$$\rightleftharpoonup{xx}$$
$$\longleftharp{xx}$$,
$$\longrightharp{xx}$$,
1. Microtomy על סעיפים בלא כתם
- הגדרת אמבט מים microtome באשר microtomy פרפין סטנדרטי. השתמש שקופיות בעלי מטען חשמלי חיובי ושל מראש תווית עם מספר התיק, באזור הלבלב (לדוגמה) ואת מספר שקופיות. פרפין במקום לחסום צ'אק microtome עם תווית את הקלטת בצד שמאל.
- בצע את ההליכים microtomy רגילים, סעיף לבלוק עד רקמת הוא נתקל באופן אחיד. לייצר סרט של חלקים סדרתיים (4 מיקרומטר עבים, 3-6, תלוי כמה כתמים הנדרשים הראשונים (ראה מקרה הגשת טופס, נספח 1)). חלקים נפרדים סרט, לקחת את זה לפי הסדר, ומניחים על שקופיות עם סדר ספורים בעיפרון. לציין אם סעיף זה מנוצל על ידי מספור הסעיפים לפי סדר מדויק. לשמור על הכיוון אותו בשקופית כמו למצוא קלטת עם תווית שקופיות בכיוון שמאלה. יבש במשך הלילה בטמפרטורת החדר ולאחר מכן להמשיך עם כתמים או הפצה החוקרים.
- מילמשטח EAL של גוש פרפין עם שכבה דקה של פרפין לשמר רקמות ארכיון בטמפרטורת החדר או -20 ° C.
- עבור microtomy לאחר מכן, לשמור על מספור הסעיפים סדרתיים בכל רמה לעיל. קבל 1 שקופית נוספת על ידי כתם שקופיות H & E עבור כל רמה ~ 100 מיקרומטר בתוך כל בלוק.
2. H & E מכתים
- מניחים את השקופית הראשונה מחולק הסידורי של כל בלוק במעמד שקופית ואז במגש הראשון autostainer.
- בחר את התוכנית תקן H & E כתם ולהמשיך כרגיל.
- בסיום מכתים, להסיר את השקופיות מן autostainer ומניחים מכסה המנוע של coverslipping.
- Coverslip באמצעות טכניקה סטנדרטית. לייבש היטב את התווית עם תווית מודפס (ראה סעיף 12).
3. IHC Set-up
- בחר את התוכנית Dako עבור כתמים כפולים ומספרים קלט של שקופיות. הכן TBST ו ציטראט מאגרים, נוגדנים, reag אחרלהורים על פי כרכים שצוין (טבלה 1). טען את מגש מגיב שקופיות. הסיבוב של קווים נקיים פסולת מתוכנתים על פי המלצות היצרן.
- אם מבצעים את מבחני ידני, להכין כרכים כ. דגירה שקופיות חדר humidified להימנע שקופיות ייבוש החוצה בשלב כלשהו. בצע את אותו תהליך עבור כל ריאגנטים כמו בעת שימוש עבור autostainer.
4. IHC Deparaffinization ואחזור Antigen
- שים שקופיות קסילן במשך 5 דקות. חזור פעם אחת. אל תאפשר השקופיות להתייבש בכל שלב שלאחר מכן עד כמצוין זה יביא ברקע מוגזם מכתים עניים.
- העברת שקופיות אתנול 100% במשך 2 דקות. חזור פעם אחת.
- שים שקופיות מוכן טרי 3% H 2 O 2 ב מתנול במשך 10 דקות.
- טובלים שקופיות באתנול 90% ולאחר מכן למקם באתנול 90% במשך 3 דקות.
- העברת שקופיותאתנול 70% למשך דקה 1.
- יש לשטוף במים שקופיות דה מיונן.
- מחממים הספינה ואת מאגר ציטראט על הספינה במשך 5 דקות.
- הוסף שקופיות ציטראט חיץ קיטור ואדים במשך 30 דקות.
- מיד להעביר שקופיות מים ממושכת עד מחליק מצננים לטמפרטורת החדר (~ 20 דקות).
- העברת שקופיות מדפי autostainer Dako על פי כתם רצף (איור 1) ולהפעיל את תוכנית צביעה כפולה. הצעדים העיקריים של התוכנית autostainer מפורטים כך פועל ידניים יכול לשכפל.
5. נוגדנים הראשוניות (Ki-67, CD3, הלבלב פוליפפטיד)
- חסום שקופיות עם פתרון צלף במשך 15 דקות. שטפו פעמיים עם TBST.
- דגירה שקופיות הנוגדן העיקרי במשך 30 דקות. שטפו פעמיים עם TBST.
- דגירה עם עז Mach2 אנטי עכבר (Ki-67) או ארנבת אנטי (CD3, הלבלב פוליפפטיד) צנון סוס peroxidase (HRP) פולימר של 30 מ 'inutes. שטפו פעמיים עם TBST.
- החל 3,3-diaminobenzidine tetrahydrochloride (DAB) לשקופיות עבור 4 דקות. לשטוף פעמיים במים.
- שקופיות מודגרות עם הלבלב פוליפפטיד מוחזקים על Dako בזמן הטיפול ושם ישקלו לו ויעריכו במקביל ו TBST המשמש את כל הצעדים הבאים תוך בשקופיות שנותרו מודגרת עם סט של 2 נוגדנים ראשוניים. לחלופין, עבור מבחני ידניים, המשך לסעיף 6.
6. נוגדנים ראשיים השני (אינסולין, גלוקגון)
- דגירה שקופיות דיב 20 דקות. שטפו פעמיים עם TBST.
- בלוק עם סרום 10% עיזים רגיל חוסם avidin 20% TBST (אינסולין) או צלף (גלוקגון) ב TBST במשך 20 דקות. שטפו פעמיים עם TBST.
- דגירה עם אינסולין או נוגדנים גלוקגון העיקרי במשך 15 דקות. שטפו פעמיים עם TBST.
- אינסולין: שקופיות דגירה של חזיר biotinylated עז נגד גינאה בדילול 1:300 במשך 30 דקות. שטפו פעמיים עם TBST. דגירה עם יש תקןctor ABC-AP מגיב במשך 30 דקות. שטפו פעמיים עם TBST.
- גלוקגון: שקופיות דגירה של חיץ במהלך 30 דקות ואחריו נגד העכבר עז אלקליין phosphatase (AP) פולימרי במשך 30 דקות. שטפו פעמיים עם TBST.
- בעוד שקופיות מודגרת ב conjugates, לחמם את מאגר LPR לטמפרטורת החדר. הוסף 1 טיפה של נוזל אדום קבע (LPR) לכל מאגר מ"ל 3 מיידית לפני השימוש במקום במעמד מגיב Dako. דגירה שקופיות LPC במשך 4 דקות. לשטוף פעמיים במים.
- דגירה שקופיות hematoxylin דקה 1. יש לשטוף פעמיים במים.
- דגירה שקופיות כפות pH 7.6 דקה 1. יש לשטוף פעמיים במים.
- לפרוק שקופיות מ DAKO Autostainer.
- מיד מייבשים שקופיות מוכתמים על הלבלב פוליפפטיד. עבור כל השקופיות מוכתמים כפולות, יבש לפחות שעה 1 ואז מייבשים.
7. התייבשות
- במקום שקופיות באתנול 80% למשך דקה 1.
- טובלים שקופיות באתנול 95%. החזק שקופיות באתנול 95% למשך 30 שניות.
- העברת שקופיות אתנול 100% והחזק 1 דקה. חזור.
- טובלים שקופיות קסילן.
- החזק שקופיות קסילן דקה 1. חזור.
- מיד לעלות coverslips בשקופיות באמצעות cytoseal.
8. Slide סימון
- הזן את זיהוי המקרה המידע כולל מספר איברים אבן, כתם, ותאריך ולהדפיס. בסעיף מספר סידורי הוא אופציונלי על הכתמים השקופית הראשונה של כל בלוק. רמות הבאים מסומנים על ידי מספור.
- מניחים תוויות בשקופיות.
9. שקופיות סריקה
- מניחים במגש שקופיות צבעונית, סורק לסרוק פי מכשור.
- לארגן שקופיות לפי סוג התורם ורקמות (ראש הלבלב, גוף, זנב, טחול).
- שקופיות ארכיון מוכתמים בטמפרטורת החדר וכל שקופיות בלא כתם הנותרים ב -20 ° C עד בשימוש.
10. Representative תוצאות
נהלים אלה צביעה פותחו עבור רשת JDRF לעוגב תורמים הלבלב עם סוכרת (nPOD) כדי לספק אפיון בסיסי של פרפין בלוקים קפואים טריים. תורם לכל אחד מהם יש אפיון המחקר ביצע מורכב מכתים 2 בלוקים כל אזור הלבלב (ראש, גוף, זנב) ואת הטחול (איור 1, ראו גם טופס הגשת התיק, נספח 1). צביעת H & E נעשה באמצעות autostainer מתוכנת כמו מתקן קלינית קליני כיתה פתרונות המשמשים לאורך כל הדרך. כמו אבני התורמות נוספים הם מחולק, לכל שקופית מובנת H & E להראות מורפולוגיה רקמות. כאשר הם אבני מחולק שוב, כמו להפצה החוקרים, רמות עמוקות יותר יהיה גם שקופיות שצולמו עבור נציג H & שקופיות ה לתעד את המורפולוגיה של הרקמה בלוק שלם כמו גם מספור הסעיפים סדרתיים בכל רמה. שקופיות ויטראז מסומנים עםזיהוי מקרה, באזור הלבלב, מספר בלוק, כתם ותאריך (איור 2) וסקר את מערכת ניהול מידע באינטרנט הפתולוגיה. תמונות מייצגות מתורם השליטה מוצגות באיור 3 בשני בהגדלה נמוך וגבוה להראות התוצאות הצפויות בעקבות הליך זה. מוכתם שקופית עם הלבלב פוליפפטיד (D, H) ושם ישקלו לו ויעריכו היה ביום אחר עם assay באופן ידני ומראה עוצמת מכתים מופחת של counterstain hematoxylin. הבדלים מכתים עוצמת נוגדנים ראשוניים או counterstain בין מבחני יש להימנע במיוחד אם באמצעות ניתוח תמונה אחרת עם מחליק דורשים תיקון צבע הפרט כדי להשיג את אותו התא או אזורים ספירות.
כל מעבדה צריך לצפות כדי לייעל את ריכוזי הנוגדנים כמו הרבה אל הווריאציה הרבה חומרים כימיים אחרים ותנאים יכול להשפיע בעוצמה מכתים וספציפיות. עם הרכישה של ניו ריאהרבותי, נהלים מכתים מאומתים עם דגימות הידועות בקרה חיוביים ושליליים כדי להשיג את אותה מידה של עוצמת הכתם כמו ריאגנטים לשעבר. נוגדנים נוספים אופטימיזציה בליבת nPOD הפתולוגיה ניתנים בטבלה 2 כמקור התייחסות שימשו במשך multilabeling מבחני immunofluorescence עבור מיקרוסקופיה confocal.

באיור 1. רשת Dako מכתים. סכמטית זה מתאר ניתוח שגרתי מהלבלב התורם nPOD שבוצעה על autostainer Dako. התורמים nPOD מוצפנים עם מספר בן 4 ספרות זיהוי. שני מגשי שקופיות מוצגים עם שקופיות מאורגנות על ידי כתם. תצורות חלופיות שקופיות צפויים תלוי במספר שקופיות התורמות. בקרות חיוביות כוללים הכללת תורם חיובית ידוע על שני כתמים כפולים הטחול התורם עבור Ki-67 ו CD3. בקרות שליליות הן כפולה וכוללים 2 SLIדה מבלוק אחד תורם הלבלב מודגרות עם אימונוגלובולינים (איג) מן המין המארחות של נוגדנים ראשוניים שתי שקופיות של הטחול התורם עבור אינסולין גלוקגון.

איור 2. נציג שקופית צבעונית כפולה. שקופיות המוגמר טיפוסי מוצג עם תיוג פרמטרים שקופיות השמה רקמות לפני סריקה דיגיטלית מבוצעת.

איור 3. נציג H & E וכתמים IHC בסעיפים הלבלב. סעיפים מהלבלב של תורם האיבר הנשי הבוגר (6096-04 PanHead) היו מוכתמות סריקות דיגיטליות שבוצעו כמפורט בפרוטוקול. התמונות התקבלו באמצעות תוכנית ImageScope ההצגה של סעיף שלם (AD) ומ איון 1 (EH). את עוצמות איון צפוי כתם של אינסולין, גלוקגון, והלבלב פוליפפטיד הםציין עבור חלקים BD כמו משרטטת פרק ד ', כי זה בלוק בראש הלבלב מכיל חלק קטן של האזור אונקלי או באונה הלבלב הגחון כמו איים כולם מכילים בעיקר פוליפפטיד חיובי בתאי הלבלב. שים לב counterstain hematoxylin בלוח D הוא קל מדי בזמן hematoxylin counterstain עוצמות ב B ו-C הם אופטימליים. לוחות EH להראות איון מהאונה הגב עם ההפצה מצופה מתאי בטא ו α-תאים. התאים בלבלב כמה פוליפפטיד נמצאים בחלק השמאלי התחתון של איון (H). , E-H &E; B, F-Ki67 + אינסולין, C, G-CD3 + גלוקגון, D, H-הלבלב פוליפפטיד. לספירה, 0.2X, EH-12.8x.