מאמר שיטה

גידול בתאי גזע עצבי מאזורים קונבנציונליים ולא קונבנציונליים של המוח מכרסם מבוגרים

11.9K צפיות

DOI:

10.3791/50880

18 בנובמבר 2013

במאמר זה

סיכום

תאי גזע עצביים שנקטפו מהמוח הבוגר מתרבים מנוצלים ביישומים החל המחקר הבסיסי של התפתחות מערכת עצבים לחקור יישומים קליניים פוטנציאליים ברפואת רגנרטיבית. זה הופך את השליטה קפדנית בתנאי הבידוד וculturing משמשים לגידול תאים אלה קריטיים להישמע תוצאות ניסוי.

תקציר

מחקר שנערך לאחרונה מוכיח כי מערכת עצבים מרכזית התחדשות (CNS) וtumorigenesis כרוך אוכלוסיות של תאי גזע (SCS) תושב בתוך המוח הבוגר. עם זאת, מנגנוני תאים בדרך כלל שקטים אלה מעסיקים על מנת להבטיח תפקוד תקין של רשתות עצביות, כמו גם את תפקידם בהחלמה מפציעה וההפחתה של תהליכי ניוון עצבי הם הבינו מעט. תאים אלה מתגוררים באזורים המכונים "נישות" המספקות סביבה תומכת מעורבת אותות ויסות משני כלי הדם ומערכת חיסונית. הבידוד, התחזוקה, והבידול של SCS במערכת העצבים המרכזית בתנאי תרבות מוגדרים שלא לכלול גורמים לא ידועים, הופכים אותם נגיש לטיפול באמצעים תרופתיים או גנטיים, ובכך לספק תובנות על התנהגות in vivo שלהם. כאן אנו מציעים מידע מפורט על השיטות להפקת תרבויות של SCS מערכת העצבים המרכזית מאזורים שונים של המוח המבוגר וגישות להערכת דפוטנציאל ifferentiation לנוירונים, האסטרוציטים, וoligodendrocytes במבחנה. טכניקה זו מניבה אוכלוסיית תאים הומוגנית כתרבות monolayer שיכול להיות דמיינו ללמוד SCs פרט וצאצאיהם. יתר על כן, ניתן להחיל אותו על פני מערכות מודל של בעלי החיים שונות ודגימות קליניות, שהשתמש בעבר כדי לחזות את תגובות משובי במערכת העצבים למבוגרים הפגועה.

מבוא

הדוגמה המרכזית לנוירוביולוגיה, שנקבעה על ידי התצפיות הבסיסיות של cytoarchitecture המוח שנעשה על ידי רמון קחל י 'לפני למעלה ממאה שנים, קבעה כי נוירוגנזה הייתה סבירה לאחר גיל ההתבגרות בהתחשב במורכבות של הרשתות עצביות שנמצאו במערכת העצבים המרכזית 1. למרות עבודתו של אלטמן ב1960s, ומאוחר יותר קפלן, הוכחת כי 3 H-תימידין אפשר היה לציין בתאים בוגרים מצביעים על כך שלמעשה היו נוירונים שנוצרו באזורים שונים של המוח הבוגר, הדוגמה המשיכה להחזיק 2, 3. ראיות המשיכו לעלות עם המחקר של Nottebohm המתאר את השינויים העונתיים במספר הנוירונים במוח של ציפור השיר נוכחי 4. זה לא היה עד 1999, כאשר גולד ואח' עבודה. פורסם על הדור של נוירונים בהיפוקמפוס העליות עם הביצועים של משימות למידה אסוציאטיביות בחולדה, כמו גם התצפיות של הפגנות Kornack וRakicטינג המשיך נוירוגנזה במקוק המבוגר שהקונספט של מוח פחות נוקשה, פלסטיק יותר, הוכר 5, 6.

החיפוש אחר המקור הסלולרי לדה נובו הנוירונים שנוצרו אלה להוביל לגילוי של אוכלוסייה נפרדת של תאי גזע (SCS) שמתגוררות באזורים במוח המכונה נישות 7. אזור subventricular והאזור גרעיני תת של ההיפוקמפוס נחשבים לשני האזורים העיקריים נוירוגנית 8,9. תאים מבודדים ממקומות אלה להציג את המאפיין הקלאסי של SCS נגזר עוברי או עוברי, התחדשות עצמית ואת פוטנציאל התמיינות. במקרה של תאי גזע עצביים (NSCs), הם יכולים להיות מובחנים לנוירונים, האסטרוציטים, וoligodendrocytes. בנוסף, SCS אלה להכתים חיוביים לסמני NSC עובריים כגון nestin חלבון נימה ביניים 10. עבודה מאוחרת יותר מדגישה כי SCs לא יכול להיות מוגבלת לאלה לאוו האזורים, והם למעשה מקומיים בכל רחבי המוח כאוכלוסייה במידה רבה שקטה של תאים בחוזקה הקשורים לכלי הדם 11.

התצפיות שSCs מגויסים בתגובה לפציעה מציעה את האפשרות של להיות מסוגלים לנצל את התאים האלה למטרות משובי כדי לסייע בהחלמה מההפרעה ושבץ 12, 13 ניווניות. זה לא בניגוד לתפקיד שתאי גזע mesenchymal (MSCs) לשחק בריפוי של רקמות חיבור, אשר נמצא כתאי perivascular שיש לו את הפוטנציאל להפוך לosteoblasts, כונדרוציטים, ותאי שומן 14. עם זאת, לא יכול להיות שנקטפו NSCs באותו אופן כמו MSCs ממח עצם על ידי שאיפה שגרתית וטכניקות צנטריפוגה שיפוע צפיפות ומנוצל לאחר מכן בטיפולים בתאים מבוססים עצמיים. כתוצאה מכך, מקורות אחרים של תאים, כגון השימוש בNSCs העוברי או מבשרים עצביים הנגזר מEMBתאי גזע ryonic נחקרו בהרחבה במחלות בעלי חיים ומודלי פציעה בדרגות שונות של הצלחה 15 של. טכנולוגיות תא גזע pluripotent מושרה ניצול מקורות תא סומטי להציע עוד שדרת פוטנציאל לייצור טיפולים מבוססי תאים שימושיים טיפולית למגוון רחב של יישומים, להתגבר על הזמינות המוגבלת ודאגות אתיות בנוגע לשימוש בתאים עובריים וברקמות עובריות 16. עם זאת, תרגום קליני של ממצאים אלה הוכיח להיות משימה קשה, כפי שמודגם במאבקים של טיפול במצבים נוירולוגיים שונים עם טיפול מבוסס-SC גישות 17,18, כמו גם במסלול מפותל לאישור רגולטורים. כגישה חלופית, הקדמה של טיפולים תרופתיים ספציפיים יכולה לווסת את מספרי המל"ל ולהקל על התאוששות במודלים של המחלה ושבץ 19 פרקינסון. לא משנה מה האסטרטגיה יכולה להיות, הבנה כיצד לתפעל ביעילות את התאים האלהדורש מערכת נגישה במבחנה.

תרבויות של NSCs יכולות להתבצע גם כתרבויות כוללת, הידוע גם neurospheres, או כmonolayer 8,20. שני הטכניקות היו בשימוש נרחב, המאפשרות את הקמתה של תנאים מוגדרים תרבות, כלומר שימוש בעוריות Growth Factor (EGF) או בסיסי פיברובלסטים Growth Factor (bFGF) כמקור mitogen, המספקים להרחבה של מבשרי multipotent. בעוד תרבויות neurosphere עשויות להיות מתאימות יותר ללימוד יכולת התפשטות משובט של סוג תא מבודד, המערכת הוכח לייצר אוכלוסייה מעורבת של תאים במהלך התרחבות 21. בנוסף, המבנה הסגור של neurospheres עושה מניפולציה תרופתית של התאים לא מעשית, ואת הפרשנות של ההשפעה עשויים להיות גורמים אלה יכול להיות מבולבל בשל microenvironment הוקם בתוך neurosphere עצמו. תרבויות חד שכבתי, לעומת זאת, יכולות להיותמועסק במסכי תפוקה גבוהה של ספריות מולקולה קטנות, המספק כלי רב עוצמה כדי לחקור את מנגנוני העברת אותות המווסתים את הגדילה והתמיינות SC ופותח את ההזדמנות לגלות תרכובות רומן שמתמקדים אוכלוסיית תא זה.

כתוצאה מכך, את היכולת ליצור reproducibly תרבויות של NSCs המבוגר מאזורים השונים של עניין במוח יכולה לשמש במגוון רחב של יישומי מחקר, החל ממחקרים התפתחותיים של מערכת העצבים המרכזית (CNS) לחקר גישות רפואת רגנרטיבית רומן . הפרוטוקול המובא כאן ממחיש כיצד לנתח ולהעריך את פוטנציאל ההתמיינות של SCS CNS מבודד מהמוח המכרסם המבוגר.

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

פרוטוקול

העבודה שומרת על מגילת Helsinski והצהרת בעלי החיים ארוו. בעלי חיים המשמשים לאיסוף רקמות וכל השיטות הרלוונטיות היו במעקב על פי ההנחיות של מתקן בעלי החיים באוניברסיטת דרזדן. בעלי חיים טופלו ושוכנו על פי ההנחיות פדרלי הגרמנית לשימוש וטיפול בבעלי חיים במעבדה, והמחקר אושר על ידי דרזדן Landesdirektion. נא להתייעץ עם המדיניות של המוסד שלך וטרינרים (IACUC או לוח אחר) אודות המתודולוגיה המתת חסד מתאימה.

ניתן למצוא מניות ספציפיות וריכוזים של חומרים כימיים עבודה בלוחות מגיב מלווים בפרוטוקול זה.

1. הכנת צלחת תרבות

  1. מנות מעילים עם נפח מספיק של 75 מיקרוגרם / מיליליטר פולי-L-ornithine (כלומר 2 / טוב מיליליטר של צלחת 6 היטב) לילה בחממת תרבות תא 2 ימים לפני המועד המתוכנן לנתיחה.
  2. לשאוב פולי-L-ornithine למחרת ולשטוף היטב כל אחד 2x עם 3 מיליליטר של PBS במשך 5 דקות.
  3. הסר את לשטוף הסופי, ולאחר מכן להוסיף פיברונקטין (בדילול 1:250, 4 מיקרוגרם / מיליליטר PBS) לצלחת ומניח את הכלים באינקובטור במשך לילה.
  4. לשאוב פיברונקטין ביום לנתיחה ולשטוף את הכלים 2X עם PBS. החזר את הצלחות עדיין מכילות PBS הסופי לשטוף לחממה עד הרקמה ניתק מוכנה לculturing. באותו זמן, להסיר את PBS לפני ציפוי הרקמה.
  5. צלחות חנות מצופות פולי-L-ornithinein החממה לתקופה של עד 3 שבועות. צלחות מצופים פיברונקטין יכולות להיות מאוחסנות במשך שבוע עד 1. ציפוי פיברונקטין יכול להיעשות קטן כמו 2 שעות אם דחוף. פיברונקטין הוא רגיש denaturation; לא להתסיס את הפתרון, או שמנות להתייבש.

2. נתיחה / ציפוי

  1. פרוטוקול זה חל על השימוש של 3 חולדות מבוגרים (3-6 חודשים של גיל).
  2. צ'ילl מוח חתך בלוק על קרח לפני והרדמת חסד החולדה.
  3. הנח צינור פלקון 15 מיליליטר המכיל 5 מיליליטר של מדיום N2 עם bFGF הוסיף על קרח.
  4. להרדים את החולדות על פי מדיניות וטרינרי המוסד שלך.
  5. הסר את המוח מהגולגולת על ידי ביצוע חתך את קו האמצע של הראש. שימוש במלקחיים כדי לקלף את העצם ומאפשר למוח להיות מופק בזהירות.
  6. מניחים את המוח לתוך צלחת פטרי המכילה 10 סנטימטר קר כקרח PBS. זו תסיר את כל שיער ודם שיורית. (איור 1 א)
  7. מניחים את המוח לבלוק חתך הצונן. (איור 1)
  8. הכנס סכין גילוח הנקי חדש אחד לבלוק כמו בתמונה באיור 1 ג.
  9. הכנס הזנב מ"מ שני גילוח נקי להב 3 לראשון כפי שמודגם באיור 1D.
  10. רם בזהירות את הלהבים מהבלוק, לוקח איתם את החלק של ריבית.
  11. תהלוכה שניותtion את הלהב על ידי טבילתו בPBS. (איור 1E)
  12. רקמת קציר מהאזור של עניין (בדוגמא זו השתמשנו בהשליך קדמי, (ACA הקדמי), איור 1F) באמצעות # 5 מלקחיים ולאסוף לתוך צינור חרוטי 15 מיליליטר מכיל בינוני N2 1 מיליליטר המכיל bFGF.
  13. העבר את הצינור לתוך מכסה המנוע הזרימה למינרית תרבות תא, בהמשך לשאר הפרוטוקול בתנאים סטריליים.
  14. מכאני לנתק את הרקמות באמצעות פיפטה קצה מיליליטר 1 המצורף לpipettor P1000. כמה פעמים פיפטה מעלה ומטה (כ 20x בשיעור של מחזור pipetting 1 לשנייה) תוך כדי לחיצה על הפתיחה של קצה פיפטה נגד החלק התחתון של צינור חרוטי (איורים 1G 1-3). תפסיק טחינה דקה כאשר הפתרון הופך להיות הומוגנית.
  15. אפשר הפתרון לשבת במשך 2 דקות, כדי לאפשר את כל רקמת nondissociated גדולה יותר כדי ליישב לתחתית. (איור 1G 4)
  16. לאסוף homogensupernatant eous ומקום לתוך צינור חרוטי המכיל 8.5 מיליליטר של תקשורת N2 תוספת 20 bFGF ng / ml, 500 Dll4 מיליליטר / ng, 500 ng / ml Ang2, ו200 nMJAK מונעי.
  17. צלחת אותם ל 3 בארות של צלחת 6 היטב באמצעות 3 מיליליטר של תמיסה מדוללת תא / כן.
  18. מניחים את הצלחת לתוך תא חממת humidified על 37 מעלות צלזיוס, 5% CO 2, 5% O 2.

3. טיפול יומי

  1. החלף את המדיום על מנות התרבות עם N2 בינוני מכילות bFGF, Ang2, Dll4, וJAK מעכב 24 שעות לאחר ציפוי.
  2. להוסיף בולוס של bFGF, Dll4, Ang2, ומעכב JAK ביום שלמחרת.
  3. המשך בתהליך מתחלף זה של שינויים בתקשורת ותוספות גורם עבור סכום כולל של 10-14 ימים.

4. אינדוקציה של בידול

  1. לסגת bFGF, Dll4, Ang2, ומעכב JAK מכיל בינוני ולהחליף אותו עם מדיום N2 שאינו מכיל גורמים נוספים בכל.
  2. לשנות את המדיום כל יום שני.
  3. תקן את התאים לאחר 10 ימים ולבצע immunocytochemistry.

5. איתור Immunocytochemical

  1. לשאוב את המדיום ולתקן צלחות תרבית תאים עם 2 מיליליטר של paraformaldehyde 4% עבור 20 דקות.
  2. לשטוף 2x עם 3 מיליליטר של PBS במשך 5 דקות כל אחד.
  3. לשאוב PBS, אז permeabilize ולחסום את התאים על ידי הוספת 2 מיליליטר של PBS המכיל 5% בסרום נורמלי חמור (NDS) ו0.1% טריטון X-100 עבור 20 דקות.
  4. מכין את תערובת הנוגדן העיקרית PBS המכילה 5% של NDS. נוגדן אנטי nestin יכול לשמש לזיהוי SCS, תוך Tuj1 (כיתה השלישית β-טובולין), ניתן להשתמש בם נוגדני GFAP, וCNPase יחד לצביעה משולשת של סמני בידול.
  5. לשאוב את פתרון החסימה ולהוסיף 1.5 מיליליטר של תערובת הנוגדן הראשונית היטב כל אחד. דגירה בטמפרטורת חדר למשך 90 דקות.
  6. הסר את הנוגדנים הראשוניים ולשטוף 2x עם 3 מיליליטר של PBS, ו1X עם 3 מיליליטר של PBS המכיל 5% NDS במשך 5 דקות כל אחד.
  7. Preparדואר הנוגדנים משני בPBS המכילים 5% של NDS.
  8. לשאוב את לשטוף הסופי ולהוסיף 1.5 מיליליטר של פתרון נוגדנים משני היטב כל אחד. דגירה בחושך במשך 40 דקות בטמפרטורת חדר.
  9. הסר את פתרון נוגדנים משני ולהוסיף 2 מיליליטר של כתם DAPI מוכן טרי (500 / מיליליטר ng PBS). דגירה במשך 3 דקות.
  10. לשאוב את פתרון DAPI לאחר מכן לשטוף 3x עם 3 מיליליטר של PBS במשך 5 דקות כל אחד. כעת ניתן דמיינו התאים באמצעות מיקרוסקופ פלואורסצנטי.

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

תוצאות

זיהוי האזור של עניין שממנו לקצור תאי גזע עצביים הוא הצעד הראשון הקריטי ויגדיר את משך זמן שנדרש כדי לקבל צלחת ומחוברות של תאים. לדוגמא, SVZ הוא אזור נוירוגנית קלאסי ולכן יש חלקם יחסי גבוה יותר של תאי גזע עצביים. עם זאת, הטכניקה שהוצגה כאן ניתן להשתמש באזורים אחרים לא לעתים קרובות מוכרים כבעל פוטנציאל עצבי חזק במהלך הבגרות. למטרות פרוטוקול זה, אנו משמשים השלכנו הקדמי (חלק קדמי). בעוד שחלק מהתאים והפסולת יישבו על ציפוי, הבינוני יהיה בדרך כלל להישאר עכור כתוצאה מכמות החומר תאי שהיא טח...

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

דיון

רבים מהשלבים קריטיים לבידוד מוצלח, הרחבה, והתמיינות של תאי גזע עצביים מהמוח הבוגר משותפים במשותף עם טכניקות תרבות תקן רקמות. המטרה לזכור היא שNSCs מבודד מהמוח המבוגר צריך לשמור על כמה שיותר מin vivo המאפיינים שלהם ככל האפשר (איור 2J). לעתים קרובות איזון בין זהירות ראויה ומהירות מתאימה צריך להיות פגע. אכפת לי עם הבידוד של המוח מהגולגולת יעשה זיהוי של האזור של עניין קל יותר באופן משמעותי. הסרת הרקמה במהירות אפשרית הבאים euthanization בעלי החיים, ושמירה על ק...

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

גילויים

יש לנו מה למסור.

תודות

עבודה זו מומנה (בחלקו) על ידי הלמהולץ ברית ICEMED - ההדמיה וריפוי מחלות מטבוליות הסביבה, באמצעות קרן היוזמה והרשת של הלמהולץ האיגוד, מענק מKroener-Fresenius הקרן אחרת, ומענק מForschungsgemeinschaft דויטשה ( SFB 655: תאים לרקמות).

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

חומרים

רשימת החומרים שנעשה בהם שימוש במאמר זה
שםחברהמספר קטלוגהערות
צלחות תרבית רקמה 6 בארותBD Biosciences353934
פולי-L-אורניתיןסיגמא-אולדריץ'P-3655

5 מ"ג/מ"ל תמיסת מלאי שהוכנה במים מזוקקים כפולים (יציבה במשך מספר חודשים ב-20 מעלות; C).

ריכוז עבודה 0.5 מ"ג/מ"ל במים (יציב למשך חודש ב-4 מעלות; C).

פיברונקטיןR& D Systems1030-Fnאל תעורר תמיסת מלאי
מכשיר סינוןקורנינג מדעי החיים430769
DMEM/F-12Mediatech10-090-CVראה הערה למטה להכנת מדיה N2 מלאה
Apo-transferrinSigma-AldrichT-2036
אינסוליןSigma-AldrichI-0516
PutrescineSigma-AldrichP-5780פתרון מלאי 1 M ב-ddH2O (יציב ב-20 מעלות; C למשך 6 חודשים)
נתרן סלניטסיגמא-אולדריץ'S-5261500 ומיקרו; תמיסת מלאי M ב-ddH2O (יציב ב-20 ° C למשך 6 חודשים)
פרוגסטרוןסיגמא-אולדריץ'P-8783100 ומיקרו; תמיסת מלאי M באתנול (יציב ב-20° C למשך 6 חודשים)
פניצילין/סטרפטומיציןInvitrogen15140-122
פוספט חוצץ מי מלחMediatech21-040-CV
גורם גדילה פיברובלסטים בסיסי (bFGF)R& D Systems233-FBריכוז עבודה 20 ng/ml 
דלתא4 (Dll4)מו"פ D Systems1389-D4ריכוז עבודה  500 ננוגרם/מ"ל
אנגיופואטין 2 (Ang2)R& D Systems623-ANריכוז עבודה  500 ננוגרם/מ"ל
מעכב JAKCalbiochem420099ריכוז עבודה 200 ננומטר 
סרום בקר אלבומיןסיגמא-אולדריץ'A-2058
צינורות חרוטיים של 15 ו-50 מ"לקורנינג מדעי החיים430053, 430829
פריטים נחוצים אחרים כוללים: מכשירי דיסקציה כלליים, כולל סכין גילוח ומלקחיים, חולדה בוגרת (בת 3-6 חודשים; Sprague-Dawley או Long Evans), תא שיכרון CO2, מכסה זרימה למינרי לתרבית תאים ואינקובטור אינקובטור (לחות, 37 & deg; C, 5% CO<תת>2, 5% O2). הערה: להכנת מדיה N2 מלאה, לבקבוק אחד של DMEM/F-12 (500 מ"ל) יש להוסיף 0.05 גרם אפוטרנספרין, 0.0125 גרם אינסולין (מומס טרי ב-1 מ"ל של 10 מ"מ NaOH), 50 μ l של putrescine, 30 μ L של נתרן סלניט, 100 μ l של מלאי פרוגסטרון, ו-5 מ"ל של תמיסת פניצילין/סטרפטומיצין.  התאם את ה-pH ל-7.2, במידת הצורך. יש לסנן ולעקר ולאחסן בטמפרטורה של 4 מעלות; C עד 3 שבועות ולהגן מפני אור.
טבלת ריאגנטים אימונופלואורסצנטיים
Paraformaldehydeמדעי מיקרוסקופיה אלקטרונית15719
סרום חמור רגיל (NDS)סיגמא-אולדריץ'D-9663
טריטון X-100סיגמא-אולדריץ'T-8787
4,6-דיאמידינו-2-פנילינדול (DAPI)סיגמא-אולדריץ'D-8417מלאי 5 מ"ג/מ"ל תמיסה במתנול
טבלת נוגדנים ראשונית
NestinChemiconMAB353

גורם דילול: 1:400

מין: עכבר IgG1

Hes3Santa Cruzsc-25393

גורם דילול: 1:100

מין: ארנב IgG

Sox2R& D SystemsMAB2018

גורם דילול: 1:100

מין: עכבר IgG2a

CNPaseChemiconMAB326

גורם דילול: 1:200

מין: עכבר IgG1

β-tubulin III (TUJ1)R& D SystemsMAB1195

גורם דילול: 1:500

מין: עכבר IgG2a

חלבון חומצי סיבי גליה (GFAP)Dako North AmericaZ0334

גורם דילול 1:500

מינים: ארנב

טבלת נוגדנים משנית
Alexa    568InvitrogenA-21124

גורם דילול: 1:200

מין: עז נגד עכבר IgG1

Alexa 488InvitrogenA-21131

גורם דילול: 1:200

מין: עז נגד עכבר IgG2a

Cy5Jackson ImmunoResearch59883

גורם דילול: 1:200

מין: עז נגד ארנב

מקורות

  1. Cajal, R. Y. Comparative Study of Sensory Areas of the Human Cortex. , Harvard University. (1899).
  2. Altman, J., Das, G. D. Autoradiographic and histological evidence of postnatal hippocampal neurogenesis in rats. J. Comp. Neurol. 124, 319-335 (1965).
  3. Kaplan, M. S., Hinds, J. W. Neurogenesis in the adult rat: electron microscopic analysis of light radioautographs. Science. 197, 1092-1094 (1977).
  4. Nottebohm, F. Neuronal replacement in adulthood. Ann. N.Y. Acad. Sci. 457, 143-161 (1985).
  5. Gould, E., Reeves, A. J., Graziano, M. S., Gross, C. G. Neurogenesis in the neocortex of adult primates. Science. 286, 548-552 (1999).
  6. Kornack, D. R., Rakic, P. Continuation of neurogenesis in the hippocampus of the adult macaque monkey. Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 96, 5768-5773 (1999).
  7. Alvarez-Buylla, A., Kohwi, M., Nguyen, T. M., Merkle, F. T. The heterogeneity of adult neural stem cells and the emerging complexity of their niche. Cold Spring Harb. Symp. Quant. Biol. 73, 357-365 (2008).
  8. Reynolds, B. A., Weiss, S. Generation of neurons and astrocytes from isolated cells of the adult mammalian central nervous system. Science. 255, 1707-1710 (1992).
  9. Luskin, M. B. Restricted proliferation and migration of postnatally generated neurons derived from the forebrain subventricular zone. Neuron. 11, 173-189 (1993).
  10. Lendahl, U., Zimmerman, L. B., McKay, R. D. CNS stem cells express a new class of intermediate filament protein. Cell. 60, 585-595 (1990).
  11. Androutsellis-Theotokis, A., et al. Targeting neural precursors in the adult brain rescues injured dopamine neurons. Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 106, 13570-13575 (2009).
  12. Jin, K., et al. Neurogenesis in dentate subgranular zone and rostral subventricular zone after focal cerebral ischemia in the rat. Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 98, 4710-4715 (2001).
  13. Zhang, R. L., Zhang, Z. G., Chopp, M. Ischemic stroke and neurogenesis in the subventricular zone. Neuropharmacology. 55, 345-352 (2008).
  14. Caplan, A. I. Why are MSCs therapeutic? New data: new insight. J. Pathol. 217, 318-324 (2009).
  15. Goldman, S. Stem and progenitor cell-based therapy of the human central nervous system. Nat. Biotechnol. 23, 862-871 (2005).
  16. Sun, N., Longaker, M. T., Wu, J. C. Human iPS cell-based therapy: considerations before clinical applications. Cell Cycle. 9, 880-885 (2010).
  17. Amariglio, N., et al. Donor-derived brain tumor following neural stem cell transplantation in an ataxia telangiectasia patient. PLoS Med. 6, e1000029(2009).
  18. Lindvall, O., Bjorklund, A. Cell therapeutics in Parkinson's disease. Neurotherapeutics. 8, 539-548 (2011).
  19. Kittappa, R., Bornstein, S. R., Androutsellis-Theotokis, A. The Role of eNSCs in Neurodegenerative Disease. Mo.l Neurobiol. , (2012).
  20. Cattaneo, E., McKay, R. Identifying and manipulating neuronal stem cells. Trends Neurosci. 14, 338-340 (1991).
  21. Jensen, J. B., Parmar, M. Strengths and limitations of the neurosphere culture system. Mol. Neurobiol. 34, 153-161 (2006).
  22. Duarte, A., et al. Dosage-sensitive requirement for mouse Dll4 in artery development. Genes Dev. 18, 2474-2478 (2004).
  23. Maisonpierre, P. C., et al. Angiopoietin-2, a natural antagonist for Tie2 that disrupts in vivo angiogenesis. Science. 277, 55-60 (1997).
  24. Androutsellis-Theotokis, A., et al. Notch signalling regulates stem cell numbers in vitro and in vivo. Nature. 442, 823-826 (2006).
  25. Alderson, R. F., Alterman, A. L., Barde, Y. A., Lindsay, R. M. Brain-derived neurotrophic factor increases survival and differentiated functions of rat septal cholinergic neurons in culture. Neuron. 5, 297-306 (1990).
  26. Johe, K. K., Hazel, T. G., Muller, T., Dugich-Djordjevic, M. M., McKay, R. D. Single factors direct the differentiation of stem cells from the fetal and adult central nervous system. Genes Dev. 10, 3129-3140 (1996).
  27. Ourednik, J., Ourednik, V., Lynch, W. P., Schachner, M., Snyder, E. Y. Neural stem cells display an inherent mechanism for rescuing dysfunctional neurons. Nat. Biotechnol. 20, 1103-1110 (2002).
  28. Ryu, J. K., Cho, T., Wang, Y. T., McLarnon, J. G. Neural progenitor cells attenuate inflammatory reactivity and neuronal loss in an animal model of inflamed AD brain. J. Neuroinflammation. 6, 39(2009).
  29. Androutsellis-Theotokis, A., et al. Angiogenic factors stimulate growth of adult neural stem cells. PLoS One. 5, e9414(2010).
  30. Park, D. M., et al. Hes3 regulates cell number in cultures from glioblastoma multiforme with stem cell characteristics. Sci. Rep. 3, 1095-1010 (2013).
  31. Poser, S. W., et al. Ch. 5. Cancer Stem Cells - The Cutting. Shostak, S. , InTech. Europe, Rijeka, Croatia. 89-110 (2011).
  32. Androutsellis-Theotokis, A., Rueger, M. A., Mkhikian, H., Korb, E., McKay, R. D. Signaling pathways controlling neural stem cells slow progressive brain disease. Cold Spring Harb. Symp. Quant. Biol. 73, 403-410 (2008).

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

הדפסות חוזרות והרשאות

בקש הרשאה לשימוש חוזר בטקסט או באיורים של מאמר JoVE זה

בקש הרשאה

תגיות

Poly L OrnithineFGF

מאמרים קשורים