מאמר שיטה

מח עצם נגזרות Macrophage הפקה

DOI:

10.3791/50966

⸱

22 בנובמבר 2013

 ,  ,  ,  ,  , 
1CNRS UMR 7278, IRD198, INSERM U1095, Aix-Marseille Université, 2Department of Molecular Medicine and Medical Biotechnology, University of Naples "Federico II"

במאמר זה

סיכום

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

המקרופאגים כבר מזמן מוכרים כמרכיב קריטי של תגובות חיסון המולדת ובעלי כושר הסתגלות. הפיצוץ האחרון של ידע הנוגע להיבטים אבולוציוניים, גנטיים, והביוכימי של האינטראקציה בין מקרופגים וחיידקים חידש את תשומת לב מדעית למקרופאגים. מאמר זה מתאר שיטה להבדיל מקרופאגים ממח העצם של עכבר.

תקציר

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

המקרופאגים הם רכיבים קריטיים של תגובות חיסון המולדת ובעלי כושר הסתגלות, והם קו הגנה הראשון נגד פולשים זרים בשל פעילות microbicidal החזקה שלהם. המקרופאגים מופצים באופן נרחב בכל הגוף ונמצאים באיברים הלימפה, כבד, ריאות, מערכת עיכול, מערכת עצבים מרכזית, עצם, ועור. בגלל חלוקה מחודשת שלהם, הם משתתפים במגוון רחב של תהליכים פיסיולוגיים ופתולוגיים. המקרופאגים הם תאים תכליתיים מאוד שהם מסוגלים לזהות שינויי microenvironmental ולשמור על הומאוסטזיס רקמות. פתוגנים רבים התפתחו מנגנונים להשתמש מקרופאגים כמו סוסים טרויאניים כדי לשרוד, לשכפל, ולהדביק גם בני אדם ובעלי חיים ולהפיץ בכל הגוף. הפיצוץ האחרון של עניין בהיבטים אבולוציוניים, גנטיים, והביוכימי של אינטראקציות בין המאכסן לפתוגן חידש את תשומת לב מדעית לגבי מקרופאגים. כאן, אנו מתאריםהליך לבודד ולטפח מקרופאגים ממח עצם עכברי שיספק מספר גדול של מקרופאגים לחקר אינטראקציות בין המאכסן לפתוגן, כמו גם תהליכים אחרים.

מבוא

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

היבט משמעותי של תפקוד מקרופאג הוא תפקידם בחסינות מולדת ובעלי כושר הסתגלות. בגלל היכולת שלהם phagocytose חלקיקים, חיידקים או טפילי אינרטי, מקרופאגים הם קו הגנה ראשון נגד פולשים זרים. הפנים פעם, חיידקים מפורקים בתוך phagolysosomes. המקרופאגים גם לשלוח אותות גיוס ולאנטיגנים הווה לתאים אחרים של מערכת חיסון, כגון לימפוציטים מסוג T. המקרופאגים נגזרים ממונוציטים. מונוציטים מתעוררים במח עצם מתאי גזע מיאלואידית ולהגר לדם היקפי ורקמות שונות שבו הם להתמיין מקרופאגים. הערכה היא כי בעכבר בוגר ובריא מכיל כ 10 8 מקרופאגים שמופצים בכל הגוף באיברים שונים ורקמות (טבלה 1) 1,2. המקרופאגים להציג פנוטיפי גדול ומגוון תפקודי בגלל היכולת שלהם להסתגל ל3,4 microenvironment שלהם. Macrop החשוב ביותררכוש Hage הוא פעילות microbicidal שלהם, אשר מוגדרת על ידי היכולת שלהם phagocytose חיידקים ולהשמיד אותם. תגובת phagocytic מוגדרת על ידי ההפעלה של רשתות איתות מורכבות שהם מגורה על ידי מגע של חיידקים, ולכן, מקרופאגים לווסת ביטוי גנים כראוי בתגובה לגירויים שונים. לאחר phagocytosis, חיידקים בוטלו במבנה שנקרא phagolysosome, עם זאת, רבים חיידקים פתוגניים פיתחו אסטרטגיות לערער את תפקוד microbicidal של מקרופאגים 5. המגוון של מנגנוני חתרנות שמנוצלים על ידי מינים של חיידקים שונים הוא עדות למורכבות תהליך phagocytic 6 וphagolysosome biogenesis. מחלות זיהומיות הן בעיות בריאות אדם גדולות, ומספר רבים של מנגנונים ומולקולות להשתתף בפעילויות מיקרוביאלית מקרופאג. יתר על כן, המטרות של מאפייני microbicidal שנחטפו על ידי חיידקים אינן ידועות, ולכן, יש דוארxplosion עניין בהיבטים אבולוציוניים, גנטיים, והביוכימי של אינטראקציות בין מאכסן לפתוגן שחדש את תשומת לב מדעית לגבי מקרופאגים. נכון לעכשיו, מרבית המחקר בתחום נעשה על שורות תאי מקרופאגים, אשר נבדלות ממקרופאגים העיקריים בפעילות phagocytic, ייצור ציטוקינים והרגולציה של פרץ חמצוני. בנוסף, הם פחות מתאימים למיקרוסקופ. כדי לחקור את מקרופאגים-פתוגנים האינטראקציה מומלץ להשתמש מקרופאגים עיקריים, כגון המקרופאגים מח העצם נגזרו (BMDMs), שמפגינים תכונות פיסיולוגיות יותר. יתר על כן, זה אפשרי לעבוד על BMDMs מהונדס גנטי, כי מקרופאגים אלו עשויים להיות מבודדים ישירות מעכברים הטרנסגניים ו, ​​עם הזמינות של טכנולוגיות חדישות כגון transfection lentiviral, פרופיל ביטוי הגנים שלהם ניתן לשנות על ידי ביטוי יתר של גן או התערבות RNA. כאן אנו מתארים הליך להבדיל מ 'עצם Murineחץ לתוך מקרופאגים שיספק מספר גדול של מקרופאגים ב -7 ימים לשונים פונקציונלי ניתוחים כגון פרוטאומיקה 7, transcriptomics 8, סחר תאיים מלומד 9 מחקרים, דינמיים 10, מסכי גנטיים (RNAi) וסמי הקרנת 11.

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

פרוטוקול

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

הצהרת אתיקה

הפרוטוקול לטיפול בבעלי חיים אושר על ידי ועדת האתיקה של בעלי החיים "גיבוש דה Conseil Scientifique מרכז du et de משוכלל ונדיר הניסויי מדיקו-Chirurgical" המוסדי שלנו (CFREMC, היתר פרויקט 10-300,122,013 לאריק Ghigo) מאוניברסיטת Aix-Marseille בקנה אחד עם הכללים של Décret N ° 87-848 של 1987/10/19. הניסויים בוצעו בFaculté דה לרפואת de la Timone (מספר היתר ניסויים 13.385 לאריק Ghigo).

1. חומר ותרבות מדיה הכנה

  1. לעקר שני מלקחיים, שני מספריים, שני להבי כירורגים, מכתש ועלי.
  2. השג DMEM מלא המכיל 10% עוברי עגל בסרום (FCS), 2 גלוטמין מ"מ, 100 U / ml פניצילין ו100 מיקרוגרם / מיליליטר סטרפטומיצין.
  3. לדלל 10x PBS במי distillated סטרילי כדי להשיג PBS 1X.
  4. השג קר כקרח 1x PBS, DMEM מלא קר כקרח, ווא DMEM המלאrmed 37 ° C.

2. הכנת L929 Supernatants הסלולרי

  1. לגדול L929 תאים למפגש (עשרים 175 סנטימטר 2 צלוחיות) בDMEM המלא על 37 מעלות צלזיוס, 5% CO 2.

הערה: המושבה granulocyte-macrophage גירוי גורם (GM-CSF) נדרש כדי לגרום להתמיינות תאי hematopoietic מקרופאגים 12. L929 תאים לייצר GM-CSF.

  1. בנקודת מפגש, להחליף תקשורת ותרבות עם DMEM להשלים טרי. העבר את צלוחיות ל32 מעלות צלזיוס, 5% CO 2 למשך 10 ימים.
  2. לאסוף, בריכה וצנטריפוגות supernatants ב750 XG 10 דקות. השלך כדורי תא.
  3. supernatants חנות ב15 צינורות מיליליטר ולאחסן ב -20 ° C.

3. מח עצם נגזרות Macrophage (BMDM) הכנה

  1. להקריב את העכבר 1 על ידי נקע בצוואר הרחם.
    1. השתמש בסכין כירורגית סטרילי לאורך כל הניסוי. לחטא את העור עם alco 70%חול. עושה חתך בחלק העליון של כל רגל אחורית ולמשוך למטה את העור לכיוון כף הרגל כדי לחשוף את השריר.
    2. חותכים את רגליו האחוריות, להסיר את העור עם מספריים סטריליים ומלקחיים סטריליות. הנח את הרגליים בתוך צלחת פטרי סטרילית (35/10 מ"מ) המכילה סטרילי, קר כקרח 1x PBS (5 מיליליטר).
    3. הסר את הבשר ושרירים ההקפדה על העצמות עם מספריים ומלקחיים סטריליות.
  2. מעביר את העצמות לתוך צלחת חדשה, סטרילי פטרי (35/10 מ"מ) המכילה קר כקרח, 1x PBS סטרילי (5 מיליליטר). שטוף את העצמות שתי פעמים עם 5 מיליליטר קר כקרח, 1x PBS סטרילית.
  3. העבר את העצם לתוך מרגמה סטרילי המכילה 5 מיליליטר קר כקרח, 1x PBS סטרילית.
  4. חותכים את עצם השוק מעצם הירך במפרק עם מספריים סטריליים. לרסק את העצמות בעדינות במכתש סטרילי המכיל 5 מיליליטר קר כקרח, 1x PBS סטרילית באמצעות העלי.
  5. לאסוף את supernatant ב15 צינורות מיליליטר קר כקרח. חזור 3x שלב זה.
  6. לסנן דרך stra תא ניילון 70 מיקרומטרINER להסיר שברים מוצקים. צנטריפוגה התסנין ב450 XG 10 דקות ב 4 ° C.
  7. בעדינות זורקי supernatant. לנתק את גלולה ב10 מיליליטר חיץ תמוגה תא דם האדום ל30 שניות. הוסף 20, DMEM מלא קר כקרח מיליליטר.

הערה: המטרה של שלב זה היא להסיר לזהם כדוריות דם אדומים, ולכן יש לבצע שלב זה תוך 2 דקות, כדי למנוע שינוי תא hematopoietic ידי חיץ תמוגה תא הדם האדום.

  1. צנטריפוגה ב XG 450 10 דקות ב 4 ° C. בעדינות זורקי supernatant. לנתק את גלולה ב20 מיליליטר DMEM מלא כי כבר חימם ל37 ° C.
  2. להעביר את התאים ניתקו לתוך 2 צלחות פטרי (100/20 מ"מ). דגירה אותם במשך 4 שעות ב 37 ° C.
  3. לאסוף supernatants ב50 מיליליטר צינורות בטמפרטורת חדר. מחק את המנות המכילות מקרופאגים תושב.

הערה: המטרה של שלב זה היא לחסל את Marro עצם תושבמקרופאגים w ידי היכולת שלהם לדבוק בפלסטיק שטופלה בתרבות. מקרופאגים תושב אלה עשויים לשמש בניסויים אחרים.

  1. צנטריפוגה supernatants נאסף ב450 XG 10 דקות ב 4 ° C. בטל supernatant.
  2. לנתק בעדינות את הכדור ב10 מיליליטר DMEM מלא המכיל 15% L929 supernatant תא. סנן את התאים דרך מסננת תא ניילון 40 מיקרומטר.
  3. לשחזר את התסנין. הוסף את התסנין שנאסף (10 מיליליטר) ל140 מיליליטר DMEM השלם שכבר השלים עם 15% L929 תקשורת סלולרי.
  4. הפץ 10 מיליליטר של ההשעיה התא לכל צלחת פטרי (15 צלחות פטרי, 100/20 מ"מ). דגירה התאים ב 37 מעלות צלזיוס, 5% CO 2.
  5. לגדל תאים במשך 3 ימים
  6. הוסף 10 מיליליטר DMEM השלם שכבר השלים עם 15% L929. דגירה תאים למשך 4 ימים נוספים.

הערה: צג צמיחת תאים מעת לעת עם מיקרוסקופ הפוכה (שלבים 3.14-3.16). מקרופאגים חסיד יהיונצפה לאחר 3 ימים של התרבות.

4. BMDMs קצירה

  1. הסר את supernatant. שטוף BMDMs 2 פעמים עם DMEM המלא
  2. הוסף 5 מיליליטר DMEM המלא כי כבר חימם ל37 ° C. ניתוק BMDMs בעדינות על ידי גירוד עם שוטר גומי.
  3. לאסוף BMDMs ב50 צינורות מיליליטר ו צנטריפוגות ב XG 450 10 דקות. בעדינות לנתק את כדורי תא ב20 מיליליטר DMEM המלא.
  4. רוזן BMDMs בנוכחות trypan הכחול (אין תמותה יותר מ -10% יש לשים לב).

הערה: באופן כללי, כ 6-7.5 x 10 7 מקרופאגים מתקבלים מ15 צלחות פטרי (100/20 מ"מ) של מקרופאגים. ישנם כ 4-5 x 10 6 מקרופאגים / צלחת פטרי (100/20 מ"מ).

  1. הכן BMDMs כנדרש לצורך הניסוי. לאחר 16 שעות בתקשורת מלאה על 37 מעלות צלזיוס, 5% CO 2, מקרופאגים שוב לדבוק בתמיכה.

5. אחסון BMDMs

  1. לאסוף BMDMs המבודד (שלב 4.3). צנטריפוגה ב XG 450 10 דקות. הערה: BMDMs עשוי להיות קפוא בחנקן נוזלי.
  2. כדורי תא גלול בהקפאת תקשורת בהיקף של DMSO 10% וFCS 90% בריכוז סופי של 4 x 10 6 תאים / מיליליטר ו פיפטה 1 מיליליטר לכל מבחנה.
  3. להקפיא את התאים בקצב קירור של 1 ° C / min. לאחר 24 שעות, להעביר את אמפולה למכל חנקן נוזלי לאחסון לטווח ארוך.

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

תוצאות

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

מטרתה של שיטה זו הייתה להשיג בקלות מספר גדול של מקרופאגים בכמה ימים. הכנת תא מח העצם מודגמת באיור 1. עצמות מהרגל האחורית נאספו וניפצו במכתש. ברגע שמקרופאגים תושב הוצאו מהכנת התא במח העצם, תאי מח עצם הודגרו עם GM-CSF (יום 0). לאחר 3 ימים, התאים, שהיו עגולים nonadherent ולפני התרבות, מתחילים להתמיין למקרופאגים ולדבוק (איור 1 א). ניתוח cytometry באמצעות F4/80 וסמני HLA-DR חשפו כי תאים ביטאו שני סמנים ובכך להוכיח שהם מובחנים למקרופאגים (איור 1...

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

דיון

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

הפרוטוקול המתואר במסמך זה מפרט את שיטה להפקת כמויות גדולות של BMDMs. BMDM הם תאים ראשוניים ויש לי את הפונקציה ותכונות של מקרופאגים מובחנים ממונוציטים ביולוגיים כי יש בוגרים, בניגוד לשורות תאי מקרופאג, שהם לא בשלים. BMDMs עשוי לשמש לסינון גנטי (RNAi), הקרנת סמים, מחקרים פונקציונליים, מחקרי אינטראקציה המאכסן לפתוגן ותחומים רבים אחרים של חקירה.

ההליך המוצג כאן הוא פשוט מאוד ואינו דורש שום ציוד מיוחד, ולכן הוא יכול ל...

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

גילויים

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

אין קונפליקטים מוצהרים של ריבית.

תודות

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

עבודה זו נתמכה על ידי CNRS (PICS 2012-2014 לEG) ועל ידי מענק מRegione קמפניה (n.5 LR, -28.03.2002 לג'ובאנה מוטולה). פיליפו קונטי הוא בחור של שיתוף הפעולה המדעי קרן'' Infectiopole Sud.'' ניקולה Boucherit הוא עמית של המשרד הצרפתי למחקר וטכנולוגיה. היו מקורות המימון לא היה תפקיד בעיצוב המחקר, איסוף נתונים, ניתוח נתונים, החלטה לפרסם, או הכנת כתב יד.

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

חומרים

רשימת החומרים שנעשה בהם שימוש במאמר זה
שםחברהמספר קטלוגהערות
DMEMGibco Life Technologies21969-035
סרום עגל עובריGibco Life Technologies10270
פניצילין/סטרפטומיציןGibco Life Technologies15070
גלוטמיןGibco Life Technologies25030-024
PBS (10x)לונזהBEM515F
ליזה של תאי דם אדומים מאגרSigmaR7757
מסננת תאים 70 μ m ניילוןBD Falcon352350
מסננת תאים 40 μ m ניילוןBD Falcon352340
צינורות 50 מ"לכל ספקN/A
צינורות 15 מ"לכל ספקN/A
צלחות פטרי (100/20 מ"מ)כל ספקN/Aמטופלות בתרבית
(35/10 מ"מ)כל ספקn/a
צלחות פטרי

מקורות

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
  1. Rutherford, M. S., Witsell, A., Schook, L. B. Mechanisms generating functionally heterogeneous macrophages: chaos revisited. J. Leukocyte Biol. 53, 602-618 (1993).
  2. Van Furth, R. Inflammation: Basic Principles and Clinical Correlates. Gallin, J. I., Goldstein, I. M., Snyderman, R. 112, Raven Press. 325-336 (1992).
  3. Adams, D., Halmiton, T. Inflammation: Basic Principles and Clinical Correlates. Gallin, J. I., Goldstein, I. M., Snyderman, R. 112, Raven Press. 325-336 (1992).
  4. Morris, L., Graham, C. F., Gordon, S. Macrophages in haemopoietic and other tissues of the developing mouse detected by the monoclonal antibody F4/80. Development. 112, 517-526 (1991).
  5. Haas, A. The phagosome: compartment with a license to kill. Traffic. 8, 311-330 (2007).
  6. Underhill, D. M., Ozinsky, A. Phagocytosis of microbes: complexity in action. Annu. Rev. Immunol. 20, 825-852 (2002).
  7. Castagna, A., Polati, R., Bossi, A. M., Girelli, D. Monocyte/macrophage proteomics: recent findings and biomedical applications. Expert Rev. Proteomics. 9, 201-215 (2012).
  8. Benoit, M., Desnues, B., Mege, J. L. Macrophage polarization in bacterial infections. J. Immunol. 181, 3733-3739 (2008).
  9. Barry, A. O., et al. Impaired stimulation of p38alpha-MAPK/Vps41-HOPS by LPS from pathogenic Coxiella burnetii prevents trafficking to microbicidal phagolysosomes. Cell Host Microbe. 12, 751-763 (2012).
  10. Henry, R. M., Hoppe, A. D., Joshi, N., Swanson, J. A. The uniformity of phagosome maturation in macrophages. J. Cell Biol. 164, 185-194 (2004).
  11. Sundaramurthy, V., et al. Integration of Chemical and RNAi Multiparametric Profiles Identifies Triggers of Intracellular Mycobacterial Killing. Cell Host Microbe. 13, 129-142 (2013).
  12. Boltz-Nitulescu, G., et al. Differentiation of rat bone marrow cells into macrophages under the influence of mouse L929 cell supernatant. J. Leukocyte Biol. 41, 83-91 (1987).

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

הדפסות חוזרות והרשאות

בקש הרשאה לשימוש חוזר בטקסט או באיורים של מאמר JoVE זה

בקש הרשאה

תגיות

LPS

מאמרים קשורים