinders-Zufall, T. MHC class I peptides as chemosensory signals in the vomeronasal organ. Science. 306, 1033-1037 (2004).
  6. Leinders-Zufall, T., Ishii, T., Mombaerts, P., Zufall, F., Boehm, T. Structural requirements for the activation of vomeronasal sensory neurons by MHC peptides. Nat. Neurosci. 12, 1551-1558 (2009).
  7. Jemiolo, B., Xie, T. M., Novotny, M. Socio-sexual olfactory preference in female mice: attractiveness of synthetic chemosignals. Physiol. Behav. 50, 1119-1122 (1991).
  8. Achiraman, S., Archunan, G. Characterization of urinary volatiles in Swiss male mice (Mus musculus): bioassay of identified compounds. J. Biosci. 27, 679-686 (2002).
  9. Dulac, C., Torello, A. T. Molecular detection of pheromone signals in mammals: from genes to behaviour. Nat. Rev. Neurosci. 4, 551-562 (2003).
  10. Brennan, P. A., Zufall, F. Pheromonal communication in vertebrates. Nature. 444, 308-315 (2006).
  11. Mondor, E. B., Roitberg, B. D. Inclusive fitness benefits of scent-marking predators. Proc. Biol. Sci. 271, Suppl 5. 341-343 (2004).
  12. Holy, T. E., Dulac, C., Meister, M. Responses of vomeronasal neurons to natural stimuli. Science. 289, 1569-1572 (2000).
  13. Keverne, E. B. The Vomeronasal Organ. Science. 286, 716-720 (1999).
  14. Weiler, E. Postnatal development of the rat vomeronasal organ. Chem. Senses. 30, Suppl 1. 127-128 (2005).
  15. Zufall, F., Kelliher, K. R., Leinders-Zufall, T. Pheromone detection by mammalian vomeronasal neurons. Microsc. Res. Tech. 58, 251-260 (2002).
  16. Ciges, M., Labella, T., Gayoso, M., Sanchez, G. Ultrastructure of the organ of Jacobson and comparative study with olfactory mucosa. Acta. Otolaryngol. 83, 47-58 (1977).
  17. Munger, S. D., Leinders-Zufall, T., Zufall, F. Subsystem organization of the mammalian sense of smell. Annu. Rev. Physiol. 71, 115-140 (2009).
  18. Mombaerts, P. Genes and ligands for odorant, vomeronasal and taste receptors. Nat. Rev. Neurosci. 5, 263-278 (2004).
  19. Ryba, N. J. P., Tirindelli, R. A new multigene family of putative pheromone receptors. Cell. 19, 371-379 (1997).
  20. Matsunami, H., Buck, L. B. A multigene family encoding a diverse array of putative pheromone receptors in mammals. Cell. 90, 775-784 (1997).
  21. Herrada, G., Dulac, C. A novel family of putative pheromone receptors in mammals with a topographycally organized and sexually dimorphic distribution. Cell. 90, 763-773 (1997).
  22. Dulac, C., Axel, R. A novel family of genes encoding putative pheromone receptors in mammals. Cell. 83, 195-206 (1995).
  23. Young, J. M., Massa, H. F., Hsu, L., Trask, B. J. Extreme variability among mammalian V1R gene families. Genome. Res. 20, 10-18 (2009).
  24. Yang, H., Shi, P., Zhang, Y. P., Zhang, J. Composition and evolution of the V2r vomeronasal receptor gene repertoire in mice and rats. Genomics. 86, 306-315 (2005).
  25. Levai, O., Feistel, T., Breer, H., Strotmann, J. Cells in the vomeronasal organ express odorant receptors but project to the accessory olfactory bulb. J. Comp. Neurol. 498, 476-490 (2006).
  26. Riviere, S., Challet, L., Fluegge, D., Spehr, M., Rodriguez, I. Formyl peptide receptor-like proteins are a novel family of vomeronasal chemosensors. Nature. 459, 574-577 (2009).
  27. Liberles, S. D. Formyl peptide receptors are candidate chemosensory receptors in the vomeronasal organ. Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 106, 9842-9847 (2009).
  28. Liman, E. R., Corey, D. P., Dulac, C. TRP2: A candidate transduction channel for mammalian pheromone sensory signaling. Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 96, 5791-5796 (1999).
  29. Kelliher, K. R., Spehr, M., Li, X. H., Zufall, F., Leinders-Zufall, T. Pheromonal recognition memory induced by TRPC2-independent vomeronasal sensing. Eur. J. Neurosci. 23, 3385-3390 (2006).
  30. Rodriguez, I., Feinstein, P., Mombaerts, P. Variable patterns of axonal projections of sensory neurons in the mouse vomeronasal system. Cell. 97, 199-208 (1999).
  31. Boschat, C. Pheromone detection mediated by a V1r vomeronasal receptor. Nature. Neuroscience. 5, 1261-1262 (2002).
  32. Brechbühl, J., Klaey, M., Broillet, M. C. Grueneberg ganglion cells mediate alarm pheromone detection in mice. Science. 321, 1092-1095 (2008).

הדפסות חוזרות והרשאות

בקש הרשאה לשימוש חוזר בטקסט או באיורים של מאמר JoVE זה

בקש הרשאה

תגיות

VNOFura 2AMGFPTRPC2

מאמרים קשורים