מאמר שיטה

מיקרון בקנה מידת רזולוציה אופטית טומוגרפיה של מוח עכבר השלם עם מיקרוסקופית גיליון Confocal אור

20.7K צפיות

⸱

DOI:

10.3791/50696

⸱

8 באוקטובר 2013

 ,  ,  ,  ,  ,  , 
1European Laboratory for Non-linear Spectroscopy (LENS), 2Integrated Research Centre, University Campus Bio-medico of Rome, 3DAEMI, University of Cassino, 4National Institute of Optics (CNR-INO), 5Allen Institute for Brain Science, 6Department of Physics, University of Florence, 7ICON Foundation, Sesto Fiorentino, Italy

במאמר זה

סיכום

במאמר זה אנו מתארים את ההליך ניסיוני המלא לשחזר, עם רזולוציה גבוהה, האנטומיה מוח הקנס של מוח עכבר שכותרתו fluorescently. הפרוטוקול המתואר כולל הכנת מדגם וסליקה, דגימת הרכבה עבור הדמיה, שלאחר עיבוד נתונים והדמיה רב היקף.

תקציר

הבנת הארכיטקטורה של מוח של יונקים ברזולוציה תא בודד היא אחד הנושאים המרכזיים של מדעי המוח. עם זאת, מיפוי סומה ותחזיות עצביות לאורך כל המוח הוא עדיין מאתגר בטכנולוגיות הדמיה וניהול נתונים. ואכן, כרכים מקרוסקופית צריכים להיות משוחזרים עם רזולוציה גבוהה ולעומת זאת בפרק זמן סביר, ייצור מערכי נתונים בטווח הטרה. לאחרונה הפגינו שיטה אופטית (מיקרוסקופיה confocal אור הגיליון, CLSM) מסוגלת קבלת שיקום מיקרון בקנה מידה של מוח עכבר השלם שכותרתו עם חלבון פלואורסצנטי ירוק משופר (EGFP). שילוב של תאורת גיליון אור וגילוי confocal, CLSM מאפשר הדמיה עמוקה בתוך דגימות פינו מקרוסקופית עם ניגודיות גבוהה ומהירות. כאן אנו מתארים את הצינור הניסיוני השלם כדי להשיג תמונות מקיפות וקריאות של מוח עכבר השלם שכותרתו עם חלבוני ניאון. הסליקה וp ההרכבהrocedures מתוארים, יחד עם הצעדים כדי לבצע טומוגרפיה אופטית בנפח כולה על ידי רכישה רבות ערימות סמוכות מקבילות. אנחנו הראיתי את השימוש בכלי תוכנה בקוד פתוח מותאמות אישית המאפשרים לתפרים של הערימות מרובות וניווט נתונים רב ברזולוציה. לבסוף, הדגמנו כמה דוגמא של מפות מוח: המוח הקטן מעכבר L7-GFP מהונדס, שבו כל תאי פורקינג' מסומנים באופן סלקטיבי, וכל המוח של עכבר Thy1-GFP-M, המתאפיין בתיוג עצבי דליל אקראי.

מבוא

בהשוואה להבנה של תפקוד המוח הבסיסי מנגנונים מולקולריים והתאיים שלנו, הידע של neuroanatomy קנס שלנו נראה עדיין בחיתוליו 1. למעשה, אנחנו עדיין חסרים מפות מקיפות של עמדת somata העצבי או מתחזיות לטווח ארוך בכל רחבי המוח. למעשה, רבים מאמצים טכנולוגיים מוקדשים לשחזר את מוח העכבר עם רזולוציה מיקרוסקופית. שיטות אופטיות המבוססות על חתך סידורי של דגימות מוטבעות שרף, כסכין קצה סריקה מיקרוסקופית (KESM) 2, מיקרו האופטי חתך טומוגרפיה (MOST) 3 והקרינה-ביותר (fMOST) 4, יכול לספק רזולוציה תלת ממדים תת מיקרון הדמיה של מוח עכבר כולו. עם זאת, את הזמן הכולל הדרוש לעריכה ולהדמיה של מדגם יחיד הוא בסדר גודל של מספר שבועות, המגביל את היישום המעשי של שיטות כאלה. טכניקה נוספת המבוססת על חתך סדרתי (אבל בלי הטבעת שרף), טורי דוטומוגרפיה הפוטון (STP) 5, מאפשרת הדמיה תלת ממדית ברזולוציה גבוהה. עם זאת, טכניקה זו הודגמה במוח עכבר כולו אך ורק בדגימה דלילה מאוד, איסוף סעיף 1 כל 50 מיקרומטר 5, ואת הידע שלנו STP לא הניב עדיין שחזור מלא דגימה של מוח עכברי.

שיטה אופטית חדשנית לשחזר כל דגימות בשלושה ממדים במהירות גבוהה היא מיקרוסקופית אור גיליון 6. בערכה אופטית זה המדגם הוא מואר בסדין דק של אור ופליטת הקרינה שנאסף לאורך ציר בניצב למישור התאורה. בדרך זו רק fluorophores בפוקוס נרגש וזה אפשרי להשיג חתך אופטי בתצורת שדה רחבה, המבטיח את מסגרת חליפין גבוהות. כאשר מצמידים את ניקוי פרוטוקולים מבוססים על ההחלפה של מים עם נוזל תואם מקדם שבירה 7, מיקרוסקופיה גיליון האור הוחלדגימות מאקרוסקופי, כמו מוח עכבר כולו 8. עם זאת, דגימה-induced פיזור אור, אשר משפיע על דגימות אפילו פינו, מדרדרת את גיליון האור מוביל לעירור של fluorophores מחוץ לפוקוס אשר מוסיף כוללת טשטוש לתמונות שנרכשו.

לאסוף באופן סלקטיבי רק פוטונים בפוקוס, לאחרונה בשילוב תאורת גיליון אור לערכת זיהוי confocal 9. במיקרוסקופיה גיליון אור confocal (CLSM), מחוץ לפוקוס ופוטונים מפוזרים נדחים על ידי מסנן ליניארי מרחבית (חריץ) לפני זיהוי (איור 1). כדי להשיג פעולת confocal באדריכלות גיליון אור, התאורה מופקת באמצעות קו סריקה, ומערכת דה לסריקת בדרך הגילוי יוצרת תמונה סטטית של קו סריקת עירור במיקום של החריץ. מערכת סריקה שלישית משחזרת תמונה דו ממדית על חיישן המצלמה. CLSM מאפשר 100% שיפור לעומת בעכבר פינהמוח ביחס למיקרוסקופיה גיליון אור הקונבנציונלית, תוך שמירה על שיעור 10 מסגרת הרץ. עם CLSM זה אפשרי לשחזר את המוח של עכבר כולו עם רזולוציה של 2 מיקרומטר בXY ו 9 מיקרומטר ב-Z, ועם ניגודיות מספיקה כדי להבחין בנוירונים בודדים שכותרתו fluorescently.

במאמר זה אנו מתארים את הצינור הניסיוני לשחזר מוח עכבר עם CLSM. המוח של עכבר קבוע אלדהיד מיובש בסדרה מדורגת של tetrahydrofuran נטול חמצן ופינה לאחר מכן באתר dibenzyl נטול חמצן (איור 2), בעקבות הפרוטוקול שפותח על ידי בקר ואח'. 10 הדגימה פינתה מותקן אז בזהירות על הטה צלחת ואת מיקומו בחדר ההדמיה של מיקרוסקופ אור confocal מחוייט גיליון. המדגם יכול להיות מותקן ישירות על ידי צולל אותו על קצה של הצלחת (איור 3 א), או לחלופין הוא יכול להיות מודבק על דיסק של agarose ג'ל פינה (איור3 ב) או להציב בחלל של כוס עשויה מג'ל פינה agarose (איור 3c). טומוגרפיה אופטית של המוח כולו לאחר מכן ביצעה, כפי שרבי ערימות סמוכות מקבילות נרכשות כדי לכסות את כל נפח המוח (איור 4). דגימה טרום טומוגרפיה, אשר מייצרת מפה גסה של מיקום הדגימה וצורה, מבטיחה כי הדמיה מתבצעת רק בנפח תפוס על ידי המדגם. ערימות טומוגרפיה לאחר מכן מאוחות עם תוכנה מותאמת אישית ונשמרו בתכנית היררכית רב ברזולוציה 11. סופו של דבר יכול להיות חוקר מוח עכבר עם תוכנת הדמיה כמו מפות גוגל רבת ברזולוציה prototypal. שני מכשירים אלה תוכנה משולבים כתוספים בפלטפורמת הקוד הפתוח 12 Vaa3D.

אנחנו סוף סוף להראות תמונות מייצגות של מוח עכבר כדי להדגים את היכולות של הצינור הניסיוני המתואר בלומדים הנוירו העכברי בסדרy.

פרוטוקול

1. רקמת הכנה ואחסון

  1. תקן את מוח עכבר באמצעות זלוף transcardial הסטנדרטי 13 עם 20 מיליליטר 0.01 M ופר פוספט פתרון (PBS), ואחריה של 4% paraformaldehyde 100 מיליליטר ב0.01 M PBS. להתאים בזהירות את ה-pH של שני הפתרונות ל7.6: ערכים מעט נמוכים יותר של ה-pH יכולים להרוות את הקרינה של EGFP.
  2. פוסט לתקן את המוח נכרת לילה בparaformaldehyde 4% ב 4 ° C.
  3. יש לשטוף את שתי פעמים (30 דקות כל אחד) ב0.01 M PBS וחנות ב0.01 M PBS ב 4 ° C.

2. התייבשות וסליקה

הערה: הפרוטוקול להתייבשות וסליקה כדלקמן אחד שתואר על ידי בקר ואח' 10 מקרוב.

  1. כדי להסיר חמצניים מממס ההתייבשות (tetrahydrofuran, THF), אשר בתוקף להרוות את הקרינה XFP, THF מסנן עם תחמוצת אלומיניום הופעלה בסיסית (כיתה פעילות ברוקמן אני, על 250 גרם / L של THF) באמצעות chromatography עמודה. הימנע מפיצוח של הטור, אשר יפחית את הסרת חמצן.
  2. הוספת מייצב (hydroxytoluene butylated, 250 מ"ג / ליטר) לפתרון הסופי, גם אם THF כבר התייצב לפני הסינון. מייצב הוא למעשה שמרה על ידי תחמוצת אלומיניום: THF ללא מייצב עשוי לפתח כמויות גדולות של תחמוצות ויכולות להיות נפיץ ומסוכן.
  3. מייבשים את המוח כל עכבר בסדרה מדורגת של THF במים טהורים: 50%, 70%, 80%, 90%, 96%, 100%, 1 שעות כל אחד, ולאחר מכן לילה 100%. מניחים את הבקבוקון עם המדגם על גלגל מסתובב. כדי להימנע מחשיפה לאור, לעטוף את צלוחיות עם נייר אלומיניום.
  4. סנן ממס הסליקה (אתר dibenzyl, DBE) עם תחמוצת אלומיניום (מופעל בסיסי, בכיתה הפעילות ברוקמן אני, על 250 גרם / L של DBE) באמצעות משפך סינון.
  5. נקה את המדגם בDBE 100%. לשנות את הפתרון לאחר 3 ו 6 שעות.

3. דגימת הרכבה

  1. כאשר המוח נראה שקוף לפי העין (typiמלקק 1 שעות לאחר שינוי DBE השני), להעלות אותו על צלחת ההדמיה הטה על ידי אחת מהשיטות הבאות:
    1. הרכבה ישירה - בעדינות לצלול מדגם באחד הטיפים (איור 3 א).
    2. דיסק agarose - לצלול דיסק עשוי מ6% agarose ג'ל על הקצוות. בעדינות לתקן את המדגם על דיסק agarose עם דבק אקרילי (איור 3 ב). המתן כ 1 דקות לריפוי.
    3. כוס agarose - לצלול כוס עשויה מ3% agarose ג'ל על הקצוות. מניח בעדינות את הדגימה בתחתית של הכוס (איור 3c).

הערה 1: התקנה בכוס agarose צריך להיות מועדף כאשר הוא חשוב הדמיה המדגם בכללותו, עם זאת, את הג'ל agarose המקיף את הדגימה מוליד פיזור אור נוסף אשר יכול להזיק לאיכות תמונה. אם חלק קטן מהמדגם יכול להיות מחוץ הדמיה, עדיף לעלות על המפרטimen בדיסק agarose או ישירות על הקצה. השיטה לשעבר מתאימה הטוב ביותר לשמור על המוח האופקי (לא כולל מהדמית חלק הגחוני או הגבי של המוח), האחרון כדי לשמור על המוח אנכי (לא כולל מהדמית חלק מנורות חוש הריח או של עמוד השדרה).

הערה 2: ג'ל agarose צריך להיות מוכן במים, ולאחר מכן מיובש עם THF (50% ו100% 4 שעות כל אחד) ופינה בDBE 100% עבור 4 שעות או עד שזה נראה באופן ברור שקוף.

  1. לאחר ההרכבה הדגימה הבאה באחת מהשיטות הקודמות, מקם את צלחת ההדמיה בתוך חדר הדגימה באמצעות פינצטה. למלא את התא עם ניקוי פתרון.

4. טומוגרפיה הכנה

  1. הסר את החריץ כדי לאסוף כמה שיותר הקרינה ככל האפשר.
  2. להאיר את המדגם עם כוח לייזר נמוך כדי למנוע photobleaching.
  3. הזז את המדגם בשלושה הכיוונים באמצעות syste micropositioning מונע תוכנהמ '. זיהוי לכל כיוון המינימום וקואורדינטות מרביות של המדגם הוא מואר ונמצא בשדה ראייה של המצלמה (איור 4 א).
  4. הכנס את הקואורדינטות לעיל כפרמטרים לשגרה "טרום טומוגרפיה '. ציין גם את המרחק בין ערימות סמוכות לשימוש בטומוגרפיה, וצעד הדגימה מראש טומוגרפיה בכיוון z.
  5. התחל מראש טומוגרפיה, אשר אוספת את התמונות בכל מחסנית עם דגימת z שצוינה ב( 4.4).

הערה: תמונות שנאספו משמשות את תוכנה כדי להכין מפה גסה של צורת דגימה ומיקום (איור 4), המאפשר הגבלת רכישת טומוגרפיה רק לכרך שנכבש בפועל על ידי המדגם, צמצום זמן הדמיה ובכך photobleaching.

5. טומוגרפיה רכישה

  1. הזז את המדגם מחוץ לגיליון האור באמצעות מערכת micropositioning.
  2. Incכוח rease הלייזר ולעצור את התנועה של כל מערכות הסריקה, כדי להאיר נייח רק במרכז שדה הראייה.
  3. הר את השסע וליישר אותו באמצעות אות autofluorescence מפתרון הסליקה. אתה צריך לראות באופן ברור את קו השסע במרכז שדה הראייה.
  4. Re-להפעיל את מערכת הסריקה, להפחית את כוח הלייזר ולהעביר את הדגימה בתוך גיליון האור באמצעות מערכת micropositioning. שים לב שהכח הלייזר בשימוש עם החריץ יהיה גבוה יותר מזה המשמש בלי זה, שכן בלוקים המסנן המרחבי חלק לא מבוטל של אור.
  5. התאם את המשרעת וקיזוז של מערכות הסריקה ודה לסריקת עם תוכנת השליטה, עד שהתמונות נראות ברורות ובהירות.
  6. הפעל את תוכנת רכישת טומוגרפיה, לאחר הגדרת צעד z המתאים לניסוי. הנפח יהיה צילם ברב במקביל, באופן חלקי ערימות חפיפה (איור 5 א), והתמונות יישמרו במבנה תיקיות היררכי.

6. תפירה ויזואליזציה

  1. השלם את הנפח שנרכש עם תמונות סינתטיות שחורות (כלומר תמונות מאותו הסוג והממדים של אלה שנאספו, אבל עם אפס עוצמה) באמצעות תוכנות אוטומטיות (איור 4C). צעד זה הוא חובה על מנת שתוכנת התפרים כדי להתמודד עם נפח מעוקב מלא.
  2. תוכנת Vaa3D ההפעלה (להורדה חופשית מ http://www.vaa3d.org/) עם התוספים TeraStitcher וTeraManager מותקנים.
  3. טען את תוסף TeraStitcher. בחר את הספרייה המכילה את הנפח צילם, מצביע על האוריינטציות היחסית של הצירים (ביחס להתייחסות ימנית מערכת קואורדינטות) וגודל voxel.
  4. הפעל את החלק הראשון של התפרים. התוכנה תחשב את התזוזה היחסית בין הזוגות של ערימות, ולמצוא placem אופטימלי הכוללתאף אוזן גרון לכל הערימות יחד (איור 5).
  5. בחר כדי לשמור את הנפח תפור ברזולוציה בודדת או בפורמט רב ברזולוציה. האחרון מאפשר להדמיה ברזולוציה רבת עם תוסף TeraManager. בשני המקרים, אם התמונה ברזולוציה גבוהה יותר היא גדולה יותר מאשר כמה ג'יגה, בחר גם רבת הערימה שמור לערוץ ולציין את הגודל של substacks הבודד. זה יאפשר גישה יעילה לנתונים המאוחסנים.
  6. הפעל את החלק השני של התפרים. התוכנה למזג את הערימות המסודרות, ולשמור אותם במצב או (ג 5 דמויות ו5D) חד או רבת מחסנית. בסופו של הדבר לסגור את תוסף TeraStitcher.
  7. טען את תוסף TeraManager. בחר את התיקייה עם הרב שנערם-רב ברזולוציה הנפח, ומצביע על גודל voxel וגרזני אוריינטציות. הנפח יהיה טעון ברזולוציה המינימלית.
  8. כדי להגדיל את התצוגה לרזולוציה גבוהה יותר, בחר אתר באמצעות modalit הלחיצה הימניתy של Vaa3D, ולאחר מכן להתמקד בשימוש בגלילה של עכבר. לחלופין אתה יכול לבחור באופן ישיר את ההחזר על ההשקעה כדי להגדיל בלחיצה ימנית, או לציין את הקואורדינטות של הנפח של עניין.
  9. כדי להתקרב חזרה לרזולוציה נמוכה יותר, פשוט להשתמש בגלילה של העכבר.

תוצאות

הפרוטוקול המתואר ניתן להשתמש כדי לשחזר גם עם מוח בקנה מידה מיקרון רזולוציה כל עכבר או חלקים נכרת, ללא הצורך בחתך פיזי. כתוצאה מכך מייצג, באיור 6 כולו המוח הקטן של עכבר L7-GFP (הודעה לידה יום 10) מוצג. בבעלי חיים זה כל הנוירונים פורקינג' מסומנים עם EGFP. אם להגדיל את התצוגה, מבנה שבשבת האופייני של קליפת המוח הקטן שניתן לראות (איור 7). בהמשך התקרבות מאפשרת הבחנה ברורה בין כל סומה פורקינג' תא (איור 8). הפרוטוקול המתואר לכן יכול לשמש מסך ארגון המרחבי עצבי במחקרי התפתחות נוירולוגית שונים.

כתוצאה מכך נציג שנייה, אנו מציגים תמונות ממוח unsectioned של עכבר Thy1-GFP-M מבוגר. בבעלי חיים מהונדסים זה EGFP בא לידי ביטוי בקבוצת משנה עצבי דליל אקראי. המחצית הימנית של המוח מוצגת באיור 9. כפי שאנוזום בעוד ועוד (איורים 10 ו11), התהליכים עצביים הופכים להבחנה. תוצאה זו מוכיחה כי הפרוטוקול המתואר מאפשר הדמיה ברזולוציה מיקרון בקנה מידה במוח עכבר המבוגר כולו, פותח את האפשרות ללמוד אנטומיה המוח כולו ברזולוציה הסלולר בעכברי מודל של מחלת ניוון עצבי.

figure-results-1
איור 1. ערכה אופטית של מיקרוסקופיה גיליון אור confocal (CLSM). (א) להציג לראש המנגנון, המציג את מסלול העירור. פליטת לייזר מליזר דיודה שאוב 488 ננומטר מצב מוצק (DPSS), לאחר ההתרחבות וcollimation ידי הטלסקופ ראשון, נכנסה מסנן מתכונן acousto אופטי (AOTF) המסדיר עוצמת קרן. לאחר מכן, טלסקופ שני מרחיב עוד יותר את הקרן. מראה galvo אנכי (יחד y) סורק להיות (ב) להציג בבוקר, שעל ידי עדשה בתוך חדר הדגימה הוא ממוקד. לרוחב של המכשיר, המציג את מסלול זיהוי. אור שנאסף על ידי מטרת הגילוי הוא descanned אנכי על ידי מראה galvo וממוקד על ידי עדשה, בהפקת תמונה קבועה של קו העירור הנע. במיקום של תמונה קבועה במסנן המרחבי ליניארי (חריץ) ממוקם. אחרי החריץ, מראה galvo ממוקם בתוך מערכת עדשות 4F משחזר תמונה 2-מימדית על השבב של מכשיר אלקטרונים הכפלת תשלום מצמידים (EM-CCD). מסנן הקרינה bandpass להסיר את כל האור התועה עירור לפני הגילוי. קרני נציג של עירור, איתור וגילוי אור מסונן bandpass מתוארות על ידי קרני כחולה, תכלת וירוקה, בהתאמה. אורכי המוקד של כל העדשות משמשות למעשה מיקרוסקופ מצוינים. לחצו כאן כדי להציג דמות גדולה.

jove_content "עבור: together.within-לשמור על עמודים =" תמיד "> figure-results-2
איור 2. סליקת דגימה. מוח עכבר קבוע פורמלדהיד, המאוחסנים ב-PBS 0.1 M ב 4 ° C (א), מיובשים בסדרה מדורגת של tetrahydrofuran (THF, ב) ופינה לאחר מכן ב100% אתר dibenzyl (DBE , ג). צעד ההתייבשות גורם גם כמה הצטמקות רקמה.

figure-results-3
איור 3. דגימת הרכבה הדמיה CLSM. המוח פינה ניתן צלל ישירות על צלחת ההרכבה מוטה (), מודבק על דיסק agarose פינה (ב), או שהוכנס בכוס agarose (ג) יימחק.

עבור: together.within-לשמור על עמודים = "תמיד"> figure-results-4
איור 4. רכישת טומוגרפיה. דגימות השגרתיות מראש טומוגרפיה מקבילון המכיל את המוח (א) כדי להגדיר את המספר והאורך של ערימות סמוכות מקבילות הנחוצות לתמונה כל הדגימה (ב). לאחר טומוגרפיה, תמונות שחורות נוצרות כדי להשלים את הנפח שנרכש הווירטואלי למקבילון (ג).

figure-results-5
איור 5. תפירת נפח. התמונה נאספה ערימות חופפות באופן חלקי בין אחד לשני (א), ומאפשרים יישור המדויק שלהם עם תוסף TeraStitcher (ב). התוסף לאחר מכן ממזג את הערימות מיושרות בשני בודד מוערם (ג) או רב staייצוג cked (ד) רב ברזולוציה.

figure-results-6
איור 6. המוח הקטן שלם של עכבר L7-GFP P10, שבו כל הנוירונים פורקינג' מסומנים עם EGFP. בר סולם, 1 מ"מ.

figure-results-7
איור 7. תקריב של חלק מהמוח הקטן שמוצג באיור 6, מראה את מבנה שבשבת האופייני של המוח הקטן קליפת המוח. סרגל קנה מידה, 500 מיקרומטר.

figure-results-8
איור 8. זום בהמשך של חלק של המוח הקטן שמוצג באיור 6. סומה תאי פורקינג' יכול להיות להבחין בבירורed. סרגל קנה מידה, 200 מיקרומטר.

figure-results-9
איור 9. מחצית ימנית של המוח מעכבר Thy1-GFP-M למבוגרים, המתאפיין בתיוג דליל נוקב עצבי EGFP. בר סולם, 1 מ"מ.

figure-results-10
איור 10. תקריב של חלק של מחצית המוח מוצג באיור 9, מראה חלק של ההיפוקמפוס וקליפת המוח. סרגל קנה מידה, 200 מיקרומטר.

figure-results-11
איור 11. זום בהמשך של חלק של מחצית המוח שמוצג באיור 9. כמה neurites בקליפת המוח ניתן להבחין בבירור. סרגל קנה מידה, 50 מיקרומטר.

דיון

CLSM יחד עם סליקה כימית מייצג כלי רב עוצמה כדי לחקור neuroanatomy של מוח עכבר השלם שכותרתו עם בדיקות ניאון, או חלבונים או צבעים סינטטיים. מאז האור הנפלט מחוץ למישור המוקד חסום על ידי מסנן מרחבי פיזי, הדמיה ניגודיות גבוהה אפשרית גם בדגימות עבות, תוך שמירה על המסגרת החליפין הגבוהה הטיפוסית של אדריכלות גיליון אור.

הבעיה העיקרית להתמודד עם בעת שימוש בשיטות שתוארו היא מקסום של הניגוד. למעשה, את האות זמינה מופחתת הן על ידי גורמים כימיים ואופטיים. מנקודת המבט הכימית, נהלי הסליקה מבוססים על ממס אורגני יכולים להרוות את הפליטה מחלבונים ניאון וצבעי ניאון אחרים 7. הסינון של הממס להסרת תחמוצות, כפי שתואר על ידי בקר ואח'. 10, מאפשר שמירה על רמה טובה של הקרינה גם ברקמות-פינה ממס. לפרסםשיטות ניקוי על בסיס מים ed 14 לא להפחית את יעילות הקרינה, אבל לגרום לשקיפות עניות יותר כאשר מדוברים במוחות עכבריים כולו, לפחות בשיטות אופטיות ליניארי.

מצד השני, ברגע שאין מטרות מסחריות עם מרחק עבודה ארוך המתוקנת למדד הגבוה השבירה (n ≈ 1.56) ניקוי פתרונות בשימוש. לפיכך, חוסר התאמת מקדם השבירה בין המדיום שבו המדגם הוא שקוע והעיצוב אחד האובייקטיבי מולידה סטיות כדוריות חזקות. מלבד הפחתה ברזולוציה של מיקרוסקופ, סטיות כאלה לגרום לירידה של עוצמת תמונה ולעומת זאת, מאז האור משתרע על שטח רחב יותר. דרכים לעקיפת אפשריות לסוגיה זו כוללות את השימוש של אופטיקה אדפטיבית 15 ו / או מתקן אספריים סטטי.

כל שיפור בניגוד תמונה ועוצמה בקלות משפיע גם מהירות הדמיה, שכן קצר יותר בניתן לבחור בזמן שילוב מחדש לכל תמונה. כרגע CLSM יכול להרשות מהירות הדמיה של כ 10 6 מיקרומטר 3 / sec, עם זמן חשיפת מצלמה של 100 msec 9. במהירות זו שלוקח מ1-3 ימים לתמונה במוח עכבר כולו, תלוי בגודל מדגם. למרות השפלה לא משמעותי באיכות תמונה הוא ציין ברחבי מושב כזה ארוך הדמיה, בעיקר בגלל photobleaching הנמוך המהותי של תאורת גיליון אור 6, זמן דרוש לתמונה במוח עכבר בודד יכול בפועל לצמצם את תחולתו של CLSM. גידול של פי 10 ביעילות מערכת, בשילוב עם השימוש במצלמה במהירות גבוהה לצורך זיהוי, הייתי להפחית את זמן הדמיה לכמה שעות, מה שמאפשר שימוש שיגרתי של הפרוטוקול המתואר.

למרות כל המגבלות הנ"ל, ההדמיה CLSM מצמידים את הסליקה כימית של היתרי רקמות לשחזר מוח עכבר כולו עם רזולוציה בקנה מידה מיקרון בפחות משבוע. שיטות אופטיות אחרות להדמית המוח כולו להרשות לעצמו ברזולוציה גבוהה יותר מאשר CLSM, אבל במחיר של הכנה ארוכה יותר ו / או זמן הדמיה 2-4, או של דגימת z דלילה 5.

השיטות מתוארות במאמר זה יכול לשמש בשילוב עם אסטרטגיות שונות לניאון תיוג: בעלי חיים מהונדסים מבטא חלבוני ניאון בתת נבחר עצביים, transfection הנגיפי, הזרקת צבע intraparenchymal, וכו 'בפועל, כל האסטרטגיות מכתים קדמו הקרבת בעלי חיים בקנה אחד עם CLSM . למעשה, תיוג ניאון שלאחר המוות של מוח עכבר כולו לא הפגין עד עכשיו; בכל מקרה, אם סוג כזה של צביעה יהיה אפשרי בעתיד הקרוב, את מספר הדגימות שניתן לשחזר עם CLSM יהיה הרבה יותר גדול, פוטנציאלי, כולל רקמת מוח אנושית.

לסיכום, מיקרוסקופיה גיליון אור confocal בשילוב עם TISסליקה לתבוע וניהול נתונים רב ברזולוציה עשויה לאפשר לחוקרים לשחזר ולנתח דגימות מקרוסקופית עם רזולוציה בקנה מידת מיקרון, עם מאמצים טכנולוגיים הנמצאים גם ביד של רוב המעבדות. יישומים אפשריים של CLSM הם כמובן לא רק למדעי המוח, אבל משתרע על פני כל תחומי המחקר שבו כבר נעשה שימוש במיקרוסקופ גיליון אור, כעובר 16,17 ואנטומיה של בעלי חיים קטנים 18.

גילויים

החוקרים מצהירים כי אין להם אינטרסים כלכליים מתחרים.

תודות

המחקר שהוביל לתוצאות הללו קיבל מימון מתכנית המסגרת השביעית של האיחוד האירופי (FP7/2007-2013) במסגרת הסכמי מענק n. 228,334 ו241,526. פרויקט מחקר זה נתמך גם על ידי מענק Frontier אנוש תכנית מדע מחקר (RGP0027/2009), ועל ידי המשרד האיטלקי לחינוך, אוניברסיטות ומחקר במסגרת פרויקט הדגל Nanomax ועל ידי משרד בריאות איטלקי במסגרת "תאי גזע קריאה להצעות". מחקר זה בוצע במסגרת פעילות המחקר של קרן ICON נתמכת על ידי "Ente Cassa di Risparmio די פירנצה".

חומרים

רשימת החומרים שנעשה בהם שימוש במאמר זה
שםחברהמספר קטלוגהערות
טבליות מי מלח חוצצות פוספטסיגמא-אולדריץ'P4417_100TAB
פרפורמלדהידאגר סיינטיפיקR1018
ללא מי חמצןסיגמא-אולדריץ186562
תחמוצת אלומיניום מופעלת, בסיסית, Brockmann ISigma-Aldrich199443
דיבנזיל אתרסיגמא-אולדריץ'108014
בוטילאט הידרוקסיטולואןסיגמא-אולדריץ'W218405
אגרוז סוג III-A, דבק אקרילי גבוה EEOSigma-AldrichA9793
BostikD2498
תוכנת Vaa3D קודפתוחלהורדה חופשית מ-http://www.vaa3d.org/
'

מקורות

  1. Lichtman, J. W., Denk, W. The big and the small: challenges of imaging the brain's circuits. Science. 334, 618-623 (2011).
  2. Mayerich, D., Abbott, L., McCormick, B. Knife-edge scanning microscopy for imaging and reconstruction of three-dimensional anatomical structures of the mouse brain. J. Microsc. 231, 134-143 (2008).
  3. Li, A., et al. Micro-optical sectioning tomography to obtain a high-resolution atlas of the mouse brain. Science. 330, 1404-1408 (2010).
  4. Gong, H., et al. Continuously tracing brain-wide long-distance axonal projections in mice at a one-micron voxel resolution. Neuroimage. 74, 87-98 (2013).
  5. Ragan, T., et al. Serial two-photon tomography for automated ex vivo mouse brain imaging. Nat. Methods. 9, 255-258 (2012).
  6. Keller, P. J., Dodt, H. U. Light sheet microscopy of living or cleared specimens. Curr. Opin. Neurobiol. 22, 138-143 (2012).
  7. Erturk, A., et al. Three-dimensional imaging of solvent-cleared organs using 3DISCO. Nat. Protoc. 7, 1983-1995 (2012).
  8. Dodt, H. U., et al. Ultramicroscopy: three-dimensional visualization of neuronal networks in the whole mouse brain. Nat. Methods. 4, 331-336 (2007).
  9. Silvestri, L., Bria, A., Sacconi, L., Iannello, G., Pavone, F. S. Confocal light sheet microscopy: micron-scale neuroanatomy of the entire mouse brain. Opt. Express. 20, 20582-20598 (2012).
  10. Becker, K., Jahrling, N., Saghafi, S., Weiler, R., Dodt, H. U. Chemical clearing and dehydration of GFP expressing mouse brains. PLoS One. 7, e33916(2012).
  11. Bria, A., Iannello, G. TeraStitcher - A Tool for Fast Automatic 3D-Stitching of Teravoxel-Sized Microscopy Images. BMC Bioinformatics. 13, 316(2012).
  12. Peng, H., Ruan, Z., Long, F., Simpson, J. H., Myers, E. W. V3D enables real-time 3D visualization and quantitative analysis of large-scale biological image data sets. Nat. Biotechnol. 28, 348-353 (2010).
  13. Gage, G. J., Kipke, D. R., Shain, W. Whole animal perfusion fixation for rodents. J. Vis. Exp. (65), e3564(2012).
  14. Hama, H., et al. Scale: a chemical approach for fluorescence imaging and reconstruction of transparent mouse brain. Nat. Neurosci. 14, 1481-1488 (2011).
  15. Booth, M. J., Neil, M. A. A., Wilson, T. Aberration correction for confocal imaging in refractive-index-mismatched media. J. Microsc. 192, 90-98 (1998).
  16. Huisken, J., Swoger, J., Del Bene, F., Wittbrodt, J., Stelzer, E. H. Optical sectioning deep inside live embryos by selective plane illumination microscopy. Science. 305, 1007-1009 (2004).
  17. Keller, P. J., Schmidt, A. D., Wittbrodt, J., Stelzer, E. H. Reconstruction of zebrafish early embryonic development by scanned light sheet microscopy. Science. 322, 1065-1069 (2008).
  18. Jahrling, N., Becker, K., Schonbauer, C., Schnorrer, F., Dodt, H. U. Three-dimensional reconstruction and segmentation of intact Drosophila by ultramicroscopy. Front Syst. Neurosci. 4, 1(2010).

הדפסות חוזרות והרשאות

בקש הרשאה לשימוש חוזר בטקסט או באיורים של מאמר JoVE זה

בקש הרשאה

תגיות

Stitching

מאמרים קשורים